Wejściówka 1 Flashcards

1
Q

Po co pobieramy krew na posiew

A

Krew do badań serologicznych pobiera się w zależności od celu i sposobu badania:
-przed wystąpieniem objawów (ustalenie czy doszło do zakażenia)
-w fazie wczesnych objawów i w fazie rekonwalescencji (określenie czynnika chorobotwórczego i monitorowanie przebiegu leczenia)
◦ po uodpornieniu czynnym sztucznym lub naturalnym (stwierdzenie stanu uodpornienia)
◦ długi czas po zakażeniu (rozpoznanie zakażenia przewlekłego)

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
2
Q

Zasady pobierania krwi na posiew + Choroby

A

◦ moment pobrania - standard to 30 minut przed szczytem gorączki
◦ dobrze odkażona skóra, wkłucie dożylne (nie przez cewnik lub wenflon)
◦ odpowiednia objętość krwi
◦ kilka próbek zależnie od stanu klinicznego (2-3 próbki), wskazane minimum 2 zestawy z osobnego wkłucia z różnych anatomicznie miejsc
◦ szybki i odpowiedni transport - odpowiednie podłoża, temperatura, czas

◦ w przypadku ostrych chorób gorączkowych zagrażających życiu (zapalenie opon mózgowych,
zapalenie płuc) dwukrotnie próbki krwi z dwóch odrębnych wkłuć bezpośrednio po sobie
◦ w gorączkach nieznanego pochodzenia dwukrotnie próbki krwi w odstępach 60 minut,
pobranie często należy powtórzyć po 24 i 48 godzinach
◦ w podejrzeniu zapalenia wsierdzia (bakteriemia ciągła) minimum dwie lub trzy próbki z
osobnych wkłuć w ciągu doby, a następnie leczenie

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
3
Q

Zasady pobierania moczu na posiew

A

Mocz oddajemy conajmniej 4h od ostatniej mikcji a najlepiej po nocy
Przemyć cewkę moczową wodą z mydłem
Mocz oddać do suchego jałowego pojemnika ze środkowego strumienia.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
4
Q

Ogólne zasady pobierania materiałów do badań mikrobiologicznych

A

Próbkę pobrać przed zastosowaniem antybiotyku lub przed przyjęciem kolejnej dawki.

Jeżeli pacjent zażywa leki utrudniające wykrycie pasożytów to próbkę należy pobrać po tygodniu lub w dłuższym odstępie w zależności od przyjmowanych leków

Próbka powinna być pobrana z miejsca, w którym toczy się proces chorobowy i zgodnie z zasadami aseptyki

  • czas i ilość próbek musi być właściwa dla rodzaju schorzenia, w ilości zapewniającej wykonanie
    pełnego badania
  • przed pobraniem materiału należy sprawdzić jakość podłoży
  • pojemnik należy otwierać bezpośrednio przed pobraniem
    materiału, aby nie uległ
    zanieczyszczeniu.
  • materiał należy umieszczać w jałowych, zamkniętych naczyniach lub płynnych podłożach
    transportowo-wzrostowych.
  • materiał należy odpowiednio opisać i umieścić skierowanie
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
5
Q

Co to są podłoża wybiórcze (selektywne i różnicujące) + przykłady

A

podłoże Chapmana (agar z mannitolem) - selektywne dla Staphylococcus, różnicujące dla
Staphylococcus aureus. Gronkowce mogą rozwijać się w wysokim stężeniu soli (7,5% NaCl), a
tylko S. aureus może fermentować mannitol, tworząc żółta otoczkę wokół kolonii na agarze.

agar MacConkeya - selektywny agar dla bakterii Gram-ujemnych i różnicujący dla bakterii
fermentujących laktozę - produkują kwas, wytrącający sole żółciowe i powodujący zmianę
czerwieni obojętnej na kolor różowy

podłoże Lowensteina-Jensena - selektywne dla prątków (Mycobacterium) dodatek zieleni
malahitowej hamuje wzrost bakterii Gram-dodatnich.

  • podłoże SS (agar XLD) - selektywny agar używany do wykrywania Salmonella i Shigella w
    kulturach jelitowych. Bakterie fermentujące laktozę, ksylozę lub sacharozę tworzą żółte kolonie.
    Shigella nie fermentuje i tworzy czerwone kolonie, natomiast Salmonella czarne.
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
6
Q

3-etapy badania mikrobiologicznego

A
  1. posiew i hodowla drobnoustrojów (większość 18-24h)
    * 2. izolacja i identyfikacja przy użyciu testów manualnych, półautomatycznych lub
    automatycznych
    * 3. oznaczanie wrażliwości drobnoustrojów na leki (met. Dyfuzyjno krążkowa) – przydział do
    kategorii: wrażliwy, średnio wrażliwy, oporny
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
7
Q

Różnica w budowie ściany komórkowej bakterii gram „+” i „-” (było też pytanie o opisanie
typów)

A

Bakterie Gram-dodatnie mają grubą warstwę peptydoglikanu zawierającą kwasy tejchojowe i
lipotejchojowe.
* Bakterie Gram-ujemne mają cienką warstwę peptydoglikanu oraz błonę zewnętrzną zawierającą
lipopolisacharyd, fosfolipidy oraz białka.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
8
Q

Co to badanie Gram

A

W metodzie Grama zawiesinę bakteryjną utrwala się z użyciem temperatury i suszy na szkiełku
podstawowym, a następnie barwi fioletem krystalicznym i utrwala jodem (płynem Lugola).
Niezwiązany barwnik usuwany jest z użyciem odbarwiającego związku acetonowego. Następnie
dodawany jest drugi barwnik - czerwona safranina, którą barwią się pozostałe komórki.
* Gram-dodatnie barwią się na fioletowo
* Gram-ujemne barwią się na czerwono – safraniną, bo mają cienką warstwę peptydoglikanu i
nie absorbują fioletu

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
9
Q

3-przykłady wykorzystania preparatu bezpośredniego

A
  • diagnostyka parazytologiczna
  • diagnostyka mykologiczna
  • wstępna identyfikacja drobnoustroju (np. z krwi/PMR- określenie bakterie G+/G-, morfologia)
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
10
Q

Metody identyfikacji bakterii do gatunku

A

klasyfikacja metaboliczna
◦ tlenowe/beztlenowe
◦ wymagające specyficznych składników pokarmowych – podłoża selekcyjne
* użycie przeciwciał wiążących – serotypowanie
* wykrywanie swoistych i charakterystycznych sekwencji DNA – hybrydyzacja i PCR

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
11
Q

Na czym polega diagnostyka zakażeń

A

◦ izolacja i identyfikacja czynnika etiologicznego
◦ oznaczenie lekowrażliwości
◦ ustalenie optymalnego leczenia celowanego
◦ kontrola skuteczności leczenia
◦ minimalizacja efektów toksycznych leczenia
◦ minimalizacja prawdopodobieństwa powstania szczepów lekoopornych

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
12
Q

Jakie to metody niehodowlane

A
  • hodowlane to klasyczne:
    ◦ bakterioskopia pośrednia, hodowla
  • niehodowlane
    ◦ wykrywanie antygenów bakteryjnych (serologiczne)
    ◦ wykrywanie kwasów nukleinowych bakterii – molekularne
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
13
Q

PMR – u kogo i w jakim celu pobieramy + kto i jak pobiera

A

pobierany jest przez lekarza poprzez nakłucie lędźwiowe (L4/L5)
* do dwóch probówek – pierwsza do biochemii, druga do badania mikrobiologicznego
* nie wolno przechowywać ani transportować w temperaturze <30oC (zalecane 37)

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
14
Q

Co powinno zawierać skierowanie

A

imię nazwisko, wiek, zawód
* rozpoznanie kliniczne
* rodzaj i miejsce z którego została pobrana próbka
* data i godzina pobrania
* informacje o przyjmowanych lekach
* imię nazwisko lekarza

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
15
Q

Definicja aseptyki

A

metoda mająca na celu utrzymanie wszystkich mikroorganizmów poza polem pracy lub
obserwacji

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
16
Q

Definicja antyseptyki

A

metoda niszczenia drobnoustrojów z wykorzystaniem najczęściej chemicznych środków o
działaniu antydrobnoustrojowym, ograniczona do użycia w obrębie skóry, błon śluzowych

17
Q

Definicja sterylizacja + etapy

A
  • fizyczny lub chemiczny proces prowadzący do całkowitego zniszczenia lub usunięcia
    wszystkich form życia mikroorganicznego wraz z ich formami przetrwalnikowymi
  • etapy:
    ◦ dezynfekcja wstępna
    ◦ mycie i mechaniczne oczyszczanie (zautomatyzowane i ręczne) lub dodatkowa
    dezynfekcja
    ◦ płukanie i osuszanie
    ◦ pakowanie sterylizowanych przedmiotów (gwarancja jałowości po sterylizacji
    właściwej)
    ◦ umieszczanie pakietów (wsadów) w sterylizatorze
    ◦ sterylizacja właściwa wraz z kontrolami
    ◦ transport wysterylizowanych pakietów celem właściwego ich przechowywania
    ◦ czas przechowywania zgodny z zaleceniem producenta
    ◦ wyjmowanie narzędzi z opakowań z zachowaniem aseptyki
    ◦ kontrola stanu technicznego sterylizatora
    ◦ regularne mycie i dezynfekcja sterylizatora
18
Q

Co to sanityzacja

A

inaczej sprzątanie – zabieg higieniczny polegający na usuwaniu zanieczyszczeń wraz z
drobnoustrojami

19
Q

Co to filtracja

A

metoda sterylizacji wykorzystywana do przygotowywania płynnych postaci leków lub
podłoży hodowlanych

20
Q

Co to dekontaminacja

A

proces niszczenia biologicznych czynników chorobotwórczych przez mycie (sanityzacja),
dezynfekcję i sterylizację

21
Q

Aktywność drobnoustrojowa alkoholi, chlorowodorku oktenidyny, chlorheksydyny,
aldehydy

A

Tabelka w skrypcie mikołaja do nauczenia

22
Q

Dekontaminacja aparatów endoskopowych polega na

A

czyszczenie mechaniczne
* dezynfekcja wysokiego stopnia
* sterylizacja - ilość przeprowadzonych sterylizacji może wpływać na żywotność endoskopu
* przechowywanie

23
Q

Od czego zależy wybór metody dezynfekcji

A

jest zabiegiem prowadzącym do zniszczenia lub usunięcia wegetatywnych form
drobnoustrojów, przeważnie nie niszczy zarodników i jest procesem nie zapewniającym
wyjałowienia środowiska
* skuteczność preparatów dezynfekcyjnych zależy od:
◦ czasu działania
◦ stężenia preparatu
◦ temperatury
◦ pH
◦ twardości wody
◦ ilości drobnoustrojów
* wybór metody zależy od:
◦ ryzyka zakażenia sprzętem, narzędziami, powierzchniami, pacjenta i personelu
◦ właściwości sprzętu, narzędzi, powierzchni do środków dezynfekcyjnych
◦ właściwości środków dezynfekcyjnych

24
Q

sterylizacja parowa

A

przeprowadzana za pomocą nasyconej pary wodnej pod
ciśnieniem w urządzeniach zwanych autoklawami, wykorzystywana do bielizny
operacyjnej, materiałów opatrunkowych, narzędzi chirurgicznych, wyrobów gumowych,
płynów

25
Q

sterylizacja suchym, gorącym powietrzem

A

wykorzystuje się powietrze o
temperaturze 160-200°C działające 30-150 minut (przestarzała, tylko do szkła
laboratoryjnego)

26
Q

sterylizacja gazowa:

A

sterylizacja tlenkiem etylenu - przeprowadzana w specjalnych aparatach w temp. 50-
60°C
* wymaga degazacji materiału
* do sterylizacji materiału wrażliwych na wysoką temperature (guma, endoskopy)
* toksyczna, wypierana przez sterylizacje plazmową

▪ sterylizacja parami formaldehydu - wykorzystuje się tutaj temp. 60°C
* wykorzystywana do sterylizacji łóżek lub tworzyw sztucznych

27
Q

sterylizacja radiacyjna

A

wykorzystuje promieniowanie gamma, do sterylizacji sprzętu
jednorazowego, gotowych podłoży i pojemników do przesyłania materiałów do badań
mikrobiologicznych, przeszczepów biostatycznych

28
Q

sterylizacja plazmowa

A

wykorzystuje nadtlenek wodoru w warunkach wysokiej
próżni, doprowadzony do postaci pary, a następnie do zjonizowania, do endoskopów,
implantów i tworzyw sztucznych

29
Q

Chemiczne i biologiczne metody kontroli w autoklawie

A

W kontroli sterylności można użyć:
◦ wskaźników fizycznych – przyrządy pomiarowe będące na wyposażeniu sterylizatora
◦ wskaźników chemicznych – paski lub rurki wskaźnikowe z substancjami
zmieniającymi barwę, wyróżnia się wskaźniki jedno i wieloparametrowe oraz
integrujące i emulujące
◦ wskaźników biologicznych – zarodniki Geobacillus stearothermophilus lub Bacillus
atrophaeus (wynik po 7 dniach). Można zastosować także test fiolkowy (wynik po 48h)
lub szybkie testy (odczyt po 3h)

30
Q

. Co zawiera raport ze sterylizacji

A
  • numer sterylizatora oraz cyklu
  • program sterylizacyjny oraz rezultat
  • parametry procesu sterylizacji (temperatura, ciśnienie, czas wyjaławiania)
  • wyniki kontroli indykatorów
  • osobę odpowiedzialną za proces
  • datę sterylizacji