Cours 9 Flashcards

quantification de l'expréssion génique

1
Q

On évalue l’expression d’un gène en mesurant directement _____ (2)

A
  1. le niveau d’ARN
  2. le niveau de protéines
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2
Q

qui suis-je, cette enzyme peut dégrader des substrats synthétiques

A

beta-galactosidase (dont le gène lacZ code)

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3
Q

utilisations du gène rapporteur
(3)

A
  1. déterminer le niveau d’expression
  2. déterminer la condition favorisant l’expression maximale
  3. déterminer la localisation
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4
Q

Méthodes d’analyse de l’expression génique en ordre de décroissance pour la quantité de matériel génétique nécessaire

A
  1. Northern blot (10 ug)
    2.RT
  2. RT-PCR
  3. qRT-PCR (ng)
    4.Biopuce (ug)
  4. RNA-seq (1fg)
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5
Q

Les méthodes de RT, RT-PCR, qRT-PCR dépendent de quoi

A
  1. la quantité et qualité de l’ARN
  2. SANS ADN
  3. pas d’inhibiteur co-purifié de la RT; sans nucléase
  4. besoin de la séquence (pour faire amorces)
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6
Q

qui suis-je, analyse transcriptomique qui mesure le niveau de toutes les molécules d’ARN résultat de la transcription

A

transcriptome

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7
Q

vrai ou faux, contrairement à l’ADN, la composition de l’ARN est variable

A

vrai, les gènes ne sont pas tous exprimés simultanément et l’expression varie selon les différentes conditions

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8
Q

Avantage et désavantages de la biopuce

A

Avantage: mesure simultanément l’expression de tous les gènes d’un organisme
Désavantages:
1. dégradation de l’ARN (courte demi-vie)
2.marquage (plusieurs mg de matériel_
3. interprétation

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9
Q

2 types de biopuce

A
  1. “microarray” ORF (produit PCR)
  2. oligonucléotide (amorce)
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10
Q

vrai ou faux, la biopuce est recyclable

A

vrai

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11
Q

Applications de la biopuce

A
  1. comparer l’expression
  2. déterminer l’Expression
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12
Q

Quel méthode utilisé pour analyser l’expression d’un gène bactérien durant l’infection

A

qRT-PCR

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13
Q

Quel méthode utilisé pour analyser l’expression de tous les gènes bactériens durant l’infection

A

transcriptome

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14
Q

Classe d’abondance de l’ARNm

A
  1. Forte (240 messages) (95% de la masse d’ARNm)
    2.Medium (1300 messages)
  2. faible (700 messages)
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15
Q

Méthodes utilisées lorsque qu’on veut un modèle (pathogène intracellulaire) avec peu de cellules de l’hôte (eucaryote)

A
  1. chambre à dialyse
  2. liquide physiologique (selle ou urine)
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16
Q

Étape infection de macrophages

A
  1. ajout de bactéries à des macrophages
    2.phagocytose (20min)
  2. lavage
  3. déterminer le nombre de bactéries après phagocytose (T0)
  4. ajout du milieu + gentamicine (tue bactéries extracellulaires)
  5. déterminer le nombre de bactéries après différents temps post-infection
17
Q

Étapes SCOTS

A
  1. Extraction ARN total
  2. RT de l’ARNm: ARNm bactérien rétrotranscrit en ADN complémentaire (ADNc) avec séquence terminale défnie
  3. Hybridation ADNc/ADN génomique: pour augmenter les chances de capturer l’ARNm, l’ADN bactérien biotinylé es pré-hybridé avec de l’ADNr pour bloquer ces sites et ainsi diminuer l’hybridation d’ARNr (85% ARN total)
  4. Capture sélective: hybrides ADNc-ADNg sont capturés par l’utilisation de billes magnétiques couplées à la streptavidine
  5. Élution des hybrides
  6. PCR
  7. 2 rondes supplémentaires sont réalisées pour aller chercher le transcrit de la classe moyenne et faible.
18
Q

But SCOTS

A

Capturer et enrichir les séquences d’ARNm bactériens transcrits, afin d’identifier les gènes exprimés lors d’une infection

19
Q

Applications SCOTS

A
  1. analyser interaction hôte-pathogène
  2. identifier gènes
    3.détecter l’expression de gènes à partir de peu de bactéries
19
Q

RNA-seq

A

Séquençage d’ARN à haut débit qui permet de détecter la présence et la quantité de tous les ARN

19
Q

différence entre RNA-seq et microarray

A

contrairement au microarray, le RNA-seq n’a pas besoin de connaitre le génome

19
Q

applications RNA-seq

A
  1. SNP (polymorphisme)
  2. découverte de mutation impliqué dans le cancer (gène différentiellement exprimé)
20
Q

Nommer 3 gènes rapporteur

A

LacZ, lux, GFP

21
Q

étapes vaccin à ARNm

A
  1. clonage du gène dans un plasmide
  2. extraction du plasmide; digestion; purification
  3. ADN en ARNm : 16 litres; purification
  4. mélange de l’ARNm avec des lipides; électrochoc d’une nanoseconde= émulsion huileuse (protection de l’ARNm et augmente l’entrée dans les cellules)
  5. transfère dans une fiole et congélation à -80= vaccin