Brainscape's Knowledge GenomeTM

Browse over 1 million classes created by top students, professors, publishers, and experts.


See full index

🦠RT > Histology > Flashcards

Histology Flashcards

1
Q

Tissu nucléaire = pos/neg? Acide/basique? , ❤aime colorant basique/acidique? et acidophilie ou basophilie?

A

Negatif, acide, aime colorant basique, donc basophilie

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
2
Q

Tissu non-nucléaire = pos/neg? Acide/basique? , aime colorant basique/acidique? et acidophile ou basophilie

A

Positif, basique, aime colorant acide , donc acidophile

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
3
Q

Colorant positif = basique , est un colorant…..

A

Colorant cationique

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
4
Q

Colorant negatif = acide , est un colorant…..

A

Colorant anionique

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
5
Q

Colorant + mordant =

A

Laque

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
6
Q
  1. Coloration non nucléaires, du principalement au protéine : ont un groupement terminal….
  2. Cette charge dépend du pH
A

1.Protéine peut être soit + (aminé NH2+) ou - (carboxyle COO-) ou les deux (amphotère)

  1. pH 6 = Neutre pour les protéines
    pH plus 6 = protéine - = aime colorant cationique
    pH moins 6 = protéine + = aime colorant basique
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
7
Q

Comment ralentir suroxydation (HE)

A

L’ajout HCl

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
8
Q
  1. Hématoxyline oxydé =

2. Suroxydé =

A
  1. Hématéine

2. Oxyhématéine

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
9
Q

*RT

Avantage et désavantage d’un paraffine avec point fusion bas

A

Point de fusion bas

  • avantage: plus facile a faire des rubans
  • désavantage: mauvais support pout des tissus dur et sections minces plus difficile à obtenir
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
10
Q

*RT

Avantage et désavantage d’un paraffine avec point fusion élevé

A

Point de fusion élevé

  • avantage: meilleur support pour tissu dur et plus facile à obtenir des sections minces
  • désavantage: plus difficile a faire des rubans
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
11
Q

Durcissement de la paraffine, Pour une cristallisation uniforme on doit…

A

Attendre que la plaque réfrigérante soit bien froid ~4oC

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
12
Q

Comment oriente une pièce avec l’encre de chine?

A

Tu veux voir la partie avec l’encre et sans l’encre en même temps

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
13
Q

Erreur plus fréquente lors enrobage

A

Orientation du spécimen

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
14
Q

Tissu trop froid cause lors enrobage cause

A

Formation d’un halo autour la pièce, le tissu ce détache de la paraffine pendant la coupe

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
15
Q

Refroidissement trop vite du bloc cause.. lors enrobage

A

Bloc à surface concave

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
16
Q

Refroidissement trop lent cause.. lors enrobage

A

Cristallisation irrégulière

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
17
Q

Tissu d’apparence molle, morceau sent comme le xylène

  • cause
  • précention
  • retrait/correction
A

Cause: trop épais ou le tissu est compresser par le cassette

Prévention: coupe plus mince, assure bien fixé, fair sur le circulateur fonctionne bien

Retrait/correction:

  1. coupe plus mince et remettre cassete à traiter ( xylène, tetrahydrofurane, xylene, paraffine/imprégnation et renrober)
  2. Fixation incomplète: fondre parraffine, circulateur, demarre nettoyage, passer manuellement 95 et 70%, mettre formol et recirculer
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
18
Q

enrobage ,Contamination:
Cause
Prévention

A

Cause: transfert de fragments de tissu d’un autre spécimen

Prévention: nettoyer pinces et ouvrir une seule cassette à la fois

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
19
Q

enrobage Morceaux de tissu manquants:
Cause
Prévention

A

Cause: manque attention ou erreur à la salle de coupe

Prévention: noter # de fragments sur cassette, vérifier sur le couvercle de la cassette avant la jeter
Et attention de l’utilisation lens paper ou tea bag

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
20
Q

Pourquoi congeler?

A

STAT, le patient est dans la salle d’opération

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
21
Q

*RT

Comment on maintien le tout? cryostat

A
  1. Décongeler le cryostat
  2. Nettoyer
  3. Lubrifie les partie mécaniques
  4. Si le mécanisme devient raide= traiter avec alcool 100%, assécher puis lubrifier
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
22
Q 
*RT maybe
Troubleshoot
1. Section adhère à la plaque
2. Section frottent la plaque
3. Section avec égratignures
4. Section ne glisse pas entre plaque et couteau
A
  1. Plaque trop chaud
  2. plaque trop avancé par rapport au couteau
  3. Plaque endommagé
  4. Plaque trop éloignée
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
23
Q

circulation

Étapes (3)

A
  1. Dèshydratation (alcool)
  2. Éclaircissement (xylène)
  3. Imprégnation (paraffine)
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
24
Q

Bains déshydration

A

Éthanol : 70%, 95%, 100%, 100%, 100%

Tissu fragile ex cerveau ou embryon : 30% et non 70%

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
25
Q

*RT

Quoi on peut ajouter dans le dernier bain d’alcool pour verifié si il y a de l’eau?

A

Sulfate de cuivre anhydre, bleu=présence d’eau

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
26
Q

*RT

Agents déshydratant qui est un solvant universel

A

Tétrahydrofurane (THF), très utile lorsqu’on reprend déshydratation et éclairssement

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
27
Q

Présence de précipités dans la chambre et les tubulures du circulateur
-cause
RT *-prévention
RT *-retrait/correction

A

Cause: formol-zinc ou tamponné
Prévention: débute déshydratation 60% et pH moins de 7
Retrait/correction: rinçant chambre et tubulures avec acide acétique 5%

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
28
Q

ciruclation, Déshydratant excessive

  • apparence
  • cause
  • prévention
A

Apparence: microchatter
Cause: trop longtemps en déshydratation
Prévention: diminuer le temps en déshydratation

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
29
Q

Circulation inadéquate

  • Apparence
  • Cause
  • Prévention
A
  • Apparence: pauvre coloration
  • Cause: l’eau dans le tissu lors éclaircissement ou présence d’agent éclaircissement (dilué), trop chaud et problème mécanique
  • prévention: assurer l’alcool 100% est pur, chaleur seulement pour paraffine…
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
30
Q

circulation, Dessiccation (assèchement)

  • cause
  • prévention
A

Cause : tissu laissé dans l’air libre

Correction: enlever plus de paraffine possible et placer le tissu dans la solution réhydratante

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
31
Q

microtome, Angle de dégagement trop grand cause…(6)

A 
Grattage du bloc
Pas de ruban
Coupe s'enroule
Coupe se déchire
Chattering
Ondulation
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
32
Q

microtome, Angle de dégagement trop petit cause… (4)

A
  1. Coupe comprimées
  2. Coupes plissées
  3. Coupe décollent du rasoir et adhèrent au bloc
  4. Coupe d’épaisseur inégale(mince à épais)
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
33
Q

microtome, Ruban de section est incurvé, 4 causes et correction

A

Cause

  1. Bords du bloc ne sont pas parallèles
  2. Bord du bloc et pas parallèle au couteau
  3. Surplus paraffine sur côté du bloc
  4. Couteau émoussé

Correction

  1. Aligner le bloc
  2. S’assurer le bloc est parallèle du couteau
  3. Enlever surplus paraffine
  4. Déplacer/remplacer couteau
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
34
Q

microtome, La surface du bloc n’est pas sectionnée également

1 cause et correction

A

Cause
1. Le porte-bloc/bloc pas parallèle au couteau

Correction
1. Assurer la surface du bloc est parallèle avec le couteau

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
35
Q

microtome, Troues dans la section

4 causes et correction

A

Cause

  1. Attaque de bloc trop aggressive
  2. Déshydratation excessive
  3. Air dans le tissu lors l’imprégnation
  4. Imprégnation incomplète du tissu ou mauvais circulation

Correction

  1. Rabotage plus douce, et trempé bloc dans l’eau glacée
  2. Tremper le bloc dans l’eau glacé
  3. Reimprégner
  4. Reimprégner ou recirculer
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
36
Q

microtome, Aucun formation de ruban

5 cause et correction

A

Cause

  1. Couteau émoussé
  2. Paraffine trop dure
  3. Angle de dégagement trop grand
  4. Température trop bas
  5. Débris sur le couteau

Correction

  1. Déplacer/remplacer couteau
  2. Remplacer avec la paraffine avec point fusion plus bas
  3. ajuster l’angle de dégagement (diminue)
  4. Ajuster la température
  5. Nettoyer la lane avec un peu de xylène
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
37
Q

microtome,
Sections adhèrent au bloc
4 cause et correction

A

Cause

  1. Couteau émoussé
  2. Angle de dégagement trop faible
  3. Température trop élever
  4. Paraffine trop molle
Correction
1. Déplacer/changer couteau
2 augmente angle dégagement
3. Ajuster la température de la pièce
4. Utiliser une paraffine plus dure
38
Q

microtome,
Présence d’ondulation (washboarding)
4 cause et correction

A

Cause

  1. Couteau ou bloc pas serré
  2. Pièces du microtome trop usées
  3. manche du microtome sortie a son maximum
  4. Angle de dégagement trop grand

Correction

  1. Serrec le bloc ou lame du couteau
  2. changer les pièces
  3. Rentrer la manche
  4. Réduire l’angle de dégagement
39
Q

microtome, Chatter ou microvibration

5 causes et corrections

A

Cause

  1. Tissu trop déshydraté
  2. manque d’hunidité dans le tissu
  3. Couteau émoussé
  4. Angle de dégagement trop grand
  5. Coupe trop rapide

Correction

  1. Vérifier la cédule de l’appareil à circulation
  2. Mettre le bloc dans l’eau glacé
  3. Changer le couteau
  4. Réduire l’angle de dégagement
  5. Réduire la vitesse de coupe
40
Q

microtome, Sections alternent entre épaisse et minces

2 cause et correction

A

Cause

  1. Angle de dégagement trop petit
  2. Défaut dans le mécanisme du microtome

Correction

  1. Augmente l’angle dégagement
  2. Vérifie le fonctionnement du mécanisme
41
Q

microtome, Sections comprimées

6 cause et correction

A

Cause

  1. Couteau émoussé
  2. Couteau avec débris de paraffine
  3. Paraffine derrière couteau
  4. Angle de dégagement trop faible
  5. Température ambiante trop élevée
  6. Coupe trop rapide

Correction

  1. Déplacer ou changer le couteau
  2. Nettoyer le couteau
  3. Nettoyer le tout
  4. Augmenter l’angle de dégagement
  5. Diminuer la température
  6. Plus lentement
42
Q

microtome, Présence de stries

2 cause et correction

A

Cause

  1. Couteau encoché à un endroit
  2. Particules dures dans le tissu ou dans le paraffine

Correction

  1. Déplacer ou changer le couteau
  2. Décalcifier pour enlevé calcium
43
Q

microtome, Sections s’envolent et se collent aux objects

1 cause et correction

A

Cause
1. Électricité statique

Correction
1. Humidifier l’air

44
Q

microtome, Sections s’enroulent

3 causes et correction

A

Cause

  1. Couteau émoussé
  2. Angle de dégagement trop grand
  3. Épaisseur des sections trop grande pour le.type de paraffine

Correction

  1. Déplacer/changer le couteau
  2. Réduire l’angle de dégagement
  3. Réduire l’épaisseur des sections
45
Q

Température

  1. plaque chauffante
  2. cerveau (tissu délicate)
  3. imminohisto
  4. bain
A
  1. 60oC
  2. 37oC
  3. 40oC
  4. 5 à 10 sous le point fusion du paraffine
46
Q

etalement, Temps d’exposition avec l’eau cause..

A

Gonflement du tissu, apparence terre desséchée

47
Q

etalement, Température de l’eau trop élever cause… et trop bas cause…

A

Trop haut : terre desséchée

Trop basse: aplanissement incomplet

48
Q

Volume de fixateur requis

A

20x plus que la pièce

49
Q

Ce que sa veut dire fixation par couche?

A

Le tissu = trop épais donc le milieu nest pas fixer

50
Q

Nomme les 5 pigments artéfacts, aussi le retrait et prévention

A
  1. pigment formol(brun)
    - retrait : solution alcoolique et acide pictique
    - prévention : fomol tamponné
  2. Pigment mercure(brun-noir)
    - retrait: iode alcoolique et thiosulfate de sodium
    - prévention : éviter le mercure
  3. Pigment chrome (rouille,brun,noir)
    - retrait : alcool acide
    - prévention: eau courante
  4. Pigment picrique(jaune)
    - retrait : thiosulfate de sodium ou carbonate de lithium ( blanchissement)
    - prévention: évite l’acide picrique
  5. Pigment carbone(noir)
    Retrait/prévention= rien (deja la)
51
Q

Quoi colore les noyaux?

A

Hématéine de harris

52
Q

Quoi fait la différentiation des noyaux?

A

Alcool-acide

53
Q

Quoi cause le bleuissement des noyaux?

A

Carbonate de lithium

54
Q

Quoi couleur les éléments non nucléique

55
Q

HE :Manque de détail nucléaires

  1. Apparence
  2. Cause
  3. Prévention
A
  1. Noyau semble brouillés ou boueuse
  2. Fixation incomplet
  3. Fixer les tissus complètemen
56
Q

HE :Noyau trop pale

  1. Cause
  2. Prévention
  3. Correction
A
  1. Hématoxyline trop faible
  2. Plus longtemps dans l’hématéine
  3. recolorer
57
Q

HE :Noyau trop foncé

  1. Cause
  2. Prévention
A
  1. Section top épais ou trop longtemps dans hématoxyline

2. assure bonne épaisseur, et moins temps dans hématoxyline

58
Q

HE :Noyau de couleur rouge-brun

  1. Cause
  2. Prévention
A
  1. Hématoxyline pas bon ou skipper étape bleuissement

2. Vérifier l’oxydation de l’hématoxyline et assure un bon bleuissement

59
Q

HE :Cytoplasme pale

  1. cause
  2. Prévention
A
  1. pH plus que 5, section trop mince ou trop rester dans l’alcool
  2. Acidifier éosine
60
Q

HE :Précipité bleu-noir

  1. Cause
  2. Prévention
A
  1. Couche métallique dans hématoxyline ramasser sur la lame

2. Filtrer

61
Q

HE :Eau ou coupe aspect brumeux/laiteux

  1. Cause
  2. Prévention
A
  1. Présence xylène dans l’eau et la coupe

2. Bonne rotation des bains d’alcool

62
Q

Grocott

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A 
1. Mycose
2.
- Contour mycose = noir
-intérieur mycose = gris
- fond = vert
63
Q

Bleu de prusse

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
  3. Notes
A 
1. Fer ferrique Fe3+ / hémosidérine
2.
-fer = bleu
-autre rose
3. Utilise pas matériel métallique, et solution ferrocyanure préparé immédiatment avant l'emploi
64
Q

Bleu de turnbull

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Fer ferreux Fe2+
    2.
    -fer = bleu
    -autre = rose
65
Q

Masson-fontana

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
  3. Notes
A 
1. Mélanine (granulation argentaffine)
2.
-mélanine = noir
Autre = rose
3. Pigment formol = faux positif
66
Q

Fouchet

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Bilirubine
    2.
    - Bilirubine = vert
    -fond jaune
67
Q

Von kossa

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Calcium
    2.
    - calcium = noir
    - fond = rouge
68
Q

Rhodamine

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Cuivre
    2.
    -cuivre = rouge
    - autre = bleu
69
Q

Bleu de toluidine

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Mastocyte
    • mastocyte = violet foncé
      - fond = bleu
70
Q

Huile rouge O

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Lipide neutre

2. Rouge

71
Q

Noir soudan B

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Lipide neutre mais plus spécifique pour les phospholipides
  2. Noir
72
Q

APS

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Aldéhyde (polysaccharides neutres et membrane basale)
    2.
    -glycogène et membrane basale =magenta
    - autre = bleu
73
Q

APS-D

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A 
1. Glycogène
2.
-membrane basale = magenta
-glycogène = incolore
-autre = bleu
74
Q

APS

  1. Type de reaction
  2. Oxydation par..
  3. Réaction de …
  4. Enzyme
  5. Pas adhésif à base …
A
  1. Histochimique
  2. Acide périodique
  3. Schiff
  4. Diastase (troube dans la salive)
  5. Amidon
75
Q

Bleu alcian pH 2.5

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Mucopolysaccharide acides et glycoprotéine sulfaté et carboxylé
    2.
    -mucines acide = turquoise
    -autres = rose
76
Q

Bleu alcian pH 1.0

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
A
  1. Mucopolysaccharide acide et glycoprotéine sulfaté SEULEMENT
    2.
    - mucines acide sulfaté = turquoise
    - autre = rose
77
Q

Rouge congo

1. Mise en évidence

78
Q

Gordon et sweet

  1. Mise en évidence
  2. Résultat attendus
  3. Réaction
  4. Étape imprégnation
A 
1. Fibres réticulines
2.
- réticuline = noir
- autre = rose
3. Argyrophile
Étapes
1. Oxydation
2. Sensibilisation
Seulement pour argyrophile
3.imprégnation
4. Réducteur
5. Virage
6. Réducteur
7. Contrecolorant
79
Q

Cette colorant utilise un méthode d’imprégrénation à l’argent est courante pour la mise en évdense des champignons

80
Q

Quel colorant : le fer ferreux libéré du tissu réagit avec le réactif pour produire un précipité bleu

A

bleu de turnbull

81
Q

Quel colorant : les fibres de collagène sont différenciées du muscle lisse avec e type de coloration

A

trichrome de masson

82
Q

Quel colorant : les lipides colorés par cette méthode sont de couleur rouge

A

huile rouge O

83
Q

Quel colorant : il est possible de colorer en bleu les mucopolysaccharides acides carboxylés et sulfatés dans une mêm section de tissu en utilisant cette méthode

A

bleu acian pH 2.5

84
Q

Quel colorant : cette méthode est utilisée pour mettre en évidence les fibres élastiques dans un tissu comme l’aorte

A

hemateine de verhoeff

85
Q

Quel colorant : cette méthode est utilisée principalement pour mettre en évidence les pigments de cuivre

86
Q

quel couleur le colorant donne: suite à la coloration à l’hématéine de Harris et éosine les noyauxdevraient apparaitre

87
Q

quel couleur le colorant donne: sur une coupecolorée au trichrome de masson, ls fibres musculaires devraient apparaitre

A

rouge/magenta

88
Q

quel couleur le colorant donne: de quelle couleur la méthode du trichrome de masson devrait en théorie colorer les noyaux?

89
Q

quel couleur le colorant donne: suite à une méthode d’imprégnation à l’argent, les fibres de rticuline dervraient apparaitre

90
Q

quel couleur le colorant donne: suite à une réaction au APS et diastase, le glycogène devrait aparaitre

🦠RT (11 decks)

Brainscape helps you reach your goals faster, through stronger study habits.
© 2025 Bold Learning Solutions. Terms and Conditions