cours 10 Flashcards

1
Q

vrai ou faux, les clonages avec bouts francs sont beaucoup plus efficaces

A

faux, ce sont les clonages avec bouts cohésifs qui sont plus efficaces

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Q

qui suis-je, utilisation d’une seule enzyme de restriction et l’insert peut se lier dans les 2 orientations possibles

A

clonages avec bouts cohésifs non directionnels

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Q

qui suis-je, utilisation de 2 enzymes de restriction différentes pour obtenir la ligation de l’insert dans le sens désiré

A

clonages avec bouts cohésifs directionnels

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4
Q

qui suis-je, transfert de l’insert d’un vecteur à un autre vecteur (couper-coller)

A

sous-clonages

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5
Q

avantage du clonage directionnel

A

l’obtention de l’insert dans le sens désiré permet l’expression appropriée de la séquence clonée qui est dans la bonne orientation par rapport au promoteur

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6
Q

vrai ou faux, les digestions doubles permettent 2 orientations possibles

A

faux, une seule orientation possible (2 enzymes différentes)

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7
Q

digestion d’ADN par deux enzymes de restriction distinctes en une même étape et dans les mêmes conditions réactionnelles

A

digestions doubles

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8
Q

Quelles pourraient être les conséquences de ne pas adapter les conditions de réaction de façon appropriée?

A

Digestion partielle (une enzyme sera favorisée plus que l’autre (en 2 étapes)) ou activité “étoile”

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9
Q

Que faire lorsque les caractéristiques des 2 enzymes sont trop différentes pour permettre une digestion double efficace?

A

procéder par digestions simples séquentielles. L’ADN cible doit être purifié entre chaque étape de digestion pour établir des conditions de tampon de réaction différentes lors des 2 étapes de digestion

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10
Q

Est-ce possible de conceptualiser un clonage directionnel avec deux enzymes de restriction différentes qui génèrent des bouts francs?

A

Non, les bouts francs ne sont pas spécifiques et donnent 2 orientations possibles

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11
Q

Est-ce possible de conceptualiser un clonage directionnel avec 1 enzyme de restriction qui génère des bouts francs et 1 enzyme de restriction qui génère des bouts cohésifs?

A

Oui, 2 bouts à spécificité différentes

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12
Q

Est-ce possible de se retrouver en situation de clonage non directionnel avec des bouts cohésifs provenant de 2 enzymes de restrictions différentes?

A

non, mais dépend des extrémités

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13
Q

Vrai ou faux, des enzymes de restrictions différentes peuvent générer des bouts cohésifs compatibles

A

vrai, par ex. BamHI et BglII

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14
Q

Comment choisir les enzymes de restriction pur un clonage

A
  1. conceptualiser le clonage désiré in silico (clonage directionnel)
  2. sélectionner les enzymes appropriées selon la disponibilité des sites de reconnaissance sur le vecteur de clonage
    3.s’assurer que les enzymes sélectionnées ne clivent pas dans l’insert à cloner
  3. vérifier que les enzymes sélectionnées peuvent être utilisées en condition de digestion double
  4. s’assurer que les bouts cohésifs générés par les 2 enzymes différentes ne sont pas compatibles
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15
Q

Que faire dans une situation où une des 2 seules enzymes pouvant être utilisées pour un clonage directionnel a un site de restriction dans l’insert?

A
  1. effectuer une mutagenèse dirigée conservative pour éliminer le site de restriction dans le gène. (changer 1 nucléotide de la séquence) (Avec amorce!)
  2. procéder à un clonage non directionnel (utilisation d’une seule enzyme - celle qui ne clive pas dans l’insert)
  3. utiliser une autre enzyme produisant des bouts cohésifs compatibles avec l’enzyme ne pouvant être utilisée pour digérer l’insert (attention à la reformation du site suite à la ligation)
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16
Q

Comment s’assurer de l’efficacité des digestions?

A

contrôles de digestions simples avec chaque enzyme sur le vecteur de clonage

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17
Q

Comment analyser les résultats des digestions? et pourquoi?

A

une analyse de taille sur gel parce que l’ADN linéaire migre moins que l’ADN circulaire enroulé

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18
Q

quel est l’effet d’une digestion ?

A

linéarisation

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19
Q

étape entre la digestion et la ligation

A

inactivation ou élimination des enzymes de restriction

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20
Q

Comment les enzymes de restriction sont-ils inactivées ou éliminées?

A

à la chaleur ou purification de l’ADN digéré

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21
Q

qui suis-je, enzyme qui lie de façon covalente l’extrémité 5’-P et 3’-OH des séquences d’ADN à proximité.

A

ADN ligase T4

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22
Q

vrai ou faux, l’ADN ligase T4 requiert un apport énergétique fourni par l’hydrolyse de l’ATP

A

vrai

23
Q

De quelle façon la l’ADN ligase T4 est-elle inactivée

A

par la chaleur

24
Q

conditions optimales pour la ligase T4

A

bonne activité à 16 degrés + longue période d’incubation

25
Q

vrai ou faux, la réaction de ligation est plus efficace avec les bouts francs

A

faux, elle est plus efficace avec les bouts cohésifs simples brins qui forment des pont-H par complémentarité

26
Q

L’efficacité de la ligation des bouts francs dépend de quoi?

A

L’efficacité est dépendante de la probabilité de contact moléculaire selon le mouvement brownien et la concentration de l’ADN

27
Q

l’étape la moins efficace d’un processus de clonage moléculaire

A

la ligation

28
Q

Quelle est le meilleur ratio molaire insert:vecteur pour assurer une efficacité maximale

A

3:1
la réaction contient 3X plus de molécules d’insert que de molécules de vecteur

29
Q

Quel serait l’impact de diminuer le ratio molaire insert:vecteur à 1:1

A

peut se recirculariser sans avoir un insert

30
Q

Quel serait l’impact de diminuer le ratio molaire insert:vecteur à 9:1

A

multiples inserts dans clonage, pas le produit désiré, mauvais réarrangement, moins de recircularisation

31
Q

Comment s’assurer de l’efficacité de la ligation?
Comment analyser les résultats?
Quel est l’effet de ce contrôle?

A

faire un essai de ligation avec un vecteur ayant été linéarisé suite à la digestion par une seule enzyme
circularisation du vecteur,
ce qui entraine la formation de structures enroulées de l’ADN de poids moléculaires plus élevés observables sur gel d’agarose, et qui permet au vecteur d’être maintenu dans les cellules bactériennes après transformation.

32
Q

Comment réduire la probabilité de sélectionner le vecteur parental (non recombinant) avant la transformation?

A
  1. purification du vecteur digéré sur gel pour éliminer les traces de vecteur parental non digéré
  2. déphosphorylation du vecteur (jamais sur l’insert) pour éviter que le vecteur parental se reconstitue par ligation (réaction de ligation a besoin extrémité 5’-P)
  3. Digestion avec enzyme de restriction dans l’insert parental suite à la ligation pour linéariser les vecteurs parentaux
33
Q

que ne faut-il pas oublier pour vérifier l’efficacité de la digestion simple

A

le contrôle sans ligation

34
Q

Pourquoi est-il si important de réduire le nombre de molécules du vecteur parental avant la transformation

A

Parce que le vecteur parental est surenroulé dû à son passage in vivo, et a une efficacité de transformation plus grande que l’ADN non surenroulé comme la construction moléculaire effectuée par ligation in vitro

35
Q

Dans quel cas est-il nécessaire d’inactiver ou éliminer la ligase avant l’étape de transformation?

A

Lorsqu’il faut effectuer une digestion pour linéariser les vecteurs parentaux

36
Q

Transformation d’ADN

A

Insertion d’ADN extracellulaire dans une cellule bactérienne

37
Q

compétence bactérienne

A

capacité d’une cellule bactérienne à recevoir de l’ADN extracellulaire dans son cytoplasme

38
Q

espèce bactérienne naturellement compétente

A

B. subtilis

39
Q

Comment la compétence et la transformation sont induites?

A

La compétence par traitement chimique
la transformation par choc thermique ou électrique

40
Q

pourquoi les cellules compétentes doivent être gardées au froid?

A

pour préserver leur viabilité et leur compétence

41
Q

pourquoi le chlorure de calcium ou de rubidium rend les cellules compétentes?

A

Ces sels contiennent des cations divalents qui neutralisent les charges négatives des acides téichoiques ou LPS à la surface des bactéries et de l’ADN

42
Q

vrai ou faux, la transformation est un processus où l’ADN est incubé 30min avec les cellules sur glace, suivi d’une incubation 42 degrés pendant 2min, et un retour sur glace 2min. Les cellules sont ensuite incubées dans un milieu riche pour permettre leur récupération et la réplication des plasmides intégrés et l’expression du gène de sélection (résistance à un antibiotique)

A

vrai

43
Q

vrai ou faux, l’électroporation est plus efficace que le choc thermique

A

vrai

44
Q

vrai ou faux, l’ADN à électroporer doit être dans l’eau (ne pas contenir de sels)

A

vrai

45
Q

Pourquoi l’ADN électroporer ne doit pas contenir de sels et comment les cellules deviennent-elles électrocompétentes

A

avec des lavages multiples au glycérol et des incubations sur glace ce qui stabilise l’enveloppe bactérienne. La présence de sel diminue l’efficacité de la transformation par électroporation et peut même causer des arcs électriques

46
Q

vrai ou faux, l’efficacité de la transformation est bcp plus élevée avec de l’ADN non surenroulé

A

faux, elle est plus élevée avec de l’ADN surenroulé

47
Q

contrôles pour évaluer l’efficacité d’un clonage

A
  1. cellules compétentes seules (pour vérification des cellules et du milieu sélectif)
  2. réaction de ligation avec le vecteur seul (sans insert) pour évaluer le bruit de fond du clonage par le vecteur parental
48
Q

Vrai ou faux, si le nombre de transformants sur les boîtes de clonage est significativement plus élevé que le nombre de transformants sur les boîtes de contrôles avec le vecteur seul, le clonage a bien fonctionné

A

vrai

49
Q

Lors de la confirmation d’une construction, quel est le contrôle négatif et le controle positif

A

contrôle négatif: vecteur parental
contrôle positif: source original de l’insert

50
Q

Par quelle méthode la construction est-elle confirmée (2)

A

par PCR ou par digestion

51
Q

Quels sont les problèmes qui peuvent diminuer les chances de succès d’un clonage moléculaire?

A
  1. mauvaise qualité de l’ADN utilisé
  2. faible efficacité de digestion ou activité étoile
  3. faible efficacité de ligation
  4. faible efficacité de transformation
  5. sélection du vecteur parental suite à la transformation
52
Q

chez les eucaryotes, plasmides qui peuvent se reproduire et être sélectionnés dans plus d’un organisme

A

PLASMIDES NAVETTES

53
Q
A