Introducción Flashcards

1
Q

Científico que propuso el “vivum contagium”

A

Fracastorio de Verona

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Q

Científico que describió “pequeños gusanos” en la sangre de los enfermos de peste bubónica

A

Atanasio Kircher

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Q

Científico que describe la bipartición

A

Nageli

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4
Q

Científico que hizo la clasificación de bacterias sobre una base morfológica

A

Cohn

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5
Q

Científico que introduce el concepto de virulencia y atenuación

A

Louis Pasteur

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6
Q

Defensor de la formación de vida a partir de otras formas de vida (huevos de moscas)

A

Redi

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7
Q

Científicos que describen el carbunco

A

Rayer y Davaine

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8
Q

Impulsor del lavado de manos

A

Semmelweis

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9
Q

Impulsor del lavado de heridas, manos, material quirúrgico y pulverización del aire

A

Joseph Lister

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10
Q

Impulsor de los guantes de goma

A

William Halsted

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11
Q

Representante de la escuela taxonómica de Europa. También descubre los medios de cultivo sólidos, utiliza placas de Petri y enuncia los postulados de Henle-Koch.

A

Robert Koch

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12
Q

Vacuna de la viruela

A

La hizo Jenner, aunque la trajo a Europa Lady Montagu

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13
Q

Creador de la vacuna del cólera de las gallinas

A

Pasteur

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14
Q

Creador de la vacuna tifoidea, colérica y de la tosferina

A

Salmon y Smith

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15
Q

Creador de la vacuna del tétanos

A

Ramon

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16
Q

Creador de la vacuna de la rabia

A

Roux y Pasteur

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17
Q

Descubridores de la tetánica e inmunidad humoral

A

Buchner y Kitasato

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18
Q

Descubridor de los anticuerpos

A

Bordet

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19
Q

Descubridor de los grupos sanguíneos

A

Landsteiner

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20
Q

Descubridor de la anfilaxia

A

Richet y Portier

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21
Q

Descubridor de la alergia

A

Pirquet

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22
Q

Descubridor de la perinicilina

A

Vicenzo Tiberio

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23
Q

Descubridores de las penicilinas y cefalosporinas

A

Fleming + Florey y Chan

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24
Q

Descubridor de la estreptomicina

A

Waksmann

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25
Q

Encargado de la cristalización del primer virus

A

Stanley

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26
Q

Concepto de asociación entre células, relacionado con la teoría endosimbiótica

A

Biocomplejidad

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27
Q

Concepto de la capacidad para colonizar ambientes extremos y cambiar el medioambiente

A

Biodiversidad

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28
Q

Concepto de la asociación con otros organismos y seres multicelulares (como la simbiosis)

A

Biointerrelación

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29
Q

Teoría de Carl R. Woese

A

3 células primigenias distintas co-evolucionaron adaptativamente mediante el intercambio horizontal de genes para formar los eucariotas

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30
Q

Teoría de la endosimbiosis seriada de Lynn Margulis

A

Asociación entre procariotas para formar células eucariotas

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31
Q

Pared celular de las gram +

A
  • Muchas capas superpuestas de peptidoglicano. Fuerte y resistente.
  • Presenta ácidos teicoicos y lipoteicoicos. Son parte de los PAMPs
  • Gradiente de protones
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32
Q

Pared celular de las gram -

A
  • Capa mucho más fina de peptidoglicano por encima de la mb plasmática.
  • Encima poseen una mb externa formada por:
    · Capa externa de lipopolisacáridos
    · Capa interna de fosfolípidos
    · Proteínas asociadas (Omp y proteínas superficiales)
  • Entre las dos membranas queda un espacio periplásmico en el que se acumulan los iones
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33
Q

Polisacárido que determina el serotipo bacteriano

A

Antígeno O

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34
Q

Bacterias ácido-alcohol resistentes

A
  • Pared formada por una fina capa de peptidoglicano y otras moléculas como arabinogalactano que forman estructuras cada vez más ramificadas que sujetan a su vez los ac micólicos, que a su vez sujetan unos glucolípidos. También observamos unos polisacáridos grandes.
  • Pared celular muy compleja, impermeable, hidrofóbica y selectiva.
  • La pared les protege del proceso de fagocitosis.
  • Tinción especial: Ziehl-Neelsen
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35
Q

Protoplasto

A

Bacteria gram + sin pared celular y sin capacidad para regenerarla

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36
Q

Esferoplasto

A

Bacteria gram - sin pared celular pero con capacidad para regenerarla

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37
Q

ADN facultativo

A

Fuera del nucleoide, elementos de ADN portadores de genes que codifican nuevas funciones de adaptación al medio

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38
Q

¿Qué es un episoma?

A

Plásmido que puede integrarse en el cromosoma bacteriano

39
Q

Diferencia entre plásmidos conjugativos y no conjugativos

A
  • Los plásmidos conjugativos se traspasan por conjugación
  • Los plásmidos no conjugativos se traspasan por transformación
40
Q

Secuencias de inserción

A

Pequeños fragmentos de ADN que pueden ubicarse en distintos puntos del genoma bacteriano causando mutaciones allá donde se inserten. Sin expresión fenotípica.

41
Q

Transposones

A

Fragmentos de ADN de mayor tamaño que pueden cambiar de colocación. Suelen portar genes de resistencia a antibióticos.

42
Q

Transferencia genética por conjugación

A
  • Consiste en fabricar un Pili por el que se transfiere una hebra de ADN de un plásmido a otra bacteria
  • Gram -
  • Se pueden transferir genes de resistencia a antibióticos: pueden aparecer cepas multirresistentes
43
Q

Transferencia genética por transformación

A
  • Toma de un fragmento de ADN cromosómico o plásmido de una bacteria muerta que está ahora en el medio donde vive
  • Solo algunas bacterias pueden recibir estos fragmentos: bacterias competentes
  • Se produce en condiciones recreadas en el laboratorio
44
Q

Transferencia genética por transducción

A
  • Propio de los fagos (virus propios de las bacterias)
  • Cuando el virus se multiplica dentro de la bacteria puede adquirir genes de la propia bacteria e incorporarlos a su genoma. Si infecta después a otra bacteria puede transmitirle estos genes.
45
Q

Islas genómicas

A
  • Conjunto de genes agrupados de gran tamaño que no pertenecen al genoma habitual del procariota
  • Ventaja adaptativa
  • Suelen estar flanqueadas por repeticiones directas (DR)
  • Suelen contener genes que codifican para moléculas implicadas en la transferencia de esta isla genómica
  • Aportan funciones accesorias
  • Se suelen asociar con la virulencia del patógeno
  • Derivan de la transmisión horizontal de genes
  • Salto cualitativo en la evolución de la especie
46
Q

Clasificación de las mutaciones

A
  • Espontáneas: por sustitución de bases (causa desconocida), poco frecuentes
  • Inducidas: por agentes mutágenos o elementos transponibles
47
Q

Hologenoma

A

Nuestro propio genoma + metagenoma (genoma de la flora microbiana) + ADN facultativo de la flora microbiana

48
Q

Clasificación de las bacterias en función de si necesita un factor de crecimiento o no

A
  • AUXÓTROFAS: incapaz de sintetizar un factor de crecimiento necesario. Debe tomarlo del medio exterior.
  • PROTÓTROFAS: capaz de sintetizar el factor de crecimiento
49
Q

Mecanismos de las bacterias auxótrofas

A
  • SATELISMO: una bacteria crece próxima a otra que le aporta el factor que necesita
  • SIMBIOSIS NUTRICIONAL: 2 bacterias crecen juntas porque cada una le suministra a la otra un factor de crecimiento que necesita
50
Q

Clasificación de las bacterias según la Tª a la que crecen

A
  • Psicrófilos (0-20ºC)
  • Mesófilos (20-45ºC)
  • Termófilos (45-70ºC)
  • Hipertermófilos (90-119ºC)

Las bacterias que nos afectan a nosotros son mesófilas

51
Q

Metabolismo aerobio estricto

A
  • Solo crecen en presencia de O2
  • Crecen solo en la parte superior del tubo
52
Q

Metabolismo anaerobio facultativo

A
  • Aunque lo prefieren, la presencia de O2 no es imprescindible
  • Crecen principalmente en la parte de arriba pero también en la de abajo
53
Q

Metabolismo anaerobio aerotolerante

A
  • Metabolismo anaerobio pero tolera el oxígeno
  • Crece indistintamente en cualquier parte del tubo
54
Q

Metabolismo anaerobio estricto

A
  • El oxígeno es tóxico
  • Solo crece en la parte inferior
55
Q

Metabolismo microaerófilo

A
  • Requieren una concentración de O2 intermedia
  • No crecen en la superficie porque la concentración atmosférica de O2 resulta tóxica, pero tampoco debajo porque hay poco
56
Q

Clasificación de las bacterias según el pH que necesiten

A
  • Acidófilos: 1,0 - 5,5
  • Neutrófilos: 5,5 - 7,0
  • Alcalófilos: 8,5 - 11,5

La mayoría de las bacterias de nuestra microbiota prefieren un pH extracelular de 5,0 - 9,0
Los hongos prefieren un pH de 5,5 - 6,5

57
Q

Bacterias que cambian el pH de su hábitat

A
  • Acidógenos: acidifican su entorno liberando productos ácidos
  • Acidúricos: crecen en un medio ácido y lo acidifican aún más
58
Q

Saprófito

A

Organismo uni o pluricelular que vive en la naturaleza sin mantener relación con un hospedador. Realiza degradación y descomposición de la materia orgánica. Participa en los ciclos biogeoquímicos.

59
Q

Concepto de microbioma

A

Microorganismos que viven de forma natural en el ser humano, además de sus genes y sus metabolitos

60
Q

Concepto de microbiota

A

Conjunto de microorganismos que residen en un hábitat localizado dentro del hospedador estableciendo una relación simbiótica. Puede ser autóctona (permanente, coevoluciona con el hospedador) o alóctona (temporal porque este la expulsa).

61
Q

Concepto de holobionte

A

Microbioma + hospedador. Establecen una simbiosis y experimentan una coevolución adaptativa.

62
Q

Concepto de complejo microbiano

A

Varios microorganismos que actúan de forma coordinada en el organismo para producir una patología

63
Q

Biofilms

A

Organizaciones de la microbiota de bacterias de distintas especies sobre las superficies mucosas y dentales. Se asocian para protegerse entre sí.

64
Q

Concepto de eubiosis

A

El microbioma mantiene relaciones simbióticas equilibradas

65
Q

Concepto de disbiosis

A

Algunos cambios pueden cambiar el equilibrio eubiótico de mutualismo / comensalismo a uno parasitario / patogénico. por ejemplo, la caries dental (por sobrecrecimiento de algunas bacterias)

66
Q

Etapas de la infección clínica

A
  1. COLONIZACIÓN: establecimiento (sin síntomas)
  2. INFECCIÓN: multiplicación del organismo (sin síntomas)
  3. INFECCIÓN CLÍNICA: síntomas que inducen la respuesta del hospedador
67
Q

¿Qué son HERVs?

A

Restos de los retrovirus en nuestro ADN: el 8% de nuestro ADN proviene de retrovirus. Pueden ser reactivados por factores ambientales.

68
Q

Factores de virulencia

A

Capacidad fisiológica o molécula que expresan los microorganismos para:
- Favorecer la colonización de un hospedador
- Evitar o inhibir respuestas del SI
- Progresar hacia la enfermedad invasiva

69
Q

Toma de muestras oculares (para conjuntivitis)

A
  • Con una torunda fina tomamos una muestra de ambos ojos para comparar microorganismos
  • Sembramos en el medio de cultivo una pequeña zona para cada ojo
  • Guardamos a Tª ambiente
70
Q

Toma de muestras faríngeas (amigdalitis)

A

Tomar muestra de la faringe posterior mediante una torunda/hisopo y un depresor lingual, sin tocar las paredes laterales, inferior o superior de la lengua.
Las bacterias se mantienen vivas en el medio de Amies

71
Q

Toma de muestras de los senos paranasales (sinusitis)

A
  • Muestra nasofaríngea
  • Se introduce una torunda de aluminio trenzado por la nariz
72
Q

Toma de muestras para otitis media

A

Timpanocentesis

73
Q

Toma de muestra para otitis externa

A

Con una torunda

74
Q

Toma de muestras para virus del TRS

A
  • Exudado nasofaríngeo
  • Si es muy agresiva, exudado orofaríngeo
  • Paciente no colaborador: muestra de saliva
75
Q

Toma de muestras para tosferina

A

Muestra nasofaríngea

76
Q

Muestras para laringitis o traqueítis (TRI)

A

Toma nasofaríngea u orofaríngea

77
Q

Toma de muestras para infecciones más inferiores del TRI como neumonías

A
  • Neumonía: un esputo
  • Micobacterias: 3 esputos en 3 días consecutivos

Si no hay posibilidad de esputo podemos emplear técnicas invasivas

78
Q

Toma de muestras gastrointestinales: heces

A

Basta una pequeña cantidad de muestra.
- Bacterias o virus: una sola muestra
- Parásito: 3 muestras de 3 días consecutivos
En niños se puede emplear una torunda rectal

79
Q

Muestras de orina

A

MUJER: limpiar los genitales de adelante hacia atrás 3 veces seguidas con 3 gasas. Es importante que coja el chorro medio de la micción.
HOMBRE: no importa tanto el lavado ni el chorro.
Debe hacerse a 1ª hora de la mañana para que la orina esté más concentrada
Se guarda en la nevera
Para el diagnóstico de TBC necesitamos también 3 muestras de 3 días seguidos

80
Q

Muestras de orina en niños

A
  • Reflejo del rasquido o de Pérez (estimular m. paravertebrales)
  • Punción vesical suprapúbica
  • Bolsa para la recogida de orina (el más utilizado, pero da falsos positivos)
  • Sondaje vesical
81
Q

Muestra genital en mujeres

A

Toma de exudado vaginal a través de un espéculo que se introduce cerrado y se abre para introducir la torunda a través del agujero que deja

82
Q

Muestra genital en hombres

A

Hisopo muy fino por la uretra anterior.

83
Q

Muestra de LCR

A
  • Punción lumbar con el paciente en decúbito lateral
  • Es importante que no tenga la presión alta
  • Se pincha entre L4-L5
  • Lavar primero con solución yodada y luego una alcohólica
  • Se recogen 3 tubos (microbiología, bioquímica y laboratorio). El de bioquímica no puede ser el 1º.
  • No guardar en nevera.
84
Q

Hemocultivo

A
  • Lavar zona primero alcohol después yodo
  • En la flexura del codo
  • Se extraen 4 botellas de 10 mL cada una (2 de aerobios, 2 de anaerobios)
  • No usar yodo para limpiar las botellas
  • Si no hay suficiente para llenar ambos tubos, al menos la de aerobios debe estar llena
  • Dejar botellas a 36ºC
  • Lo más importante es el volumen de sangre.
  • También es muy crítica la técnica de desinfección.
85
Q

Transporte de muestras biológicas

A
  • El periodo de tiempo ha de ser corto (a excepción de sospecha de hongos)
  • La temperatura ideal de transporte es 4ºC
86
Q

Escala de Bristol

A

Clasifica las heces en 7 subtipos. Aceptamos los 1-4, pero no los 5-7

87
Q

Microscopio utilizado para virus

A

M electrónico

88
Q

Microscopio más utilizado

A

M óptico

89
Q

Cromatografía gas-líquido

A

Método de identificación que distingue los productos metabólicos finales de las fermentaciones bacterianas

90
Q

Sondas de ácidos nucleicos

A

Miden secuencias de bases específicas de ADN y ARN

91
Q

PCR

A

Sirve para la amplificación de ácidos nucleicos. Es la prueba de mayor sensibilidad.

92
Q

Microarrays

A

Tiras con puntitos, cada uno con un gen de una bacteria o varios genes de la misma. Sistema rápido y sensible pero muy caro.

93
Q

Maldi-tof

A

Consiste en el cálculo de tiempo de vuelo de cada fragmento de una molécula a través de un trayecto predeterminado con una ionización láser previa de la molécula en una matriz determinada. Cuanto menos peso molecular tengan, más suben.