Analyses A (OCQ) Flashcards

1
Q

HDL-CHOLESTÉROL

(méthode)

A

Méthode de routine :

  • Méthode enzymatique de dosage du CHOL total avec ajout de réactifs qui bloquent les lipoprotéines non-HDL et qui libèrent CHOL des HDL (cholestérol estérase/oxidase) :
    • Précipitation sélective des VLDL et LDL
      • Ex : Sulfate de dextran + MgSO4 (Vista)
    • CHOL-ester + H2O -<strong><u>cholestérol estérase</u></strong>-> CHOL + ac gras
    • CHOL + O2 -<strong><u>cholestérol oxydase</u></strong>-> Cholest-4-en-3-one + H2O2
    • H2O2 + phénol + 4-aminoantipyrine -peroxydase-> quinone + H2O
    • Abs 500 nm
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2
Q

FER

(méthode)

A

Méthode de routine :

  1. Dosage colorimétrique :
    • Acidifier l’échantillon pour libérer le Fe3+ lié à la transferrine
    • Réduire le Fe3+ en Fe2+
    • Ajouter un chromogène (ferrozine).
    • Complexe entre ferrozine et fer produit un complexe qui absorbe à 550 nm.
    • Dosage directement proportionnel
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3
Q

ALBUMINE URINAIRE

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  1. Méthode néphélémétrique
  2. Méthode turbidimétrique
  3. Principe de l’erreur protéique des indicateurs (bandelettes urinaires)
    • Protéine accepte les ions H+ de l’indicateur.
    • Changement de couleur dû à la présence de protéine à pH acide constant (de jaune à vert et bleu)
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4
Q

CALCIUM IONISÉ

(Préanalytique)

A

Préanalytique dosage Ca2+ :

  • Ne pas fermer le poing (↑ Ca2+)
  • Éviter exercice (↑ Ca2+)
  • Éviter stress (hyperventilation = ↑pH = ↓ Ca2+)
  • Rythme circadien (Nuit < jour)
  • Tube : Héparine balancé ou Sérum
    • Pas d’EDTA
    • Pas d’héparine liquide (dilue)
    • Correctement remplis (vide = ∆ pCO2 = ∆ pH)
  • Éviter hémolyse (dilue et ∆ pH)
  • Limiter l’effet du métabolisme cellulaire (∆ pH)
  • Analyser rapidement :
    • Sang total : analyser en 1h (Tp) ou en 4h (4°C) maximum
    • Sérum/plasma : stable des heures à Tp et des jours à 4°C
      • Centrifugation fait ∆ pH
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5
Q

ALT

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Méthode enzymatique :
    • pH 7,4 + Vit B6 (cofacteur)
    • L-alanine + a-kétoglutarate -<u><strong>ALT</strong></u>-> Pyruvate + L-glutamate
    • Pyruvate + NADH + H+ -<u><strong>LDH</strong></u>-> Lactate + NAD
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6
Q

TRIGLYCÉRIDES

(méthode)

A

Méthode de routine :

  • Dosage enzymatique avec plusieurs systèmes de détection disponibles (peroxydase et chromogène ou NADH):
    • TG -<u>lipase</u>-> Glycérol + ac gras
    • Glycérol + ATP -<strong><u>glycérol kinase</u></strong>-> Glycérol-3-P + ADP
    • Glycérol-3-P + O2 -glycérol-3-P oxydase-> H2O2 + Dihydroxyacétone phosphate
    • H2O2 + 4-aminophènezone -<u><strong>peroxydase</strong></u>-> quinone + H2O
    • Mesure à 500 nm

Méthode de référence :

  • GC-IDMS
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7
Q

ACIDE FOLIQUE

(méthode)

A

Méthodes de routine :

  1. Immunoessais
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8
Q

PHOSPHATASE ALCALINE (totale)

(méthode)

A

Méthode de routine :

  1. Méthode enzymatique :
    • pH 10,25, Zn2+, Mg2+
    • p-nitrophénylphosphate + 2 amino-2-méthyl-1-propanol (AMP) -<strong><u>ALP</u></strong>-> p-nitrophénol + AMP + PO4
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9
Q

AMYLASE

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Méthode enzymatique avec substrat maltopentose
    • Maltopentoaose -<u><strong>amylase</strong></u>-> Maltose + maltotriose
    • Maltose + maltotriose -<strong><u>a-glucosidase</u></strong>-> Glucose
    • Glucose + ATP -<u><strong>hexokinase</strong></u>-> Glucose-6-P + ADP
    • Glucose-6-P + NAD -<u><strong>glucose-6-P déshydrogénase</strong></u>-> NADH + H+ + 6-phosphogluconate
  2. Méthode enzymatique avec substrat maltotrétaose
    • Maltotréaose -<u><strong>amylase</strong></u>-> Maltose
    • Maltose + phosphate -maltose phosphorylase-> glucose + Glucose-1-P
    • Glucose-1-P -<u><strong>B-phosphoglucomutase</strong></u>-> Glucose-6-P
    • Glucose-6-P + NAD -<u><strong>glucose-6-P déshydrogénase</strong></u>-> NADH + H+ + 6-phosphogluconate

Méthode de référence :

  1. Méthode chromogène avec production de p-nitrophénol avec réaction enzymatique successives : Amylase et glucosidase
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10
Q

OXALATE URINAIRE

(préanalytique)

A

Préanalytique oxalate urinaire :

  • Adultes : collecte urinaire préacidifiée (HCl)
  • Enfants : Miction
  • Éviter de consommer de la vitamine C 48h avant le prélèvement
  • Envoyer l’urine congelée
    • Stabilité réfrigéré (2-8 °C) : 7 jours
    • Stabilité congelé (-15 et -25 °C) :14 jours
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11
Q

T4L

(méthode)

A

Immunoessais hétérogène compétitif

  • Utilisation d’un analogue de T4 qui ne lie pas les protéines de liaison (pas de débalancement de l’équilibre) mais qui est reconnu par l’Ab de la méthode
  • Pas de séparation des formes libres/liées
  • Ab liés à un support solide ou billes magnétiques
  • One step ou two steps
  • SIgnal inversement proportionnel
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12
Q

BILAN LIPIDIQUE

(Préanalytique)

A

Préanalytique qui influence le bilan lipidique :

  • Position lors du prélèvement : ↓ de CHOL et TG si couché (hémodilution)
  • Stress : ↑ TG et CHOL
  • Garrot : ↑ TG et CHOL
  • Glycérol élevé (crème, savon, alcoolisme) peut surestimer le dosage des TG (méthode passe par le dosage du glycérol pour quantifier les TG)
  • Exercice : ↓ TG longtemps et ↑ HDL-C longtemps
  • Alcool : ↑ TG longtemps, donc débalance HDL-C longtemps
  • Grossesse : CHOL ↓ lors du 1er trimestre
  • Jeûne : ↓ les TG (chylomicrons absents)
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13
Q

RÉNINE

(préanalytique)

A

Préanalytique rénine :

  • Préparation du patient :
    • Arrêt de la médication :
      • Cesser la prise de diurétiques, ß-bloquants, clonidine, IECA, ARA une semaine avant l’analyse.
      • Cesser la prise de spironolactone 6 semaines avant l’analyse.
    • Patient en position couchée 1h avant le prélèvement
  • Prélèvement
    • Faire le prélèvement entre 7 et 11h AM
    • Tube EDTA
    • Noter l’heure, la position du patient et le site du prélèvement
    • Éviter hémolyse (RBC contiennent des angiotensinases)
  • NE PAS REFROIDIR le tube! Conserver à Tp, centrifuger à Tp.
  • Congeler rapidement et éviter les gel/dégel
  • Dégeler rapidement
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14
Q

SANG OCCULTE DANS LES SELLES

(méthode et comparaison des méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. RSOSi : dosage immunologique de l’Hb
    • Ab spécifique à Hb humaine
    • 1 seul prélèvement
    • Plus sensible
    • Ne détecte pas l’Hb dénaturée (saignements digestifs hauts)
    • Méthode de choix pour le dépistage du cancer colorectal (lignes directrices)
    • Efficace pour les patients avec variants d’Hb?
  2. Guaïac (RSOSg) : Dosage de l’Hb par l’activité pseudo-peroxydase de l’hème
    • Échantillon + H2O2 -> coloration bleue
    • Carton avec 2 sites de dépôt de selles :
      • À l’aide de spatules, étaler sur chaque carré (une spatule/carré) un fragment de selle (grosseur d’un grain de riz).
    • Interférences : Vit C, acide urique, myoglobine, viande rouge
    • Disponible en stat
    • Répéter le test 3x consécutives
  3. Test de la porphyrine hémique
    • Fluorescence de la porphyrine détectée par spectrométrie
    • Pas spécifique : myoglobine interfère
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15
Q

GLUCOSE

(méthodes)

A

Méthode de routine : MÉTHODE STANDARDISÉE

  1. Hexokinase
    • Glucose + ATP -<u><strong>hexokinase, Mg</strong></u>-> Glucose-6-P
    • G-6-P + NAD(P) -G-6-P déshydrogénase-> NAD(P)H
    • Détection : NAD/NADH, NADP/NADPH. Mesure bichromatique en poind final
  2. Glucose oxydase
    • Glucose + O2 -<u>glucose oxidase + mutarotase</u>-> H2O2
    • H2O2 + chromogène réduit -<strong><u>peroxydase</u></strong>-> chromogène oxydé
    • Méthode spécifique au bêta-D-glucose, mutarotase accélère conversion alpha -> bêta
    • Détection :
      • Chromogène H2O2 et peroxydase
      • Diminution consommation O2
      • Oxydation d’une électrode de platine par H2O2 (électrochimie, biosenseur, ampérométrie, appareils à gaz)
      • Semi-quantitatif sur bandelette urinaire
  3. Glucose déshydrogénase
    • Glucose + NAD(P) -> NAD(P)H
    • Détection : NAD/NADH
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16
Q

LDL-C

(préanalytique)

A

Préanalytique LDL-C :

  • Jeûne 12h seulement si TG préalablement > 4,5 mmol/L (pour utiliser équation Friedewald)
  • Position assise (couché = hémodilution)
  • Retirer garrot rapidement (hémoconcentration)
  • Pas d’alcool 3 jours avant (↑ TG longtemps, donc débalance HDL-C longtemps)
  • Éviter exercice intense 3 jours avant (↓ TG longtemps et ↑ HDL-C longtemps)
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17
Q

ISOENZYME LDH

(méthode)

A

5 isoenzymes : LDH 1 à 5

  • Séparation par électrophorèse
    • LDH1 migre plus rapidement (plus vers anode)
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18
Q

VITAMINE B12

(méthode)

A

Méthode de routine :

  1. Immunoessais compétitif
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19
Q

SATURATION DE LA TRANSFERRINE

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Calculé :
    • % sat Tf = fer / TIBC x 100
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20
Q

Métanéphrines urinaies

(préanalytique)

A
  • Collecte urinaire 24h acidifiée avant
    • Rejet si pH > 4
  • Hydrolyse des métanéphrines nécessaire si dosage des métanéphrines totales
  • Dosage LC-MS/MS, LC-ECD ou immunoessais
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21
Q

RÉNINE

(Méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Méthodes masse :
    1. Immunoessais : réactivité croisée avec pro-rénine
      1. IRMA (sandwich) = CHUM
    2. MS possible
  2. Méthodes activité (CUSUM) :
    • Généralités :
      • Utiliser des inhibiteurs de l’ACE ou des Ab contre l’Angiotensine I pour empêcher sa conversion en Angiotensine II (t1/2 beaucoup plus court).
      • Test d’activité basé sur la production d’angiotensine I
      • La majorité des méthodes activité utilisent du RIA pour quantifier l’angiotensine I, mais immunoessais enzymatiques et HPLC aussi possible
      • (!) Conditions analytiques influencent activité enz
    1. Utilisation de l’angiotensine intrinsèque
      • Substrat limitant : Réaction d’ordre 1
      • Prendre 2 échantillons du même prélèvement :
        • Incuber 1 éch à 37°C 3h
        • Incuber l’autre éch à 4°C pour bloquer l’activité de la rénine.
      • Quantifier l’angiotensine I après 3h dans les 2 échantillons (RIA)
      • La différence entre les 2 donne la quantité d’angiotensine I produit par h par mL de plasma.
      • L’échantillon à 4°C sert de blanc
    2. Utilisation de l’angiotensine extrinsèque
      • Réaction avec un excès d’angiotensinogène : vitesse de la réaction dépendante seulement de l’activité de la rémnine (réaction d’ordre 0).
      • Matériel de référence de rénine comme calibrateur.
      • Doser la production de l’angiotensine I (RIA)
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22
Q

5-HIAA

(préanalytique)

A
  • Collecte urinaire 24h acidifiée pour Dx
    • Miction non acidifiée pour dépistage
  • Diète particulière 3 jours avant et pendant collecte
    • Bananes, avocats, noix, alcool, ananas, dattes
  • Sexe et âge du patient requis pour interprétation
  • Ajuster pH à 2-3 à la réception au labo
  • Dosage LC-MS/MS
    • PréTx de l’échantillon selon la méthode
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23
Q

TIBC

(méthode)

A

Méthodes de routine :

  • Calculé : TIBC = 25,1 x Transferrine
  • Dosé :
    • Ajout d’une quantité X de fer dans la réaction pour saturer tous les sites de la transferrine
    • Enlever l’excès de fer :
      • Colonne chromatographique ou précipitation/chélation
    • Doser le fer total :
      • Acidification de l’échantillon pour libérer le Fe3+
      • Réduction du Fe3+ en Fe2+
      • Ajout d’un chromogène (ferrozine) pour complexer le fer et former un complexe qui absorbe à 550 nm.
      • Mesure de l’absorbance à 550 nm
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24
Q

POTASSIUM

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  • Électrodes spécifiques (ISE) directe et indirecte:
    • Composante active = Valinomycine

Méthode de référence :

  • Photométrie de flamme
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25
Q

POTASSIUM

(préanalytique)

A

Préanalytique mesure du K+ :

  • Prélever patient en condition d’équilibre :
    • K+ ↑ en chimio (lyse cell)
    • K+ ↓ après repas
    • K+ ↓ en cas de transfusion importante (héparine, transitoire)
  • Tube :
    • Seringue héparinée sèche pour appareils à gaz
    • Pas de tube EDTA
  • Enlever garrot rapidement pour éviter hémolyse
  • Éviter coagulation/caillots : K+ ↑
  • Hyperplaquettose et hyperleucocytose :
    • K+ ↓ dans un 1er temps : Glycolyse et entrée de K+ intracell
    • K+ ↑ dans un 2e temps : Lyse cell
  • Conserver tube à T° pièce et centrifuger rapidement
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26
Q

HbA1c

(préanalytique)

A

Préanalytique HbA1c :

  • Préparation du patient :
    • Pas de condition de préparation particulière : pas de jeûne, pas de timing particulier
    • Conditions récentes qui diminuent le taux de HbA1c :
      • Hémorragie importante
      • Hémolyse importante
    • Pas de transfusion récente
    • Épisode récent d’hyperglycémie
    • Ne doit pas être congelé si méthode HPLC
  • Collecte de l’échantillon : tube EDTA
  • Prélèvement stable 1 semaine à 4°C ou 24h à température pièce (peut être spécifique à la méthode)
  • NE PAS CENTRIFUGER
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27
Q

TRANSFERRINE

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Immunoessais
  2. Immunoturbidimétrie
  3. Immunonéphélémétrie
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28
Q

Métanéphrines libres plasmatiques

(préanalytique)

A

Méthode avec la meilleure sensibilité et spécificité pour Dx phéo

  • Arrêt certains Rx
  • Position couché 30 mins idéalement (minimise les FP)
  • Éviter le stress
    • Prélèvement -20 mins
  • Prélever sur glace
  • Centri rapide
  • +/- jeûne
  • Dosage LC-MS/MS
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29
Q

ISOENZYMES CK

(méthode)

A

Méthode fréquente :

  1. Électrophorèse sur gel :
    • Patron de migration (pH 8,6) :
      • CK-MM le plus près du point d’application (cathode)
      • CK-MB a une migration intermédiaire
      • CK-BB le plus loin du point d’application (vers l’anode)
    • Visualisation :
      • Réaction enzymatique avec formation de NADPH
      • Quantification de la fluorescence de NADPH par densiométrie (excitation à 360 nm)
  2. Immunoessais avec Ab bloquant sous-unité M
    • Ne permet pas de quantifier les différents isoformes. Permet seulement de quantifier un isoforme en particulier (CK-MB)
30
Q

FRUCTOSAMINE

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Réduction du NBT en formazan :
    • Tampon carbonate, pH alcalin
    • Fructosamine <=> forme énéaminol
    • Forme énéaminol + NTB -> formazan
      • NTB: nitrobleu de tétrazolium (NBT)
    • Mesure de l’Abs à 530nm
    • Changement Abs proportionnel à [fructosamine]
  2. Méthode enzymatique (fructosaminase)
    • Fructosamine -<strong><u>Protéinase K</u></strong>-> fragments glyqués
    • Fragments glyqués -<strong><u>fructosaminase</u></strong>-> libération de H2O2
    • Quantification à partir de H2O2
31
Q

ACTH

(préanalytique)

A

Préanalytique ACTH :

  • Préparation du patient :
    • Arrêt de la médication (glucocorticoïdes)
    • Éviter stress
  • Prélèvement :
    • Faire prélèvement seulement à l’hôpital
    • Tube EDTA pré-refroidit
    • Transport sur glace, centri à froid, congeler immédiatement
    • Envoi sur glace sèche
    • Standardiser l’heure du prélèvement : prélever le matin (circadien)
      • Noter l’heure du prélèvement
32
Q

PROTÉINES TOTALES SÉRIQUES

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Réaction de Biuret
    • Réaction entre le réactif de Biuret (ions Cu2+ en milieu alcalin) avec les liens peptidiques des protéines
  2. Réaction de Lowry
    • Réactif Folin (mélange d’acides molybdique et phosphotungstique et de cuivre alcalin) réagit avec les liaisons peptidiques, les résidus tyrosine et tryptophane
    • Production d’une couleur bleue (660 nm)
  3. Méthode de Bradford
    • Utilisation du bleu de coomassie brillant.
    • Colorant se lie aux NH3 des protéines.
    • Abs à 595 nm
  4. Méthode turbidimétrique
    • Ajout d’un agent précipitant les protéines (TCA, chlorure d’ammonium, chlorure de benzothélium)
    • Quantification du précipité par turbidimétrie
  5. Pyrogallol rouge-molybdate
    • Réaction entre le complexe rouge pyrogallol-molybdate et la protéine
    • Provoque un shift du spectre d’absorption de 460 à 600 nm
      • Proportionnel à la concentration en protéines totales
33
Q

CHOLESTÉROL TOTAL

(Préanalytique)

A

Préanalytique cholestérol total :

  • Position lors du prélèvement : couché ↓ CHOL
  • Garrot trop longtemps : CHOL ↑
  • Stress, inflammation (infection) : CHOL ↑
  • Variation biologique :
    • CHOL plus ↑ l’hiver
    • CHOL ↑ avec l’âge
    • Grossesse = ↓ du CHOL (1er trimestre)
  • Syndrome néphrotique et hypothyroïdie = CHOL ↑
  • Interprétation du CHOL en fonction de la variation biologique :
    • Grande variation bio. Prélèv en série préférable pour la clinique. Au moins 2-3 semaines d’intervalle entre les dosages
34
Q

CRÉATININE SÉRIQUE

(méthodes)

A

Méthode de routine :MÉTHODE STANDARDISÉE IFCC

  1. Créatinine Jaffé :
    • Picrate alcalin + créatinine -> Chromogène (rouge)
  2. Créatinine enzymatique :
    • Créatinine + H2O -<u>créatinine amidohydrolase</u>-> créatine
    • Créatine + H2O -<u>créatinase</u>-> urée + sarcosine
    • Sarcosine + O2 + H2O -<u>sarcosine oxydase</u>-> H2O2 + formaldéhyde + glycine
    • H2O2 + chromogène réduit -<u>peroxydase</u>-> chromogène oxydé + H2O

Méthode de référence :

  • ID-MS
35
Q

CK-MB

(méthode)

A

Méthode de routine :

  1. Méthode activité :
    • Utilisation d’un anticorps spécifique à la sous-unité M qui inhibe l’activité de la SU
    • Dosage de l’activité de la CK: Pas d’activité de la CK-MM
      • pH 6,7
      • Créatinine phosphate +ADP -<strong><u>CK</u></strong>-> créatinine + ATP
      • ATP + glucose -<strong><u>hexokinase</u></strong>-> Glucose-6-P + ADP
      • Glucose-6-P + NAD -<u><strong>G6PD</strong></u>-> 6-phosphogluconate + NADH + H+
      • Mesure à 340 nm (NADH)
  2. Méthode masse :
    • Immunoessais sandwich avec Ab spécifique à l’isoforme MB
36
Q

FERRITINE

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Méthode immunologique (variable d’une compagnie à l’autre)
    • Directement proportionnel, utilisation de billes magnétiques
    • CLIA Hétérogène, 2 steps (Abbott)
    • LOCI Homogène, 2 step (Siemens)
37
Q

CALCIUM IONISÉ

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Électrode ISE directe

Méthode de référence :

  • Photométrie de flamme

Méthode définitive :

  • ID-MS
38
Q

Catécholamines plasmatique

(préanalytique)

A
  • Jeûne 8h
  • Éviter alcool et café 24h avant
  • Éviter fumer 4h avant
  • Éviter certains Rx : benzo, opioïdes, cocaïne
  • Couché 30 minutes
  • Installer une canule
    • Éviter le stress
  • Tube pré-refroidit
  • Héparine Li ou EDTA-Na (spécial, Mayo)
  • Transport sur glace
  • Centri rapide
  • Décanter et congeler rapide
39
Q

MAGNÉSIUM

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  1. Cofacteur dans une réaction enzymatique (isocitrate déshydrogénase):
    • Acide d-isocitrique + NADP -isocitrate déshydrogénase, Mg2+-> 2-oxoglutarate + CO2 + NADPH
    • Signal à 340 nm (augmentation de NADPH)
  2. Méthode colorimétrique : Bleu de méthylène (ou bleu de méthylthymol)
    • Mg2+ + Bleu méthylène -> Complexe coloré (Abs 600 nm)
    • Effet de Ca2+ éliminé via ajout de Ba-EGTA
  3. Méthode colorimétrique : Bleu de xylidyl
    • pH alcalin
    • Mg2+ + bleu de xylidyl -> Complexe bleu (505 nm)

Méthode de référence :

  • Photométrie de flamme

Méthode définitive :

  • Dilution isotopique d’activation neutronique
40
Q

OSMOLALITÉ

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Dépression du point de congélation
  2. Osmomètre à tension de vapeur
    • N’inclus pas les substances volatiles dans le résultat de l’osmolalité
41
Q

OXALATE URINAIRE

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Dosage enzymatique (oxalate oxidase) :
    • Oxalate + O2 -<u><strong>oxalate</strong> <strong>oxidase</strong></u>→ CO2 + H2O2
    • H2O2 + MBTH + DMAB -<u>peroxidase</u>Idamine coloré + H2O
      • MBTH : 3-méthyl-2-benzothizlinone hydrazone
      • DMAB : 3-diméthyl amino benzoïque
42
Q

BILIRUBINE CONJUGUÉE

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Méthode de Jendrassik-Grof (SANS caféine)
    • Méthode diazo :
      • Bilirubine soluble + acide sulfanilique diazoté -> Bilirubine-diazo (rouge)
      • Absorbance à 540 nm
43
Q

LDL-CHOLESTÉROL

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Estimation des LDL-C par l’équation de Friedewald :
    • LDL-C = CHOL total - HDL-C - TG/2,2
    • Calcul non valable si TG > 4,5
  2. Méthode enzymatique directe : Principe similaire à HDL-C
    • Réactifs sélectifs bloquent HDL, VLDL et CM
    • LDL-C solubilisé par enzyme et surfactants -> Cholest-4-en-3-one + H2O2
    • H2O2 + 4-aminophènezone + HSDA + enzyme -> couleur
    • (!) : Non applicable pour patients avec dyslipidémie et moins performant lorsque TG > 4,5. Recommandé de calculer CHOL non-HDL
  3. Mesure directe (bêta-quantification)
    • Ultracentrifugation et utilisation d’héparine + MnCl2
44
Q

HbA1c

(méthodes)

A

Méthodes de routine : MÉTHODE STANDARDISÉE

  1. Chromatographie d’affinité (boronate)
    • Hb glyquée se lie au boronate, Hb non glyquée ne se lie pas.
    • Détection par absorbance
  2. Électrophorèse capillaire
    • La séparation des espèces d’hémoglobine est basée sur des différences de charge.
  3. Chromatographie échangeuse d’ions (HPLC)
    • La séparation des espèces d’hémoglobine est basée sur des différences de charge.
  4. Immunoessais : Immunoturbidimétrie compétitif
    • Ab vs portion N-terminale incluant la glycation (4 premiers aa)
  5. Méthode enzymatique
    • Mesure de Hb total et HbA1c (via glycation clivée)
    • Mesure de HbA1c :
      • Clivage du résidu glyqué
      • Les valines glyquées servent de substrat pour la fructosyl valine oxydase dans une réaction couplée avec la peroxydase de raifort.
      • L’agent coloré résultant est mesuré par spectrophotométrie.

Méthode de référence : 2 méthodes

  • Mesure des peptides N-terminaux glyqués et non glyqués spécifiques de la chaîne bêta par HPLC et spectrométrie de masse ou électrophorèse capillaire.
    • HPLC + MS
    • HPLC + Électrophorèse capillaire

(!) Pas de méthode définitive

45
Q

LACTATE

(Préanalytique)

A

Préanalytique lactate :

  • Pas de garrot (↑ lactate)
  • Ne pas serrer le poing
  • Éviter exercice, même faible (↑ lactate)
  • Glucose ou HCO3 IV ↑ lactate
  • Repas ↑ lactate
  • Catécholamines ↑ lactate
  • Prélèvement :
    • Héparine Na ou Li
    • Prélever et mettre immédiatement sur glace
    • Tube gris peut également être utilisé (stable 8h à Tp)
  • Transport et conservation :
    • Acheminer rapidement au laboratoire (< 15 minutes)
    • Centrifuger en < 1h
46
Q

GRAISSES DANS LES SELLES

(méthode)

A

Méthodes de routine :

  1. Méthode par gravimétrie :
    • Extraction des gras par un solvant. Évaporation du solvant et pesée de l’échantillon correspond aux graisses
    • Désavantage : Solvant extrait des molécules hydrophobes autres que des graisses. Surestimation de la collecte
  2. Méthode par titrimétrie :
    • Ajout de KOH et d’alcool dans l’échantillon.
    • Acidification et extraction des acides gras
    • Évaporation du solvant et dissolution des résidus dans l’alcool.
    • Titration avec NaOH (indicateur = bleu de thymol)
    • Désavantage : peut sous-estimer les acides gras à moyennes chaines. Long et manuel
  3. Méthode qualitative
    • Coloration au Sudan III
    • Chauffer échantillon et observer goutelettes de lipides au microscope
    • Interprétation subjective
47
Q

UIBC

(méthode)

A

Méthode de routine :

  1. Méthode colorimétrique :
    • Ajout d’une quantité X de fer dans la réaction pour saturer tous les sites de la transferrine
    • Doser le fer non lié : NE PAS ACIDIFIER l’échantillon
    • Réduction du Fe3+ libre en Fe2+
    • Ajout d’un chromogène (ferrozine) pour complexer le fer et former un complexe qui absorbe à 550 nm.
    • Mesure de l’absorbance à 550 nm
    • L’UIBC est déduit : UIBC = fer initial – fer mesuré
48
Q

Catécholamines plasmatiques

(méthode)

A

HPLC

  • Prétraitement
  • Méthode manuelle
  • Méthode prévilégiée : HPLC-ECD
49
Q

AMMONIAC

(préanalytique)

A

Préanalytique ammoniac :

  • Augmentation NH3
    • Cigarette
    • Exercice
    • Diète riche en protéine
    • Tx contenant glutamine
    • Rx : barbituriques, VPA, opioïdes
    • Serrer le poing, garrot
    • Site de ponction mal nettoyé
    • Coagulation de l’échantillon (sérum)
    • GGT élevée
  • Pas de garrot
  • Éviter hémolyse
  • Tube prérefroidit, transport sur glace
  • Tube mal rempli ou ouvert à l’air libre (NH3 volatil, diminution)
  • Envoyer au laboratoire rapidement (< 15 minutes)
    • NH4 augmente dans plasma et sang total
  • Centrifuger dès la réception, décanter
  • Congeler à -70°C si non analysé immédiatement
50
Q

CORPS CÉTONIQUES

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Test au nitroprusside (urine) : spécifique à acétone et acétoacétate
    • Réactif + Ac/AcAc -> composé coloré
  • B-hydroxybutyrate déshydrogénase (sang) :
    • Réaction à pH 8,5 :
      • B-HBT + NAD+ -> Acétoacétate + NADH + H+ + é
    • Courant généré par la réaction redox détecté par un détecteur électrochimique.
51
Q

CALCIUM TOTAL

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  1. Électrode ISE :
    • Acidification du milieu pour libérer le Ca2+ lié aux protéines
    • Membrane sélective au Ca (potentiométrie)
    • Échantillon maintenu à 37°C
  2. o-crésolphtaléine complexone (CPC) :
    • Échantillon dilué dans solution acide pour libérer le Ca2+ lié
    • Réaction à pH alcalin :
      • CPC + Ca -> produit coloré (570-580 nm)
  3. Arsesano III
    • Rxn à pH acide (pH 6) :
      • Arsenazo III + Ca -> produit coloré (650 nm)
    • Imidazole utilisé pour tamponner la rxn : (!) Propriétés spectrales de Arsenazo sont dépendantes du pH

Méthode de référence :

  • Photométrie de flamme

Méthode définitive :

  • ID-MS
52
Q

ALBUMINE (sérum)

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Colorimétrique : Bromocrésol vert (Abs 628 nm)
  2. Colorimétrique : Bromocrésol pourpre (Abs (603 nm)
  3. Immunoessais, Turbidimétrie, néphélémétrie
  4. Électrophorèse
  5. Méthode dosage UV

Méthode de référence :

  • Néphélémétrie
53
Q

AMMONIAC

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Électrode ISE
    • Éch + tampon à pH 10,4 produit libération NH4+ (gaz)
    • Gaz diffuse vers membrane semi-perméable
    • Produit un changement de pH (électrode de verre)
    • Détection par potentiométrie
  2. Méthode enzymatique (+ fréquent)
    • NH4+ + 2-oxoglutarate + NADH + H+ -<u><strong>glutamate déshydrogénase</strong></u>→ NAD+ + glutamate + H2O
    • Proportionnel à diminution de l’Abs à 340nm
  3. Chromatographie échange ionique
    • Résine échangeuse de cations
    • NH3 éluée et mesurée avec la réaction de Berthelot
  4. Chimie séche
    • Éch + tampon pH 9,2 (Borate) = libération NH4+ (gaz)
    • NH4 diffuse à travers une membrane semi-perméable dans une couche contenant un indicateur de pH
    • Changement de couleur de l’indicateur de pH mesuré par réflectance
    • Vitros : Bleu de bromophénol (600 nm)

Pas de méthode de référence

54
Q

BILIRUBINE TOTALE

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Méthode de Jendrassik-Grof (avec caféine)
    • Solubilisation de la bili non-conjuguée : caféine, benzoate, acétate, EDTA
    • Méthode diazo :
      • Bilirubine soluble + acide sulfanilique diazoté -> Bilirubine-diazo (rouge)
      • Absorbance à 540 nm
55
Q

URÉE

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Méthode enzymatique :
    • Urée +H2O -<u><strong>uréase</strong></u>-> NH3 + CO2
    • NH3 + α-kétoglutarate + NADH -<strong><u>glutamate déshydrogénase</u></strong>-> L-glutamate + NAD
  2. Méthode conductimétrique :
    • Urée +H2O -<u><strong>uréase</strong></u>-> NH3 + CO2
    • Mesure du changement de conductivité
56
Q

PORPHYRINES

(méthode)

A

Méthode de routine :

  • Prétraitement : Quantification des porphyrines par multiples extractions et séparation par HPLC :
    • Protocole général d’extraction : Phase aqueuse + phase organique
    • Molécules solubles récupérées dans la phase aqueuse
    • Back extraction de la phase organique avec une phase aqueuse et une phase organique acidifiée
    • Changement de pH modifie la solubilité des porphyrines (pH < 2 = protonation des porphyrines)
  1. Méthode qualitative :
    • Analyse spectrofluorométrique : Scan de la phase aqueuse pour quantifier porphyrines totales
  2. Méthode quantitative : HPLC avec détecteur fluorescence
    • Phase stationnaire aliphatique et phase mobile aqueuse
    • Permet la quantification individuelle des porphyrines.
57
Q

CRÉATININE KINASE

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Méthode enzymatique :
    • pH 6,7, EDTA, Mg2+
    • Creatine phosphate + ADP -<strong><u>CK</u></strong>→ creatine + ATP
    • ATP + glucose -<strong><u>HK</u></strong>→ glucose-6-P + ADP
    • Glucose-6-P + NADP+ -<strong><u>G6PD</u></strong>→ 6-phosphogluconate + NADPH + H+
    • Mesure formation NADPH (bichromatique : 340 et 540 nm)

Méthode de référence :

  • Variante de méthode de routine
58
Q

LIPASE

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  1. Méthode turbidimétrique ou néphélémétrique
    • Suivi de la consommation du substrat
  2. Méthode enzymatique (préférée)
    • Sels biliaires, colipase, CaCl2
    • Chromogène 6’-méthyl-résorufine ester -<u><strong>Lipase</strong></u>-> intermédiaire instable
    • Intermédiaire instable + H2O -> Acide glutarique + méthyl-résorufine
    • Abs à 577 nm
59
Q

Donner les CV analytiques du NCEP pour les différentes analyses du bilan lipidique

A
60
Q

ACIDE FOLIQUE

(préanalytique)

A

Préanalytique folate :

  • Jeûne 8h
  • Pas de suppléments d’acide folique depuis 2 semaines
  • Autorisation requise par un hématologue ou un biochimiste (certain centre)
61
Q

CHLORURES

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  • Électrodes spécifiques (ISE) directes et indirectes
    • Composante active: Sels d’ammonium quaternaires lipophiles

Méthode de référence :

  • Coulométrie
62
Q

ISOENZYME ALP

(méthode)

A

Différentes formes de l’ALP : os, foie, placenta, rein, intestin (*Comigration de ALP foie et os sur électrophorèse). Migration - → +

  1. Traitement à la neuraminidase
    • Retrait de l’acide syalique terminal de l’ALP hépatique
    • Permet séparation de ALP foie et os (modifie charge)
  2. Traitement à la chaleur
    • Inactivation de ALP foie, os et intestin
    • Dosage activité résiduelle
    • Activité résiduelle = ALP placenta, foetale et oncofoetale
  3. Ajout d’une lectine
    • Lectine retarde l’ALP osseuse. Permet sa séparation de l’ALP hépatique
63
Q

LACTATE

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  1. Appareil à gaz sanguin (sang total héparine)
    • Biosenseur avec lactate oxydase entre 2 membranes avec perméabilité spécifique (lactate et H2O2).
    • Oxydation à l’anode de platine. Production d’un courant (signal ampérométrique proportionnel)
  2. Méthode enzymatique (lactate oxydase) :
    • Lactate+ O2 -<strong><u>Lactate oxydase</u></strong>-> H2O2
    • H2O2 + chromogène réduit -<strong><u>Peroxydase</u></strong>-> chromogène oxydé
    • Pas entièrement spécifique au lactate (oxalate, glycolate)
  3. Méthode enzymatique (lactate déshydrogénase) :
    • pH alcalin
    • Lactate + NAD -Lactate déshydrogénase-> pyruvate + NADH
    • Mesure à 340 nm
64
Q

SODIUM

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  • Électrodes spécifiques (ISE) directes et indirectes
    • Composante active : pointe de céramique sensible au Na+

Méthode de référence :

  • Photométrie de flamme
65
Q

ISOENZYME AMYLASE

(méthode)

A

Amylase pancréatique vs salivaire

  • Specific measurement of pancreatic amylase activity involves the use of two monoclonal antibodies that bind and inhibit the salivary amylase enzyme in vitro.
  • Prior to immunoinhibition for specific measurement of pancreatic amylase activity, amylase isoenzymes were separated using electrophoresis
66
Q

AST

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Méthode enzymatique : Méthode recommandée IFCC
    • pH 7,8 + Pyridoxal-5-phosphate (cofacteur)
    • L-aspartate + a-kétoglutarate -<u><strong>AST</strong></u>-> oxaloacétate + L-glutamate
    • Oxalacétate + NADH + H+ -<b><u>malate déshydrogénase</u></b>-> Malate + NAD
67
Q

CHOLESTÉROL TOTAL

(méthode)

A

Méthode de routine :STANDARDISATION PAR LE NCEP

  • Méthode enzymatique (cholestérol estérase/oxidase) :
    • CHOL-ester + H2O -<u><strong>cholestérol</strong> <strong>estérase</strong></u>-> CHOL + ac gras
    • CHOL + O2 -<u>cholestérol oxydase</u>-> Cholest-4-en-3-one + H2O2
    • H2O2 + phénol + 4-aminoantipyrine -<u><strong>peroxydase</strong></u>-> quinone + H2O
    • Abs 500 nm

Méthode de référence :

  • Méthode Abell‐Levy‐Brodie‐Kendall (ALBK)
    • Extraction de cholestérol avec du Zéolite
    • Hydrolysation chimique des esters de cholestérol (saponification)
    • Mesure du cholestérol total par la réaction Liebermann‐Burchard
    • Cholestérol extrait => réagit avec acide sulfuric et de l’acide acétique anhydride
    • Formation d’un complexe coloré (410nm) acide cholestahexaene‐sulfonic

Méthode définitive :

  • ID-MS
68
Q

ACIDE URIQUE

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Méthode uricase/peroxydase
    • Acide urique + O2 -<u>uricase</u>H2O2 + CO2 + allantoine
    • H2O2 + chromogène réduit -<u>peroxydase</u>→ chromogène oxydé
    • Suivi de la réaction par :
      • Consommation de l’acide urique (293 nm)
      • Consommation de l’O2
      • Production de H2O2 (peroxydase)
  2. Méthode uricase (biosenseur et mesure consommation O2)
    • Urate + O2 -<u>uricase</u>→ allantoin + H2O2 + CO2
    • Mesure de la consommation d’O2
  3. Méthode chimique (acide phosphotungstique)
    • Urate + acide phosphotungstique → allantoin + CO2 + bleu de tungstène (Abs 700 nm)
69
Q

ACTH

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  • Immunoessais IRMA
70
Q

PBG

(méthodes)

A

Méthodes de routine :

  1. Méthode LC-MS/MS
    • Chromatographie échangeuse d’ions
  2. Essai enzymatique fluorométrique
71
Q

PHOSPHATE

(méthodes)

A

Méthode de routine :

  1. Méthode de phosphomolybdate :
    • Molybdate de Na + PO4 -> Phosphomolybdate
    • Phosphomolybdate + PMAPS + NaHSO3 -<strong><u>pH 1,6</u></strong>-> Complexe phosphomolybdate réduit
    • Abs à 340 nm