peptide sequencing Flashcards

1
Q

Identify the different levels of protein structure.

A
  • Primary structure = AA sequence + disulfide bonds
  • secondary structure = alpha helix and beta strands
  • tertiary structure = global fold of protein or major components(= domains)
  • quaternary structure = relationhips of chains to each other (if > 1 chain)
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2
Q

2 méthodes pour séquencer des protéines?

A
  • Edman degradation
  • MS/MS
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3
Q

Edman degradation steps

A
  • peptide c-terminus fixed on filter
  • add phenyl isothiocyanate PITC in basic condition
    ==> phenylthiourea derivative of the peptide
  • add trifluoroacetic acid (TFA) to catalyze amid bond break
    ==> free N terminus analino thiazolinone dérivative of AA
  • add acid (= organic extraction)
    ==> phenylthiohydydantoin derivative of AA = PTH-AA
  • run the product on a column to determine the PTH-AA
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4
Q

limites de la réaction d’edman?

A

rendement = 97%
==> Possibilité de séquencer maximum 50 AA

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5
Q

comment séquencer avec Edman de Protéines de > 50 AA?

A

En utilisant des protéases (trypsine et chemotrypsine) pour réduire la taille des fragments.

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6
Q

où clive la trypsine?

A

Après arginine et lysine

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7
Q

où clive la chymotrypsine?

A

après les AA aromatiques: tryptophane, tyrosine, phénylalanine

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8
Q

que signifie maldi-tof?

A

Matrix Assisted Laser Desorption ionization-Time of Flight

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9
Q

Principe de MALDI-TOF?

A
  1. les protéines fragmentées sont fixées sur une matrice
  2. Un laser les ionise (ionisat!ion douce) positivement
  3. Un champ électrique les accélère
  4. Dans une chambre vide leur vitesse est inversement proportionnelement à leur masse
  5. On mesure le temps pour arriver au détecteur
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10
Q

relation entre le champ électrique et la vitesse?

A

F = qE = ma
==> a = qE/m

a = accélération dont dépend la vitesse finalle

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11
Q

Condition pour utiliser le fingerprint d’une protéine en MALDI-TOF?

A

Il faut qu’elle soit déjà répertoriée dans une base de données

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12
Q

principe du séquençage MS/MS?

A
  1. MALDI-TOF pour séparer les protéines
  2. En sortie, la protéine d’intérêt subit une ionization forte (hard ionization) qui détruit les liaisons amides
  3. Décomposition du peptide en Y-ions qui sont détectées par mass spectrometry
  4. chaque AA est déduit de la diff de masse entre 2 Y-ions

les ions non Y-ions sont ignorés (mais ils existent)

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13
Q

Structure des Y-ions?

A

peptide avec extrêmité C terminale intacte et extrêmité N-terminale clivée

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