COURS 11 Flashcards

1
Q

quantité et pureté requise en immunologie

A

ug-mg et haute pureté

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2
Q

quantité et pureté requises pour la structure (cristallographie)

A

mg-g et haute pureté

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3
Q

cette utilisation nécessite des g-kg et une très haute pureté

A

pharmaceutique

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4
Q

quantité et pureté requises pour utiliser des enzymes industriels

A

kg-tonnes et pureté variable

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5
Q

Comment augmenter la production d’ADN?

A

Augmenter le taux de transcription

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6
Q

étapes générales pour purifier une protéine

A
  1. lyse cellulaire
  2. centrifugation du débris cellulaire et composants insolubles = on garde fraction soluble sans débris
  3. précipitation des acides nucléiques (liquide visqueux= ADN + ribosomes éliminés) = reste fraction protéique
    4.séparation brute par précipitation = reste fraction protéique enrichie
  4. chromatographie en phase liquide= protéine purifiée
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7
Q

Nommer 5 procédés de séparation utilisé pour séparer des protéines

A
  1. précipitation (sulfate d’ammonium et polyéthyènelimine)
  2. chromatographie
  3. électrophorèse
  4. centrifugation
  5. ultrafiltration
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8
Q

2 méthodes principales de lyse cellulaire et leur désavantage

A
  1. Physique (Gel/dégel, pression: sonication, french press)
    Désavantage: possibilité de dénaturation
  2. Chimique/enzymatique (lysozyme+nucléases) Désavantage: moins de chances de dégradation; volumes plus larges
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9
Q

Pourquoi précipiter

A
  1. préparer les cellules à une prochaine étape (ex. chromatographie)
  2. méthode de purification pour éliminer de la concentration
  3. concentrer les protéines
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10
Q

molécule la plus utilisé pour précipiter

A

sulfate d’ammonium permet une précipitation stable

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11
Q

“salting out”

A

les changements de la concentration de sel en solution peuvent avoir un effet sur la solubilité des protéines

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12
Q

qu’est-ce qu’un ion kosmotropique

A

ion stabilisant

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13
Q

qu’est-ce qui arrive si on utilise de l’urée pour précipiter?

A

augmenter la concentration = dénaturation de la protéine, seulement la structure primaire est maintenue et solubilisation de la protéine précipitée

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14
Q

qu’est-ce qu’un ion chaotropique

A

ion dénaturant

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15
Q

Que faire si la solution a trop de sel

A

dialyse utilisant une membrane semi-perméable dans un tampon spécifique

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16
Q

qui suis-je, même principe que la dialyse, sauf utilisant une centrifugeuse

A

ultrafiltration

17
Q

la charge des protéines dépend de quoi?

A
  1. la séquence en a.a. (point isoélectrique)
    2.le pH de la solution
18
Q

Cette méthode de purification illustre des protéines qui interagissent avec une matrice avec des propriétés différentes

A

chromatographie

19
Q

comment calculer pI

A

différence entre la somme des a.a. acidiques - somme des a.a. basiques

20
Q

flow through (1er pic)

A

protéines qui ne collent pas

21
Q

Quelle est l’absorbance utilisée lors d’une chromatographie sur tamis moléculaire pour l’identification des fractions possédant des protéines

22
Q

lors de la chromatographie sur tamis moléculaire quelle est l’ordre d’élution des protéines

A

grosses protéines, moyennes, petites

23
Q

cette méthode permet aussi de faire des dosages enzymatiques

A

chromatographie sur tamis moléculaire

24
Q

combien d’a.a. sont hydrophobes sur 20

25
vrai ou faux, la majorité des a.a. hydrophobes sont cachés à l'intérieur de la protéine
vrai
26
type de gradient utilisé lors d'une chromatographie aux interactions hydrophobes
Gradient décroissant [Beaucoup sel]-->[Moins sel]-->0
27
cette méthode est souvent utilisé après l'étape de traitement au sulfate d'ammonium
chromatographie aux interactions hydrophobes
28
Qui suis-je, basée sur des liaisons spécifiques d'une protéine pour un ligand
chromatographie d'affinité
29
l'immunoaffinité (Ag-Ac) appartient à quel type de chromatographie
chromatographie d'affinité
30