Labo 8-9-10-11 Flashcards

1
Q

Quel est l’objectif scientifique du chapitre 8 : Solation et purification de l’ADN total de cellules en culture ?

A

Isoler et purifier les ARN totaux d’une lignée cellulaire du cancer du sein humaine en culture

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2
Q

Quelle est l’approche méthodologique du chapitre 8 : Solation et purification de l’ADN total de cellules en culture ?

A

Comparer deux techniques d’isolation : précipitation et colonne

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3
Q

Quels sont les 3 types d’ARN qui assurent la fonction des synthèses de protéines ?

A
  1. ARNm
  2. ARNt
  3. ARNr
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4
Q

Quelle technique avons-nous utiliser afin d’étudier les niveaux d’expression des gènes ?

A

RT-PCR

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5
Q

Pourquoi l’ARN est plus difficile à étudier que l’ADN ?

A

Car l’ARN est plus vulnérable vis-à-vis les RNase A et la chaleur (pour cette raison qu’il faut que les manipu soient fait dans un environnement stérile)

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6
Q

Quel est le principe de l’extraction de l’ARN total par précipitation ?

A

Elle exploite de le fort pouvoir dénaturant de l’isothiocyanate de guanidine, ce qui provoque la lyse des cellules et inhibe les RNases libérées

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7
Q

Dans la méthode de précipitation, les cellules sont lysées grâce à quoi ?

A

TRIzol QUI CONTIENT :
1. Isothiocyanate de guanidine
2. Phénol

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8
Q

Comment l’ARN est extrait dans la méthode de précipitation ?

A

Grâce au chloroforme, qui entraîne la séparation du mélange en 2 phases après centrifugation

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9
Q

Que retrouve-t-on dans les 3 phases d’une méthode d’extraction par précipitation ?

A
  1. Phase aqueuse: ARN
  2. Interphase : ADN
  3. Phase organiques : protéines + lipides + chloroforme + phénol
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10
Q

Lorsque que la phase aqueuse est récupérée, l’ARN est précipité avec quoi ?

A

Alcool froid (isopropanol)

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11
Q

Quelles sont les étapes de la purification sur colonne ?

A
  1. Homogénéiser les cellules ou le tissu avec le mélange isothiocyanate de guanidine-phénol
  2. Déposer l’échantillon sur colonne
  3. Centrifuger
  4. Laver
  5. Traiter l’ARN au DNase
  6. Laver
  7. Éluer
  8. Doser
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12
Q

Entre la méthode de précipitation et de colonne, laquelle nous permet d’avoir un ARN de plus haute qualité ?

A

Colonne

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13
Q

Qu’est-ce que le DEPC ?

A

Eau ayant été traitée avec un inhibiteur de RNase

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14
Q

Quel est le % d’éthanol utilisé pour la précipitation ?

A

éthanol 75%

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15
Q

L’ajout d’H2O-DEPC sur l’ARN sert à quoi ?

A

Hydrater l’ARN

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16
Q

À quoi sert un tampon de prélavage d’ARN dans la méthode de la colonne ?

A

Prépare au lavage:
1. Nettoie la colonne
2. Améliore pureté
3. Réduit les contaminants

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17
Q

Parmi les ARN totaux, lequel nous intéresse ?

A

ARNm

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18
Q

Quelles sont les étapes de la méthode de précipitation ?

A

PRÉCIPITATION :
1. Lyse des cellules : Ajout de TRIzol (ou phénol + guanidinium) pour lyser et dénaturer protéines/ADN
2. Phase séparation: Ajout de chloroforme, puis centrifugation : séparation en 3 phases
- Phase aqueuse = ARN
- Phase interphase = ADN
- Phase organique = protéines
3. Récupération de l’ARN: Prélèvement de la phase aqueuse contenant l’ARN
4. Précipitation de l’ARN: Ajout d’isopropanol ou d’éthanol → formation d’un pellet d’ARN
5. Lavage: Lavage du pellet avec éthanol 70% pour enlever les impuretés
6. Resuspension: Séchage rapide puis resuspension de l’ARN dans de l’eau ou tampon (RNase-free)

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19
Q

Quelles sont les étapes de la méthode de colonne ?

A
  1. Lyse des cellules: Tampon de lyse contenant un dénaturant (ex. : guanidinium) + β-mercaptoéthanol
  2. Homogénéisation: Passage dans une seringue/filtre ou vortex avec bille pour homogénéiser
  3. Fixation à la colonne: Ajout d’éthanol → la solution est chargée sur une colonne à membrane de silice
  4. (Facultatif) Pré-lavage: Tampon de pré-lavage pour éliminer contaminants bruts
  5. Traitement DNase I Ajout sur colonne pour digérer l’ADN génomique (sans libérer l’ARN)
  6. Lavage: Plusieurs lavages avec des tampons contenant éthanol pour éliminer les impuretés
  7. Élution: ARN est éluté avec de l’eau ou un tampon sans RNase
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20
Q

Quelle est la différence entre l’isopropanol 99% et l’éthanol froid 75% ?

A

Isopropanol 99% :
- précipitation rapide de l’ARN
- juste après phase aqueuse

Éthanol 75% :
- Élimine les sels/impuretés
- Après centrifugation

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21
Q

Quelle méthode entre la précipitation et la colonne assure un meilleure rendement ?

A

Précipitation

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22
Q

À l’étape 16 de l’isolation de l’ARN par la méthode de la précipitation, bien que le microtube contienne un culot d’ARN, on le laisse ouvert et à la température de la pièce. Pourquoi prend-on ce risque?

A

Pour évaporer l’éthanol résiduel, car il inhibe fortement la Taq polymérase

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23
Q

Dans la méthode d’isolation de l’ARN sur colonne, pourquoi fait-on un traitement avec de la DNAse I alors que dans la méthode d’isolation par précipitation, on ne le fait pas?

A

Parce que dans la méthode de la colonne, l’ADN co-purifie très facilement avec l’ARN. Tandis qu’avec la méthode de précipitation, cette méthode sépare naturellement l’ADN.

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24
Q

Quel est l’objectif spécifique du chapitre 9 : Analyse de l’intégrité des ARN sur gel d’agarose ?

A

Analyser l’intégriter des deux échantillons d’ARN totaux extraits par les deux méthodes

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25
Q

Les molécules d’ARN sont chargés comment ?

A

négativement

26
Q

Pourquoi l’ARN doit être séparé en utilisant des conditions de dénaturation ?

A

Car certains ARN peuvent former des liaisons db.

27
Q

Quel agent dénaturant d’ARN est utilisé lors de l’électrophorèse de l’ARN ?

A

Formaldéhyde

28
Q

Quelles sont les fonctions du formaldéhyde ?

A
  1. Dénaturant des ARN
  2. Protège contre la dégradation des ARN
29
Q

À quoi sert le formide ?

A

Protéger contre la dégradation des ARN

30
Q

À quoi sert le MOPS 10X ?

A

Pour maintenir un pH optimal et stable + favorise une bonne migration et empêche sa dégradation.

31
Q

Analyser les résultats de la migration sur électrophorèse des différentes sous-unités de l’ARN.

A

Diapo examen final 33 ou cahier page 90

32
Q

Quel est le rôle de l’étape de chauffage dans la préparation des ARN à 65˚C pendant 5 min avant de les déposer sur gel ?

A

Pour bien assurer de dénaturer les structures secondaires des ARN.

33
Q

Quel est l’objectif spécifique du chapitre 10 : Rétro-transcription ?

A

Préparer une banque d’ADNc

34
Q

Qu’est-ce que la rétro-transcription ?

A

Synthèse d’un brin d’ADNc à partir d’une séquence d’ARN

35
Q

Quelles sont les 2 étapes principales de la réaction de RT ?

A
  1. Hybridation des amorces Oligo dT à la région 3`des ARNm contenus dans l’isolat de l’ARN total
  2. Synthèse d’un brin d’ADNc à chacun des ARNm
36
Q

Avec quel outil se fait la polymérisation de ADNc ?

37
Q

Quelles amorces sont utiliser afin d’amplifier uniquement les ARNm ?

A

polyT qui vont se lier aux extrémités de polyA.

38
Q

Quelles sont les 2 S-U des ARNr ?

A

28S et 18S

39
Q

Les ARNm constituent combien de % de la cellule ?

40
Q

Quel ARN est le plus nombreux ?

A

ARNr (75% de la cellule)

41
Q

Comment se fait l’extraction de l’ARNm ?

A

Une matrice composée de oligodT qui retiendra les queues poly A

42
Q

Quelle est l’utilité du PCR ?

A

Produire une grand quantité d’un fragment d’ADN précis à partir d’une petite quantité

43
Q

Quelles sont les 3 étapes de l’amplification d’ADN par PCR ?

A
  1. Dénaturation de l’ADN (95°C)
  2. Hybridation des amorces à l’ADN matrice (65°C)
  3. Polymérisation de l’ADN (72°C)
44
Q

Quelle est la polymérase utilisée lors de la PCR ?

A

Taq polymérase isolée à partir de Thermus aquaticus

45
Q

Pourquoi dans le PCR, on utilise du magnésium ?

A

Car c’est un cofacteur enzymateur et aide à l’activité de la Taq polymérase

46
Q

Pourquoi on chauffe l’oligodT lors d’un RT-PCR ?

A

Pour favoriser l’hybridation spécifique d’oligodT et polyA

47
Q

À quoi sert les dNTPs ?

A

Fournissent les bases nécessaires à la synthèse de l’ADN

48
Q

La RT est dépendante de quoi ?

A

des amorces et des matrices

49
Q

Pour un RT-PCR, quels sont les gènes « domestiques » utilisés pour la normalisation des données ?

A
  • ß-actine
  • GAPDH
50
Q

Qu’est-ce que l’enzyme MMLV-RT ?

A

Enzyme transcriptase inverse

51
Q

Pendant la préparation de la rétrotranscription, à l’étape 3, on insiste sur l’importance de garder les échantillons à la température pièce et non sur glace, bien qu’ils contiennent de l’ARN. Pourquoi prend-on ce risque?

A

Pour permettre aux amorces de s’hybrider à l’ARN

52
Q

Quels sont les 2 types de matériels à amplifier dans le PCR ?

53
Q

À quel cycle, les premiers amplicons apparaissent ?

54
Q

Qu’est-ce qu’un Master mix ?

A

Un grand mélange réactionnel qui contient tous les réactifs de l’étape de l’amplification (Taq polymérase, amorces, dNTPs, MgSO4, DEPC, Tampon PCR)

55
Q

Combien de cycle de PCR avons-nous fait ?

56
Q

Dans le mélange réactionnel pour la PCR (étape 4), on inclut du MgSO4. À quoi servira le sulfate de magnésium dans la réaction?

A

Le sulfate de magnésium (MgSO₄) fournit des ions Mg²⁺, qui sont essentiels au bon fonctionnement de l’ADN polymérase pendant la PCR.

57
Q

Dans la réaction de PCR, on inclut des dNTPs. Est-ce qu’ils sont exactement de même nature que ceux qui sont utilisés pour la réaction de RT?

A

Oui, mais leur contexte sont différents.

En RT, la reverse transcriptase utilise les dNTPs pour synthétiser un ADNc à partir d’un ARN.

En PCR, la Taq polymérase utilise les dNTPs pour amplifier un brin d’ADN.

58
Q

Nommer deux ingrédients actifs du tampon PCR 10X et énoncer leur rôle dans la réaction de PCR.

A
  • Tris-HCl (tampon pH: maintien pH stable)
    -KCl (stabilise hybridation des amorces à l’ADN matrice)
59
Q

Quelle méthode est la plus pure ?

A

Colonne a moins de contaminants, car c’est traité avec DNase I

60
Q

Analyser les résultats du chapitre 11.

A

Diapo 38 examen final