interaction prot-prot/prot-ADN Flashcards

1
Q

Qu’est-ce qu’une bio-interaction?

Pourquoi les étudier?

A

– Les interactions protéine-protéine et
protéine-acides nucléiques

-Régulation, réseaux d’interaction (interactome)

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2
Q

Quelles sont les méthodes in vivo pour étudier les interactions p-p 4

A

–2 hybride
– Liaisons croisées (crosslinking), TAP
– Transfert d’électrons (FRET)
– Phage display

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Q

Quelles sont les méthodes in vitro pour étudier les interactions p-p 5

A
--Immunoprécipitation/pull down
– Co-purifications
– Far-Western blot
– Liaisons croisées (crosslinking), TAP
– Transfert d’électrons (FRET)
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4
Q

Sur quoi se base la méthode 2 hybrides

A

sur les propriétés de l’activateur transcriptionnelle GAL4 chez les levures

  • 2 domaines (activateur/liaison à lADN)
  • Lorsqu’il y a interraction des domaines, transcription
  • fusion des prot à GAL4
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5
Q

Quels sont les avantages et les désavantages de la méthode 2 hybride

A

Avantages
-interactions se font à l’intérieure de la cellule
-cout des réactifs
-signal est quantifiable
Désavantages
-faux négatives et faux positives
-réactions se font dans des levures: glycosylation
-faut faire des clonages pour fusionner les protéines

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6
Q

Sur quoi se base le crosslinking?

A
  • produits chimiques peuvent réagir avec les extrémités N- ou C- des prot.
  • contiennent 2 régions réactives
  • Si 2 protéines sont proches, on devrait être capable de les ‘lier’ ensembles
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7
Q

À quoi sert les cleavable?

A

avec ces produits, on peut cliver les protéines liées
ensembles pour inverser les
liaisons croisées (crosslinking)

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8
Q

Sur quoi se base le phage display?

A
Détection des interactions
p-p avec la capside du phage M13
Librairie aléatoire de peptides
produits comme protéines
de fusion au capside du M13
Protéine à étudier collée à une plaque 96-puits
Liaison des phages, lavages,
élution, répéter 2 fois suivi
par la séquençage de l’ADN
isolé des phages
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9
Q

sur quoi se base la Fluorescence resonance energy transfer?

A

Basé sur les propriétés des protéines fluorescentes.

Si les 2 protéines sont proches, émission de la lumière

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10
Q

Vrai ou faux;

On peut faire les réactions de FRET in vitro ou in situ

A

vrai
On peut faire les réactions de FRET in vitro en solution (lecture dans un spectromètre à fluorescence) ou in situ (microscope à fluorescence)

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11
Q

Sur quoi se base la méthode TAP

A
-Protéine fusionnée à 2 ‘tags’
d’affinité
-Mélangé à protéines cellulaires in vitro ou exprimé in vivo
-Purification par billes d’affinité
-Coupure par protéase
-2e purification par 2e
tag d’affinité
-Élution et identification des
protéines par spectrométrie de masse
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12
Q

Sur quoi se base la méthode pull-down?

A
si 2 protéines réagissent
ensemble, et si on purifie 1 de ces protéines, l’autre suivra.
-Pull down avec protéine
taggée (6his, GST, MBP etc), Tag introduit à une extrémité
de la protéine par clonage
-Protéine taggée exprimée et
purifiée in vivo ou in vitro
-Mélangée avec la protéine
interactrice in vitro
-purifiée
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13
Q

Sur quoi se base le farwestern blotting

A

Détection des interactions entre 2 protéines sur un membrane:
isole 1er sur une membrane, incubation avec la 2e prot marquée

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14
Q

Quelles sont les méthodes in vivo pour étudier les interactions p-ADN 2

A

-One hybrid/fusions aux promoteurs

– Immunoprécipation du chromatin (ChIP)

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15
Q

Quelles sont les méthodes in vitro pour étudier les interactions p-ADN 5

A
-Liaison aux filtres
– Chromatographie à affinité à l’ADN
– Southwestern blot
– Retard sur gel (EMSA)
– Empreinte sur l’ADN (footprinting)
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16
Q

À quoi sert la méthode one hybrid

A

de trouver les protéines capable de lier à une séquence cible

17
Q

Comment fait-on la méthode one hybrid?

A
  • Cloner la séquence de liaison à coté d’un gène rapporteur
  • Introduire librairie de clones exprimant les protéines
  • Protéine lie à la séquence cible=transcription du gène marqueur
18
Q

Sur quoi se base la méthode liaison au filtre

A

-Les protéines s’attachent aux filtres de nitrocellulose
• L’ADN marqué traverse le filtre, sauf si se lie à une protéine
• Quantifiable (décompte de radioactivité)

19
Q

Qu’est-ce qu’un southwestern blot?

A

Combinaison d’un Western blot (protéines fixées à un membrane) avec un sonde d’ADN marqué

20
Q

Sur quoi se base un southwestern blot?

A

la domaine de liaison à l’ADN peut rénaturer sur une

membrane de nitrocellulose pour permettre une liaison d’un ADN spécifique marqué

21
Q

Quels sont les défaults des southwestern blot

A

-Faut éviter les interactions nonspécifiques

• Faut être sur qu’il y a eu une rénaturation complète.

22
Q

Sur quoi se base les gelshift ou EMSA

A

Liaison de protéine retarde la migration d’un ADN marqué
• Une fois dans le gel, les complexes peuvent s’associer et se re-associer in situ
-Utile pour suivre la purification d’une protéine liante à l’ADN

23
Q

Comment assurer la spécificité de l’interaction? 3

A

-Ajout de l’ADN nonspécifique en excès
• Expérience témoin avec un fragment nonspécifique marqué ou fragment spécifique muté
• Compétition avec un ADN spécifique et un ADN nonspécifique

24
Q

Comment peut-on déterminer le lieu de l’interaction de la protéine avec l’ADN?

A

Méthode de gelshift
-Le plus grand degré de courbeture sera avec
un site de liaison centralisé
-migre le moins dans le gel.

25
Q

À quoi sert la méthode essais de protection? 2

A
  • définir les contactes entre la protéine et l’ADN

- possibilité de voir plusieurs sites de liaison et de mésurer la coopérativité

26
Q

Quel sont les précautions à prendre avec la méthode d’essais de protection? 4

A

1) L’ADN devrait être marqué à une extrémité et sur un brin seulement
2) Modifications ou coupures une fois par molécule
3) modifications/coupures aléatoires (pas spécifique pour une séquence)
4) Liaison de protéine devrait reduire les modifications/coup.