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Pathologie clinique 3 - Cytologie > Introduction à la cytologie > Flashcards

Introduction à la cytologie Flashcards

1
Q

La cytologie permet quoi?

A

L’évaluation cellulaire de nombreux tissus et de fluides corporels

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Q

Vrai ou Faux?
La cytologie peut être utilisée seulement pour le diagnostic de très peu de lésion

A

Faux, Elle est utilisée pour le diagnostic d’une très grande variété de lésions -> rendement diagnostic élevé

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3
Q

Nommez 4 avantages de la cytologie

A
  • le prélèvement requiert peu de matériel
  • technique peu invasive dans la majorité des cas de lésions externes
  • peut être réalisés sans anesthésie
  • plus économique que le prélèvement et l’examen histopathologique.
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4
Q

À quelles questions importantes au sujet d’une lésion la cytologie peut-elle répondre? (3)

A
  • Est-ce une lésion inflammatoire? Si oui, est-ce qu’elle en est l’étiologie?
  • Est-ce une lésion non inflammatoire? Si oui, est-ce une lésion non tumorale ou tumorale? Est-ce une lésion bénigne ou maligne?
  • Quelle serait la prochaine étape?
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5
Q

Quelles sont les limitations de la cytologie? (4)

A
  • pour certaines lésions, l’architecture tissulaire est nécessaire afin d’obtenir le diagnostic
  • si le pronostic est grave et que le traitement est couteux, complexe ou risqué, une confirmation histopathologique est préférable
  • le rendement diagnostique de la cytologie dépend de la qualité de l’échantillon
  • la justesse du diagnostic dépend de la représentativité de l’échantillon
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6
Q

Quel est le principal facteur affectant le rendement diagnostic de la cytologie?

A

La qualité de l’échantillon

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7
Q

Vrai ou Faux?
Pour maximiser le potentiel de la cytologie, certaines précautions
doivent être respectées.

A

Vrai!

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8
Q

Quel est le matériel nécessaire pour effectuer une cytologie? (8)

A
  • aiguilles de calibre 20 à 25
  • seringues de 5-25ml
  • courte tubulure peut également être utilisée (pour ponction par aspiration)
  • cotons-tiges pour un écouvillonnage
  • lames de bistouri émoussés
  • tubes avec EDTA (pour la préservation d’échantillons de liquides)
  • tube sec (pour la culture)
  • un colorant cytologique de type Romanowsky comme le Diff-Quick
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9
Q

Pourquoi un tube sec est-il préférable à un tube EDTA pour la culture?

A

À cause de l’effet bactériostatique de l’EDTA

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10
Q

Nommez différentes techniques de prélèvements cytologique (4)

A
  • ponction à l’aiguille sans aspiration
  • ponction à l’aiguille avec aspiration
  • impression
  • grattage
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11
Q

Vrai ou Faux?
La ponction à l’aiguille fine (avec ou sans aspiration) est la technique de choix pour la majorité des cas de lésions solides tels que les masses cutanées et sous-cutanées

A

Vrai!

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12
Q

Quels sont les avantages d’une ponction à l’aiguille sans aspiration? (2)

A
  • excellente préservation des cellules
  • minimise les saignements
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13
Q

Quelle est la technique de ponction à l’aiguille sans aspiration? (5)

A
  • aiguille 21-G à 23- G
  • mouvement de va et vient
  • l’extrémité de l’aiguille doit rester dans la la masse
  • réorientation de l’aiguille
  • après 3-5 passages, l’aiguille est connectée à une seringue et le contenu est éjecté sur une lame
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14
Q

Quels sont les avantages de la ponction à l’aiguille avec aspiration? (2)

A
  • favorise l’exfoliation cellulaire, mais attention à la préservation cellulaire et aux saignements
  • alternative à la technique sans aspiration
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15
Q

Quelle est la technique de ponction à l’aiguille avec aspiration? (4)

A
  • l’aiguille est connectée à une seringue de 12 ou 20 ml avec le piston légèrement reculé
  • la lésion est ensuite ponctionnée et une légère pression négative est appliquée en maintenant le piston de seringue en position reculée
  • des fragments tissulaires sont détachés par pression négative
  • le contenu est éjecté sur une lame de verre
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16
Q

Pourquoi ajouter une rallonge flexible de tubulure entre l’aiguille et la seringue lors de ponction à l’aiguille avec aspiration?

A

Permet une meilleure manipulation de l’aiguille

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17
Q

Quand peut-on faire une cytologie avec impression?

A

Avec des lésions exsudatives ou des biopsies

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18
Q

L’impression à partir de lésions exsudatives est une excellente technique pour quoi?

A

Pour l’identification de microorganismes

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19
Q

Complétez: Lors d’impression à partir de lésions exsudatives, la cytologie est réprésentative de la _______ seulement

A

surface

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20
Q

Quelle est la technique de cytologie par impression? (2)

A
  • Apposition d’une lame sur une lésion exsudative en apposant une légère pression pour permettre l’adhésion des cellules
  • À partir d’une biopsie, l’impression devrait être réalisée sur une coupe fraîche
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21
Q

Complétez: L’étalement doit se faire rapidement pour éviter la _______ et l’_________ du spécimen

A

coagulation
assèchement

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22
Q

Vrai ou Faux?
On veut obtenir une couche épaisse avec de la superposition de cellules sur la lame

A

Faux, couche monocellulaire

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23
Q

Vrai ou Faux?
Il faut placer l’aiguille loin de la lame lorsqu’on éjecte son contenu

A

Faux, déposer l’aiguille sur la lame pour éviter un étalement en « éclat d’obus »

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24
Q

Comment se fait l’étalement sur la lame?

A

Pour un étalement optimal, le contenu de l’aiguille est délicatement poussé sur une lame de verre propre. Une deuxième lame est déposée délicatement et perpendiculairement à la première, puis glissée afin de procéder à l’étalement

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25
Q

Complétez: Il faut absolument éviter d’appliquer une pression trop importante afin de ne pas provoquer de _________

A

rupture cellulaire

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26
Q

Quelles cellules sont particulièrement fragiles et ont tendance à se briser très facilement au moment de l’étalement?

A

Les cellules rondes (lymphocytes, mastocytes, histiocytes) et les cellules de certaines tumeurs épithéliales

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27
Q

Vrai ou Faux?
L’étalement à un impact majeur sur la qualité de la cytologie et sur l’apparence des cellules

A

Vrai!

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28
Q

Complétez: Pour permettre un examen cytologique adéquat, tous les liquides doivent être conservés dans un tube avec ________

A

EDTA

29
Q

Pourquoi la préparation cytologique des spécimens liquides doit-elle se faire dans un tube EDTA? (3)

A
  • Empêche la formation de fibrine
  • Préserve la morphologie cellulaire
  • Permet l’évaluation de la morphologie des cellules et de déterminer le comptage cellulaire
30
Q

À quoi faut-il faire attention avec le tube EDTA?

A

Attention à la surestimation des protéines totales au réfractomètre s’il y a un excès d’EDTA

31
Q

Complétez: Pour la ________, un deuxième échantillon doit être prélevé et conservé dans un tube stérile sans additif ou dans un milieu de transport approprié

A

bactériologie

32
Q

Si le dosage de paramètres biochimiques est envisagé (ex. : triglycérides, créatinine), une portion du liquide devrait également être conservée dans quel type de tube?

A

Un tube sec sans additif

33
Q

Idéalement quand les spécimens liquides doivent-ils être préparés?

A

Le plus rapidement possible pour assurer une qualité optimale (étalement, comptage cellulaire et taux de protéines). Si ce n’est pas possible, l’échantillon devrait être gardé au froid (4-8 ºC) jusqu’au moment de l’envoi

34
Q

Après combien de temps de conservation du liquide la qualité diminue-t-elle?

A

Après 24h

35
Q

Vrai ou Faux?
Si le liquide apparaît opaque et de cellularité élevée, un frottis direct du liquide peut être effectué

A

Vrai!

36
Q

Deux techniques d’étalement peuvent être employées. Le liquide peut être préparé en procédant à un étalement entre deux lames de verre comme pour une cytologie de tissu solide. Quelle est l’autre alternative?

A

un étalement en utilisant la technique de préparation de frottis sanguin avec arrêt brusque peut être employé

37
Q

Qu’est ce que l’arrêt brusque permet?

A

L’arrêt brusque permet aux cellules nucléées de se concentrer le long de la ligne d’arrêt

38
Q

Vrai ou Faux? La technique d’étalement avec arrêt brusque est adéquate pour les fluides de cellularité basse

A

Faux, élevée

39
Q

Que faut-il faire si le liquide est faiblement cellulaire?

A

Les cellules doivent être concentrées par centrifugation puis étalement du sédiment (frottis direct ou étalement avec arrêt)

40
Q

Vrai ou Faux?
Les grands laboratoires possèdent généralement une cytocentrifugeuse permettant de concentrer les cellules sur une lame de verre

A

Vrai!

41
Q

L’évaluation complète d’un liquide d’épanchement comprend quoi? (4)

A
  • mesure du taux de protéine (par réfractométrie ou en biochimie)
  • comptage des cellules nuclées (manuel ou automatisé)
  • différentiel cellulaire
  • évaluation cytologique des cellules
42
Q

Comment se fait l’envoi de liquide à un laboratoire externe? (5)

A
  • Envoyer des lames non colorées avec une portion du liquide (dans tube EDTA)
  • Isoler le colis contre le gel et la chaleur excessive
  • Envoyer avec de la glace
  • Donner une anamnèse complète
  • Attention au vapeur de formol!
43
Q

Vrai ou Faux?
Des vapeurs de formol peuvent facilement s’échapper de la plupart des types de contenants. Les lames non colorées seront fixées par les vapeurs de formol et ne pourront pas être colorées adéquatement.

A

Vrai!

44
Q

Quelle est la première étape de l’examen d’une cytologie?

A

Identifier le type de cellules présent dans le but de déterminer le processus pathologique -> nature primaire de la lésion: inflammatoire ou non inflammatoire ( ou mixtes)

45
Q

Quelle est la deuxième étape de l’examen d’une cytologie?

A

Caractériser les cellules

46
Q

Quelles sont les classifications possibles lors de la première étape de l’examen cytologique?

A
  • cellules inflammatoires
  • cellules inflammatoires et non-inflammatoires
  • cellules non inflammatoires
47
Q

Comment se fait la 2e étape lors de population de cellules inflammatoires? (2)

A
  • proportion relative de chaque type de cellules?
  • cause étiologique visible? (agent infectieux, matériel étranger, cellules tumorales…)
48
Q

Quelles sont les classifications possibles des lésions inflammatoires lors de la 2e étape de l’examen cytologique? (4)

A
  • > 80-85% de neutrophiles: inflammation neutrophilique - suppuratif
  • 50-80% de neutrophiles et 20-50% de macrophages: inflammation mixte neutrophilique et macrophagique - pyogranulomateux
  • > 50% macrophages: inflammation macrophagique - granulomateux
  • > 10% d’éosinophiles: inflammation éosinophilique
49
Q

La présence de neutrophiles dégénérés suggère quoi?

A

suggère une inflammation de nature septique, mais sans toutefois le confirmer

50
Q

Complétez: Le terme pyogranulomateux est réservé aux lésions avec macrophages _______

A

épithélioïdes

51
Q

En présence d’une population de cellules non inflammatoires, quelle est la prochaine étape?

A

La prochaine étape est d’identifier à quel type cellulaire appartient cette population (origine? critères de malignité)

52
Q

Quels sont les 4 types cellulaires identifiés en cytologie lors de lésions non inflammatoires?

A
  • Cellules épithéliales
  • Cellules mésenchymateuses
  • Cellules rondes
  • Mélanocytaires
53
Q

Quelle est l’apparence des cellules épithéliales? (2)

A
  • cuboïde à polygonale
  • en amas cohésifs
54
Q

Quelles sont les origines tissulaires possibles des cellules épithéliales?

A

épithélium de la peau, épithélium
glandulaire, des poumons

55
Q

Quelle est l’apparence des cellules fusiformes à étoiles (mésenchymateuses)? (4)

A
  • allongées, étoilées, triangulaires, ovales
  • fins prolongements cytoplasmiques
  • isolées ou à l’occasion en agrégats lâches
  • contours cellulaires souvent mal définis
56
Q

Quelles sont les origines tissulaires possibles des cellules fusiformes à étoilées?

A

tissu mésenchymateux (os, cartilage, etc.)

57
Q

Quelle est l’apparence des cellules rondes? (2)

A
  • rondes
  • isolées
58
Q

Quelles sont les tissus/cellules possibles des cellules rondes?

A

mastocytes, histiocytes, lymphocytes, plasmocytes, cellules hématopoïétiques et nombreux autres types de cellules parfois d’apparence ronde

59
Q

Quelle est l’apparence des cellules mélanocytaires? (3)

A
  • rondes, légèrement étoilées
  • bordures cytoplasmiques parfois mal délimitées
  • parfois en petits amas
    lâches d’apparence épithélioïde
60
Q

Comment se fait la caractérisation cytologique des tissus? (3)

A
  • tissu normal, tissu hyperplasique, tumeur bénigne: absence de critères de malignité
  • tissu dysplasique/réactionnel: présence d’anomalies cytologiques
  • tumeur maligne: critères de malignité
61
Q

Comment s’appelle une tumeur maligne d’origine épithéliale vs mésenchymateuse?

A
  • Épithéliale: carcinome
  • Mésenchymateuse: sarcome
62
Q

Lorsqu’on a identifié le type cellulaire, on doit décider si le processus est bénin (néoplasique
bénin, hyperplasique ou dysplasique) ou malin. Pour ce faire, on recherche quoi?

A

La présence de critères de malignité

63
Q

Quels sont les 3 types de critères de malignité?

A
  • Critères généraux
  • Critères cytoplasmiques
  • Critères nucléaires
64
Q

Quels sont les critères de malignité généraux? (4)

A
  • Anisocytose
  • Macrocytose
  • Pléomorphisme (variabilité de forme cellulaire)
  • Entassement cellulaire, perte de cohésion
65
Q

Quels sont les critères de malignité cytoplasmiques? (2)

A
  • Augmentation de la basophilie
  • Vacuolisation anormale
66
Q

Quels sont les critères de malignité nucléaires? (7)

A
  • Anisocaryose
  • Macrocaryose
  • Rapport noyau: cytoplasme ↑
  • Chromatine agglomérée ou d’apparence variable
  • Mitoses anormales
  • Multinucléation
  • Nucléoles irréguliers, gros, proéminents, multiples
67
Q

Vrai ou Faux?
Aucun critère cytologique ne permet à lui seul de distinguer un processus malin d’un processus bénin

A

Vrai!
> 3 critères dans la majorité des cellules examinées sur une cytologie de bonne qualité

68
Q

Vrai ou Faux?
Certaines lésions aux cellules d’apparence uniforme peuvent être
malignes et vice-versa aussi

A

Vrai!

69
Q

Nommez 3 tumeurs malignes qui démontrent généralement peu de critères de malignité

A
  • Adénocarcinome thyroïdien chez le chien
  • Adénocarcinome des glandes apocrines des sacs anaux
  • Carcinomes neuroendocriniens

Pathologie clinique 3 - Cytologie (4 decks)

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