Comportement des microbes Flashcards

1
Q

Deux modes de vie des microbes unicellulaires

A

Forme planctonique : forme libre en suspension dans un milieu liquide
Biofilm : une forme de communauté microbienne, sédentaire (forme la plus abondante dans la nature)

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2
Q

Communauté microbienne

A

Ensemble de microorganismes (espèces et souches différentes) qui vivent ensemble en communauté sur un support, en formant le plus souvent des biofilms

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3
Q

Isolat

A

Microorganisme qu’on a isolé (on connait pas encore sa fonction)

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4
Q

Souche

A

Gène particulier , spécifique.

On associe une fonction à cette souche, gène acquis par un isolat en question

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5
Q

Biofilm

A
  • Communauté microbienne (bactéries, champignons,
    algues, protistes,…) fixée sur un support et maintenue
    par la sécrétion d’une matrice adhésive et protectrice
  • Structure vivante, dynamique, en perpétuel remaniement
    en conférant un habitat propice aux microorganismes
    -Organisation sociétale des microorganismes
  • Lieu de communications et d’échanges de gènes entre
    les microorganismes
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6
Q

Composition du biofilm

A

Biofilm est enveloppé d’une couche protectrice de substances polymères extracellulaires d’éxopolysaccharides = Extracellular Polymeric Substances (EPS), formées de Polyosides et ADN

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7
Q

Qui produit de EPS?

A

Sécrétées par les microorganismes qui les protègent contre les stress environnementaux (antibiotiques, UV, prédation, nettoyage, etc.)

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8
Q

Où se forme les biofilms?

A

Toutes les surfaces dans un environnement humide avec présence d’éléments nutritifs est susceptible d’accueillir des biofilms

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9
Q

Biofilm étape 1 – Attachement et conditionnement du support

A
  • Absorption et formation d’un film de conditionnement
  • L’attachent est rapide et efficace sur des surfaces
    hydrophobes
  • Les molécules organiques constituant le film de
    conditionnement peuvent être utilisées comme
    nourritures pour les bactéries pionnières
  • À ce stade l’attachement et réversible
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10
Q

Biofilm étape 2 – Mouvement vers le supportconditionné

A
  • Accès des microorganismes vers le support conditionné
    par la chimiotaxie et la motilité,
  • Sédimentation, mouvement, transport convectif,
    organisation
  • À partir de cette étape, l’attachement est irréversible
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11
Q

Biofilm étape 3 – Adhérence sur le supportconditionné

A
  • Adhésion spécifique grâce à la sécrétion de molécules
    matricielles
  • La production de la matrice du biofilm est contrôlée par
    le QUORUM SENSING
  • Multiplication et croissance du biofilm

Exemple: Fibronectin-Binding Protein de bactéries Gram + et Fibronectine (substance déposée sur la surface du film de conditionnement)

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12
Q

Biofilm étape 4 – Maturation du biofilm

A
  • Croissance du biofilm continue grâce à la multiplication
    des microorganismes
  • La sécrétion des EPS continue aussi
  • Le biofilm grandit et atteint sa maturité
  • La taille devient macroscopique
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13
Q

Biofilm étape 5 – Dispersion du biofilm par des cellules planctoniques

A
  • Phase de dispersion induite par: vieillissement du
    biofilm, stress biotiques ou abiotiques, carences de
    nutriments, etc.
  • Les cellules peuvent activement se séparer du biofilm
  • Parfois, les microbes se nourrissent la matrice
  • Les cellules planctoniques se libèrent, se déplacent et
    colonisent de nouvelles surfaces en complétant le
    cycle du biofilm
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14
Q

Structure du biofilm mature

A
20% de la biomasse microbienne
80% de matrice EPS et ADN
Canaux de circulation d’eau, nutriments et signaux
Canaux de rejets des déchets
Gradients de pH et O2
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15
Q

Applications des biofilms (positives)

A
  • Environnement :
    Traitement des eaux usées (systèmes de filtration,
    bioréacteurs, etc.)
    Assainissement des sols contaminés (biopiles,
    bioremédiation, phytoremédiation, etc.)
  • Agriculture :
    Protection des cultures contre les pathogènes
    Bio-dissolution et assimilation des minéraux par les
    plantes
  • Fabrication des médicaments
  • Fabrication des biocarburants 2ème et 3ème
    générations (biomasse cellulosique, micro-algues)
  • Fabrication d’agent de nettoyage
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16
Q

Problèmes causés par des biofilms

A
  • Médecine :
    Caries dentaires
    Contamination de surfaces
    Résistance accrue aux antibiotiques
    Infections nosocomiales
  • Contamination d’eau potable et aliments
  • Industrie :
    Colmatage et obturation des canalisations
    Corrosion
    Contamination
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17
Q

Chimiotaxie

A

Mouvement directionnel des cellules par rapport à des molécules chimiques présentes dans l’environnement

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18
Q

2 types de chimiotaxie

A

Attractive (nutriments)

Répulsive (toxines)

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19
Q

Rôle de la chimiotaxie

A

Rôle primordial dans le fonctionnement physiologique des microorganismes

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20
Q

Mouvement des microorganismes

A
  • Flagelle (structure assurant la mobilité la plus
    commune)
  • Déplacement par des cils
  • Déplacement par des pseudopodes et des plasmodes
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21
Q

Mouvement des microorganismes la même pour les eucaryotes et procaryotes?

A

Non,

Ils ont développé des mécanismes différents au niveau des flagelles

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22
Q

Différence de la structure des flagelles entre eucaryotes et procaryotes?

A

Eucaryote possède et procaryote possède pas :

  • Axonène
  • Corps basal
  • Centriole distal
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23
Q

Chimiotaxie: E. coli

A
  • Mouvement = alternance des phases ‘RUN’ et
    ‘TUMBLE’
  • En milieu homogène la trajectoire est aléatoire à cause
    de la courte durée de la phase run
  • En présence d’un gradient (chimiotaxie + ou -), les
    bactéries dirigent leur mouvement soit attraction ou
    répulsion, en alternant les deux phases
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24
Q

Régulation de la chimiotaxie (E. coli)

A

1 - Transmission des signaux
2 - Régulation des flagelles
3 - Régulation de récepteur

25
Chimiotaxie de Dictyostelium
1) Les cellules en se divisant, secrètent une substance répulsive pour favoriser la dispersion 2) Elles montrent un chimiotactisme positif envers l’acide folique qui est rejeté par les bactéries (proies). 3) Production d’enzymes pour détruire l’acide folique pour former un gradient et par conséquent localiser les sources d’émission (proies) 4) Quand il n’y a plus de proies, les cellules changent de comportement (sans répulsion et sans réponse à l’acide folique) 5) Les cellules émettent de l’AMPc pour s’attirer les unes des autres
26
Chimiotaxie positive
Pour chercher des proies
27
Propagation des pulsations de l’AMPc
Voir power point slide #40
28
Mécanisme de la chimiotaxie chez Dictyostelium
Voir power point slide #41
29
Communication microbienne
Quorum Sensing leur permet de communiquer entre elles et de conférer à la communauté bactérienne un comportement analogue aux organismes multicellulaires
30
Quorum sensing est un mode de dialogue des procaryote ou eucaryote?
Procaryote
31
Quorum sensing est basé sur quoi?
Sur la sécrétion des petites molécules appelées ‘auto-inducteurs’ produites en phase de croissance bactérienne
32
Quorum sensing, si un seuil de concentration est atteint qu'est ce qui se passe?
Les auto-inducteurs activent un facteur de transcription, permettant l’expression des gènes
33
Communication intra-spécifique
QS est utilisé pour communiquer entre les individus d’une même espèce Auto-inducteur est spécifique à cette espèce
34
Communication inter-spécifique
QS est utilisé pour communiquer entre les individus d’espèces différentes Auto-inducteur est conservé entre les espèces
35
L’un des auto-inducteurs intra-spécifiques le plus étudié est le?
N-acyl homosérine lactone (AHL) caractérisé chez Agrobacterium tumifaciens
36
Auto-inducteurs intra-spécifiques des bactéries Gram – de type?
N-acyl homosérine lactone (AHL) | Variation de la longueur des acide gras, de l’état d’oxydation et de la nature du substituant d’un radical (H, O, OH)
37
Auto-inducteurs intra-spécifiques des bactéries Gram + de type?
oligopeptide: Auto-Inducing Peptides (AIP)
38
Auto-inducteurs conservé et universel chez les bactéries | de Gram-
AI-2 codé par le gène LuxS
39
Système de communication bilingue des procaryotes
Chaque bactérie peut avoir plusieurs types de QS
40
Mode de communication dans les BIOFILMS
Plusieurs espèces de bactéries peuvent inter-changer les communications en reconnaissant leurs auto-inducteurs Système de communication multiple et Cross-talk
41
Mécanisme du QS chez V. fischeri (2 étapes sont requises)
Molécules médiatrices: auto-inducteurs Un récepteur des auto-inducteurs 1) À faible densité des cellules, l’AI en rouge est sécrété 2) Les bactéries se multiplient et l’AI s’accumule 3) Lorsqu’un seuil est atteint, l’AI active la bioluminescence
42
QS chez les bactéries Gram – : LuxI/LuxR (QS Type 1)
- AHL est activé par une enzyme codée le gène LuxI. - À faible densité d’AHL, le récepteur/facteur de transcription LuxR n’est pas activé - Densité des bactéries est proportionnelle à la concentration d’AHL. - À forte concentration, AHL pénètre efficacement dans les bactéries, et se fixe sur le récepteur/facteur de transcription LuxR codé par le gène LuxR. - LuxR-AHL active le promoteur… - Système QS de type 1 chez les bactéries est homologue chez d'autres bactéries de Gram -
43
QS des bactéries Gram positives (Streptococcus pneumonia )
- Le peptide AIP est sécrété par un transporteur actif (ATP-Binding Protein) vers l’extérieur. - AIP se lie à un récepteur transmembranaire, et la transmission du signal se fait par phosphorylation d’un facteur de transcription. - Le QS chez S. pneumonia est typique des bactéries gram-positives. - comAB code pour le transporteur de l’AIP; - comC code pour l'AIP; - comD code pour le récepteur; - comE code pour le facteur de transcription.
44
Concentration des AI est...
Proportionnelle au nombre de cellules
45
Mécanisme du QS Type 2
Deux voies de QS type 2 (AI universel) dans différents genres de bactéries Gram négatives. Les deux systèmes diffèrent dans la détection d’AI-2et la transmission du signal.
46
Rôle primordial du QS
Rôle primordial dans la virulence des microbes pathogènes
47
Transfert horizontal des gènes
Un processus par lequel un organisme acquiert du matériel génétique d'un autre organisme sans en être le descendant
48
Rôle du transfert horizontal des gènes (TGH)
Le transfert horizontal joue un rôle majeur dans leur diversification et évolution.
49
Mécanismes communs du THG
- Transfert d'ADN de bactérie à bactéries - Transfert d'ADN de bactérie à phage - Transfert de plasmide de bactérie à bactérie
50
Biofilm un endroit propice pour les TGH? Pouquoi?
Oui à cause de la proximité
51
Rythme circadien
Un rythme biologique oscillatoire d'une durée d’environ 24 heures La majorité des êtres-vivants possèdent un rythme circadien, y compris les microorganismes
52
Mécanisme controllant le rythme circadien chez N. crassa
3 protéines importantes: WC1, WC2 formant un dimère WCC, et FRQ. Le système fonctionne en boucle de rétroaction ‘Feedback Loop’ sous l’action de la lumière bleue. WC1 : photorécepteurs vont detecter la lumière, une fois détectée, ils vont aller activer un gène (gène fréquence/FRQ), qui contrôle la cascade de gène. Par la suite, le système de fluctuation en l’espace de 24h, (lumière, on augmente FRQ (**tjrs délais, réception activation)), WC1 + WC2 : protéique dimérique détecte la lumière et active gène FRQ
53
Chimiotaxie étape 1 : transmission des signaux
- Le gradient chimique est perçu par plusieurs récepteurs transmembranaires MCPs qui varient selon les molécules détectées - Les MCPs interagissent avec 2 protéines cytoplasmiques CheW et CheA - Quand MCP n’est pas fixé au stimulus, CheA s’autophosphoryle par une activité d’histidine kinase
54
Chimiotaxie étape 2 : régulation des flagelles pour TUMBLE
- CheA phosphorylée, transmet son P à CheY - CheY-P se dirige et se fixe sur le flagelle ou elle va enclencher un mouvement dans le sens des aiguilles de montre => phase Tumble - CheY est un médiateur qui transmet le signal
55
Chimiotaxie étape 2 : régulation des flagelles pour RUN
- CheZ dé-phosphoryle CheY-P fixée sur le flagelle - Le résultat donne une rotation des flagelles dans le sens contraire des aiguilles de montre =>  Run - Le cycle recommence avec la phosphorylation de CheY
56
Chimiotaxie étape 2 : régulation des flagelles pour une alternance entre TUMBLE et RUN
- En absence d’un stimulus fixé sur MCP, la bactérie maintient un rapport intermédiaire entre CheY phosphorylée et non-phosphorylée - [CheY-P] = [CheY] - Résultat: alternance entre Tumble et Run - Mouvement aléatoire
57
Chimiotaxie étape 2 : régulation des flagelles pour une augmentation de la phase RUN
- En présence d’un stimulus (ex. chimio-attractants), MCP empêche l’autophosphorylation de CheA, ce qui se traduit par une baise de CheY-P - Résultat: augmentation de la fréquence de la phase Run - Mouvement orienté
58
Chimiotaxie étape 3: régulation du récepteur
- En présence du stimulus, le récepteur MCP est régulé par méthylation avec CheR qui a une activité de méthyle transférase des résidus glutamates de la partie cytoplasmique de MCP - Plus MCP est méthylé plus qu’il est sensible jusqu’à saturation - En absence du stimulus, CheA phosphoryle aussi CheB. - CheB-P a une activité de méthyle estérase (opposée à l’activité de CheR) qui enlève les méthyles des résidus glutamates de la partie cytoplasmique de MCP - Ceci permet à E. coli de comparer le gradient du stimulus (sorte de mémoire) en circuit de Feedback