méthodes moléculaires I Flashcards

1
Q

qu’est ce qui cause l’instabilité génétique et la variation du nombre de dinucléotides?

A

une mutation dans les enzymes de réparations

le nbr de copies de dinucléotides varient ainsi d’une cellule à l’autre

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2
Q

comment la chimiothérapie 5-FU est-elle affectée?

A

MMR reconnait base modifiée 5-FU et induit l’apoptose de la cellule, mais si MMR défectueux = flop

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3
Q

conditions d’utilisation du PCR ?

A

lorsqu’on veut cibler plusieurs dinucléotides à la fois pour détecter l’instabilité, une cellule seulement est suffisante

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4
Q

quels sont les caractéristiques de MMR anormal et d’instabilité génétique sur un gel après PCR?

A

une colonne plus longue que l’autre, la taille des fragments n’est pas pareille

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5
Q

quelles sont les techniques de marquage des fragments d’ADN?

A

amorce liée à une molécule fluorescente, amorce fluorescente universelle, agent intercalant (non spécifique)

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6
Q

qu’est ce que l’analyse pas électrophorèse capillaire?

A

on fait une électrophorèse à travers le capillaire (contient du gel). l’ADN issu d’un PCR dans pleins de petits tubes migre vers l’anode (+).

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7
Q

quel problème vient avec l’utilisation du formaldéhyde?

A

cassures et bris dans les brins d’ADN = PCR beaucoup plus difficile

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8
Q

expliquer les amorces universelles

A
  1. introduction d’une amorce avec une queue phagique

2. ajout d’une amorce phagique fluorescente (qui vient s’hydrider à la queue phagique de l’amorce précédente)

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9
Q

comment on évalue l’instabilité génétique avec l’électrophorèse capillaire?

A

plusieurs pics = plusieurs variations de dinucléotides

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10
Q

quel est le plus grand danger avec un PCR?

A

une contamination

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11
Q

quel est le principe du PCR en temps réel?

A

émission de fluorescence durant la réaction de PCR. nécessite un appareil capable d’exciter et de capter la fluorescence émise

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12
Q

qu’est ce que la méthode TaqMan?

A

Q (quencher) absorbe la lumière. Lorsque enzyme Pol passe= dégrade la sonde, libère la lumière. Chaque sonde à une nucléotide et une lumière associée

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13
Q

par quoi la méthode TaqMan est-elle limitée?

A

par les filtres d’excitation et d’émission. Les valeurs des différentes sondes doivent être très distante sinon l’émission d’une excite l’autre

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14
Q

comment les sondes taqman discrimine les allèles normales des allèles mutées?

A

via l’hybridation des nucléotides

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15
Q

conditions d’utilisation de taqman?

A

DÉTECTION de mutations connues, plusieurs produits PCR en même temps (pls gènes), ne requiert pas d’électrophorèse

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16
Q

à quoi sert le qPCR?

A

quantification d’une MUTATION par PCR avec amorces allèle spécifique

17
Q

Avec quoi on quantifie les produits de PCR pour le qPCR?

A

avec une sonde TaqMan. Allèle mutée vs normal, chacune une couleur et détection de l’intensité du signal

18
Q

À quoi sert la courbe standard lors de la quantification des mutations?

A

savoir si la quantité de mutations est significative. plus la courbe franchit le seuil tôt, plus il y a de mutations

19
Q

savoir mesurer les CT et la quantité de copies de départ

A

OKI. voir graphique dans les notes

20
Q

comment on estime le pourcentage de mutants?

A

nbr de copies mutantes/nbr de copies totales x 100

21
Q

à quoi sert le RT-qPCR?

A

quantification d’un gène de fusion. détecte certains points de cassures spécifiques

22
Q

Quel est l’étape préalable à la détection par amorces complémentaires?

A

ARNm –> ADNc via réverse transcriptase, oli dt et amorces non-spécifiques

23
Q

quelle est la sonde utilisée lors de la détection des réactions de réarrangement?

A

TaqMan (détection des différentes fluorescence)

24
Q

d’un point de vue clinique, à quoi sert le RT-qPCR?

A

faire un suivi au niveau du patient (pas diagnostic). BUT: passer en dessous du seuil moléculaire 0.1 (BCR-ABL %)

25
Q

conditions d’utilisation de RT-qPCR?

A

permet suivi, réarrangements connus, étape initiale RT, séquence contrôle nécessaire

26
Q

Qu’est-ce que le CT représente?

A

le nombres de cycles auxquels la courbe atteint une phase exponentiel

27
Q

À quoi sert MLPA?

A

détection d’une délétion / duplication (souvent exons)

28
Q

quelles composantes retrouve-t-on sur les sondes MLPA?

A

amorce, “stuffer” et sonde (séquences de nucléotides connus)

29
Q

Quel est le principe de MLPA?

A

ont vérifie si deux longues sondes s’hydribent une à coté de l’autre, permettant à la ligase de les liguer. Si elles sont trop loin, la polymérase ne pourra amplifier ce fragment.

30
Q

À quoi sert le “stuffer” ?

A

permet de détecter plusieurs délétions en même temps (variation de la grosseur du fragment amplifier)

31
Q

par quelle analyse on détecte les délétions MLPA?

A

normalisation de la longueur des fragments (plus facile à voir à l’oeil nu)