la dentinogenese part 2 Flashcards

1
Q

STRUCTURE DE LA DENTINE HUMAINE

PROLONGEMENTS ODONTOBLASTIQUES

A

A travers la prédentine :
➢ Le prolongement odontoblastique traverse la prédentine
➢ Une ramification du prolongement s’étend dans la prédentine

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2
Q

STRUCTURE DE LA DENTINE HUMAINE

TUBULES DENTINAIRES

A

• Nombreux : plusieurs dizaines de milliers
• Alignés à peu près parallèlement les uns par rapport aux autres
• Parcourent la dentine depuis la couche odontoblastique en direction de la jonction dentine-émail
• Présentent des prolongements odontoblastiques :
o 1 prolongement dans chacun des tubules • Grande perméabilité :
o La forte densité tubulaire confère à la dentine une grande porosité et donc une grande perméabilité notamment vis-à-vis des bactéries qui pénètrent dans la dentine lors des infections carieuses
o Augmentée par la présence des tubules secondaires, pour la plupart anastomosés avec les tubules voisins, autour des ramifications des prolongements principaux

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3
Q

RELATIONS DES ODONTOBLASTES AVEC LES CELLULES SOUS-ODONTOBLASTIQUES
5 types cellules

A

Durant toute la vie de la dent, les odontoblastes sont en relation étroite avec 5 types de cellules de la région sous-odontoblastique
Les fibroblastes pulpaires :
➢ Présentent des contacts directs avec les odontoblastes, par l’intermédiaire de jonctions communicantes et de jonctions serrées
Les cellules endothéliales de capillaires sanguins
➢ Apportent l’oxygène et les nutriments nécessaires à leur métabolisme de base et à la synthèse
de la dentine
Les cellules immunitaires pulpaires
➢ Notamment des cellules dendritiques présentatrices d’antigènes
➢ Assurent la protection de la pulpe face aux bactéries buccales, qui pénètrent dans la dent lors du
processus carieux
Les fibres nerveuses pulpaires
➢ Se terminent pour la plupart dans la région sous-odontoblastique ; certaines fibres nerveuses s’insinuent entre les odontoblastes pour pénétrer dans les tubules sur une courte distance
➢ Interviennent dans la douleur ressentie en cas d’agression sur la dentine, notamment stimulées par le froid
Les cellules souches mésenchymateuses

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4
Q

III. REGULATION DE LA DIFFERENCIATION ODONTOBLASTIQUE

A

La différenciation odontoblastique :
➢ Est un phénomène hautement régulé
➢ D’abord été étudiée au niveau tissulaire, puis au niveau moléculaire

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5
Q

REGULATION DE LA DIFFERENCIATION ODONTOBLASTIQUE

etude tissulaire

A

Expérience :
Dissociation enzymatique de germes dentaires de premières molaires de souris :
➢ Séparer l’organe de l’émail de la papille ectomésenchymateuse en dégradant la membrane basale
➢ Cultiver in vitro chacun des deux tissus séparément Résultats :
La différenciation odontoblastique est induite par l’épithélium dentaire interne et contrôlée par la membrane basale interposée entre les 2 tissus

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6
Q

REGULATION DE LA DIFFERENCIATION ODONTOBLASTIQUE

etude moleculaire

A

Expérience :
Culture de papilles ectomésenchymateuses de premières molaires de souris, en présence de molécules spécifiques Résultats :
La fibronectine et le facteur de croissance TGF-β1 jouent un rôle dans l’induction de la différenciation odontoblastique

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7
Q

REGULATION PAR LE TGF-B1

A

Le TGF-β1 est un facteur de croissance multifonctionnel

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8
Q

TGF- β1 dans la différenciation odontoblastique

A

Il est produit en quantité importante par les cellules de l’épithélium dentaire interne, juste avant et pendant la polarisation odontoblastique
Stocké après sécrétion par l’épithélium, dans les fibrilles d’ancrage de la membrane basale enrichies en fibronectine
Ses récepteurs membranaires sont exprimés fortement à la surface des cellules ectomésenchymateuses périphériques avant et au moment de leur polarisation

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9
Q

Association fibronectine / TGF- β1

A

Mise en culture de papilles ectomésenchymateuses de premières molaires de souris en présence de TGF-β1 et de fibronectine :
➢ Le TGF-β1 associé à la fibronectine et placé au contact des papilles induit la différenciation odontoblastique

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10
Q

Conclusion

regulation par le TGF- β1

A

Le TGF-β1 produit par l’épithélium dentaire interne s’associe à la fibronectine des fibrilles d’ancrage
Reconnu par ses récepteurs spécifiques présents à la surface des préodontoblastes
Provoque en association avec la fibronectine, la polarisation puis l’activation fonctionnelle de la cellule

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11
Q

REGULATION PAR LA FIBRONECTINE

A

La fibronectine est une glycoprotéine impliquée dans l’adhésion des cellules à la matrice extracellulaire

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12
Q

mise en evidence fibronectine

A

Par immunomarquage en microscopie électronique : ➢ Via un anticorps spécifique anti-fibronectine
Au niveau des fibrilles d’ancrage de la membrane basale :
➢ Fortement marquées au moment de la polarisation odontoblastique

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13
Q

Rôle de l’association fibronectine- récepteur dans la polarisation odontoblastique

A

La fibronectine entoure complètement les cellules ectomésenchymateuses périphériques et s’accumule progressivement dans les fibrilles d’ancrage, lorsque ces cellules se rapprochent de la membrane basale
Parallèlement, un récepteur de la fibronectine (165 kDa) apparaît dans la membrane plasmique des cellules ectomésenchymateuses proches de la membrane basale
La fibronectine et son récepteur vont interagir lorsque les cellules arrivent au contact des fibrilles d’ancrage
Cette interaction permet l’accrochage des cellules aux fibrilles et déclenche le phénomène de polarisation
Confirmation des résultats par la culture de germes dentaires en présence d’un anticorps qui empêche la liaison de la fibronectine à son récepteur :
➢ L’accrochage des cellules aux fibrilles d’ancrage n’a pas lieu et la polarisation odontoblastique est inhibée

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14
Q

REGULATION PAR LA FIBRONECTINE

sans l’association

A

Incapacité de la fibronectine à induire SEULE la polarisation odontoblastique
Culture de cellules de papilles ectomésenchymateuses dentaires de souris sur une surface recouverte d’un tapis de fibronectine
➢ Les cellules de papille ectomésenchymateuse ne polarisent pas

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15
Q

REGULATION PAR LA FIBRONECTINE

Conclusion

A

La fibronectine est nécessaire, mais pas suffisante :
➢ Probable que la différenciation odontoblastique nécessite l’association de la fibronectine
avec d’autres composants présents dans les fibrilles d’ancrage de la membrane basale

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16
Q

REGULATION PAR L’EPITHELIUM DENTAIRE INTERNE ET LA MEMBRANE BASALE
expe 1

A

Dissociation d’un germe dentaire de première molaire de souris prélevé au début du stade de la cloche par une enzyme : la trypsine, qui détruit la membrane basale
Mise en culture :
➢ De la papille ectomésenchymateuse seule
➢ De la papille ectomésenchymateuse réassociée avec un organe de l’émail

17
Q

REGULATION PAR L’EPITHELIUM DENTAIRE INTERNE ET LA MEMBRANE BASALE
resultats 1

A

Culture de la papille ectomésenchymateuse seule :
➢ Les cellules périphériques de la papille ne se différencient pas en odontoblastes,
quelle que soit la durée de la culture
Culture de la Papille ectomésenchymateuse réassociée avec un organe de l’émail :
➢ Se forme une nouvelle membrane basale entre l’épithélium et l’ectomésenchyme, et les cellules périphériques de la papille se différencient en odontoblastes ; cette différenciation n’a lieu qu’après que la nouvelle membrane basale ait été formée (en son absence, la différenciation ne se produit pas)

18
Q

REGULATION PAR L’EPITHELIUM DENTAIRE INTERNE ET LA MEMBRANE BASALE
exp 2

A

La trypsine est remplacée par l’EDTA (acide ethylène diamine tétracétique : chélateur du calcium) qui ne détruit pas la membrane basale :
➢ Séparation de l’épithélium et de l’ectomésenchyme au niveau de la lamina lucida (entre l’épithélium dentaire interne et la lamina densa)
➢ La lamina densa et les fibrilles d’ancrage restent accrochées à la papille ectomésenchymateuse

19
Q

REGULATION PAR L’EPITHELIUM DENTAIRE INTERNE ET LA MEMBRANE BASALE
resultats 2

A

Culture de de la papille ectomésenchymateuse en l’absence d’épithélium (mais en présence de la membrane basale) :
➢ Les cellules périphériques s’accrochent aux fibrilles d’ancrage et se différencient en odontoblastes

20
Q

REGULATION PAR L’EPITHELIUM DENTAIRE INTERNE ET LA MEMBRANE BASALE
conclu

A

L’organe de l’émail et la membrane basale sont tous deux nécessaires à la différenciation odontoblastique des cellules périphériques de la papille ectomésenchymateuse
L’information en provenance de l’organe de l’émail est stockée dans la membrane basale
➢ Une fois l’information arrivée dans les fibrilles d’ancrage, l’épithélium n’est plus nécessaire

21
Q

COMPOSITION

DE LA MATRICE DENTAIRE (prédentine)

A

Essentiellement :
➢ Collagène de type I = 85% de la matrice dentinaire

En quantité relativement importante : Glycoprotéines non collagéniques impliquées dans la minéralisation : ➢ SIBLINGS
➢ Protéines Gla
➢ Glycoprotéines acides

En faible quantité :
➢ Autres types de collagènes : V et VI 
➢ Protéoglycanes
➢ Métalloprotéases matricielles
➢ Facteurs de croissance
➢ Autres composants (protéines de l'émail, protéines sériques, phospholipides)
22
Q

site de sécrétion des constituants de la prédentine

A

A la base du prolongement et à proximité du corps cellulaire :
➢ Sont sécrétés les collagènes et la plupart des protéoglycanes
A l’extrémité du prolongement et à proximité des fibrilles d’ancrage :
➢ Sont sécrétées majoritairement les glycoprotéines qui régulent le processus de minéralisation de la prédentine
➢ Puis, au fur et à mesure de la synthèse de la prédentine et du déplacement du front de minéralisation vers le centre de la pulpe, ce site de sécrétion va se déplacer le long du prolongement pour rester à proximité du front de minéralisation

23
Q

maturation de la prédentine

A

Une fois sécrétée, la prédentine subit une maturation qui comprend principalement :
➢ La structuration du réseau collagénique
➢ La dégradation de glycoprotéines et de protéoglycanes : par des enzymes également sécrétés
par les odontoblastes
Augmentation progressive du diamètre des fibres de collagène de type I dans la prédentine située autour des prolongements odontoblastiques

24
Q
PREDENTINE ET COLLAGENE DE TYPE I
1ere couche 
localisation 
fibre collagene 1 
role
A

localisation : Entre les fibrilles d’ancrage de la membrane basale

fibre collagene 1 : Petites tailles
Parallèle aux fibrilles d’ancrage

role : Renforcer la cohésion entre la dentine et la première couche d’émail

25
Q
PREDENTINE ET COLLAGENE DE TYPE I
autre
localisation 
fibre collagene 1 
role
A

localisation : Autour des prolongements

fibre collagene 1 : Gros diamètre Perpendiculaire aux fibrilles

role : Élasticité = amortir les chocs que subit la dentine lors de la mastication

26
Q

COLLAGENE DE TYPE I

forme

A

Classique :
➢ La plus abondante : environ 85%
➢ Hétérotrimérique : associe 2 chaînes α1(I) et 1 chaîne α2(I)
Trimère :
➢ Relativement abondante : environ 15% ➢ Homotrimérique : associe 3 chaînes α1(I)

27
Q

COLLAGENE DE TYPE I

roles

A

Principal
→Constituer l’armature de la matrice dentinaire :
➢ Formée par un réseau de fibres de collagène de gros diamètre→les molécules de
procollagène sécrétées par les odontoblastes s’associent progressivement dans l’espace
prédentinaire pour former des fibrilles, puis des fibres (diamètre pouvant aller jusqu’à 200 nm)
➢ Stabilisée par de nombreuses liaisons croisées covalentes qui s’établissent entre les fibres sous l’action de la lysyloxydase (enzyme sécrétée par les odontoblastes dans la prédentine)
o L’épaisseur de la prédentine correspond au temps nécessaire à la formation et à la stabilisation de ce réseau collagénique

Secondaire
→Constituer le support du minéral dentinaire
➢ Formé essentiellement par des cristaux d’hydroxyapatite carbonatée

28
Q

Production
collagene 1
Dans le germe dentaire

A

Il y a une forte production de collagène de type I par les odontoblastes dans un germe dentaire de molaire en développement
Le gène codant pour la chaîne α1 du collagène de type I est exprimé :
➢ Dans les odontoblastes nouvellement différenciés (dans la région de la future cuspide)
➢ Dans les ostéoblastes qui forment l’os alvéolaire (autour du germe dentaire) Le gène codant pour la chaîne α1 du collagène de type I n’est pas exprimé
➢ Par les cellules épithéliales (cellules non marquées)

29
Q

Production
collagene 1
Dans les odontoblastes secreteurs

A

La localisation immunohistochimique du collagène de type I montre un fort marquage ➢ De la prédentine
➢ Du compartiment supranucléaire odontoblastique, qui contient les organites
dans lesquels sont produites les molécules de collagène

30
Q

collagene V

A

Représente 3% du collagène synthétisé
Est sécrété par les odontoblastes
Est localisé principalement en association avec les fibres de collagène de type I

31
Q

collagene VI

A

Est sécrété en faible quantité par les odontoblastes

Est localisé à proximité du corps cellulaire odontoblastique

32
Q

PROTEINES NON COLLAGENIQUES
quantite
production

A

quantite : Les protéines non-collagéniques sont nombreuses
Les plus abondantes sont celles de la famille des SIBLINGs (Small Integrin‐Binding LIgand, N‐ linked Glycoproteins)

production : Par les odontoblastes

33
Q

PROTEINES NON COLLAGENIQUES

Rôle dans la minéralisation prédentine

A

La minéralisation de la prédentine débute au niveau des fibres de collagène de type I Toutefois, les fibres de collagène de type I ne l’induisent pas directement :
➢ La minéralisation est initiée par des protéines non collagéniques
➢ Ces protéines se fixent sur les fibres de collagène, et organisent le dépôt de l’hydroxyapatite
à l’intérieur et à la surface de ces fibres

34
Q

PROTEINES NON COLLAGENIQUES : LES SIBLINGS

A
  1. La sialophosphoprotéine dentinaire (la plus importante)
  2. La phosphoprotéine matricielle dentinaire-1
  3. La sialoprotéine osseuse
  4. L’ostéopontine
  5. La phosphoglycoprotéine extracellulaire matricielle
35
Q

PROTEINES NON COLLAGENIQUES

role siblings

A
  1. La sialophosphoprotéine dentinaire (la plus importante) : Promoteur de la minéralisation de la matrice dentinaire
  2. La phosphoprotéine matricielle dentinaire-1
    : Promoteur de la minéralisation de la matrice dentinaire
  3. La sialoprotéine osseuse : Promoteur de la minéralisation de la matrice dentinaire
  4. L’ostéopontine : Inhibiteur de la minéralisation de la matrice dentinaire
  5. La phosphoglycoprotéine extracellulaire matricielle :
    Inhibiteur de la minéralisation de la matrice dentinaire
36
Q

SIBLINGS : Au moins 7 caractéristiques communes

A

• Sont présentes principalement dans l’os et la dentine (mais en quantités différentes)
• Sont sécrétées durant la formation et la minéralisation de ces 2 tissus
• Possèdent une séquence adhésive RGD (arginine-glycine-acide aspartique) → ce qui leur
permet de se lier à la membrane cellulaire sur des récepteurs de type intégrines
• Permettent de transmettre un signal en activant des voies de signalisation intracellulaires
• Sont phosphorylées → ce qui leur donne un caractère acide
• Sont glycosylées
• Leurs gènes, dont l’organisation est similaire, sont regroupés sur le bras long du
chromosome 4 dans la région q21