COURS 1.2 Flashcards

1
Q

Quel est le rôle du taux d’hémoglobine dans une formule sanguine complète (FSC) ?

A

Le taux d’hémoglobine permet de déterminer s’il y a présence d’anémie et de quelle origine, par exemple une anémie inflammatoire microcytaire dans le cas d’une maladie chronique.

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2
Q

Qu’indique généralement un nombre élevé de leucocytes dans la FSC ?

A

Un nombre élevé de leucocytes peut refléter une infection importante.

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3
Q

Quel rôle joue la différentiel leucocytaire dans l’orientation du diagnostic ?

A

La différentiel leucocytaire permet d’orienter le diagnostic vers une infection bactérienne ou virale, ou vers une allergie.

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4
Q

À quoi sert la numération plaquettaire dans une FSC ?

A

La numération plaquettaire peut expliquer certains problèmes de l’hémostase primaire.

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5
Q

Quelle est l’utilité de la vitesse de sédimentation (VS) ?

A

La vitesse de sédimentation élevée indique la présence d’une inflammation. Elle peut être utile lorsqu’une infection est suspectée, comme une cellulite ou une ostéite.

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6
Q

Pourquoi la VS n’est-elle pas très spécifique ?

A

La VS tend à augmenter avec l’âge et dans des contextes non pathologiques ou bénins, comme la grossesse ou un rhume.

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7
Q

Quelle est la différence entre la VS et la protéine C réactive (PCR) ?

A

La PCR joue un rôle équivalent à la VS, mais elle est plus sensible.

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8
Q

Quelles situations peuvent influencer la glycémie chez les sujets diabétiques ?

A

Les situations influençant la glycémie incluent la présence d’une pathologie systémique aiguë causant un stress physiologique, ainsi que la prise de glucocorticoïdes ou de glucosamine.

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9
Q

Que représente l’hémoglobine glyquée (HbA1c) ?

A

L’hémoglobine glyquée donne un aperçu de la glycémie moyenne pour une période d’environ trois mois précédant le prélèvement sanguin.

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10
Q

Quels tests devraient minimalement être inclus dans un bilan hépatique ?

A

Un bilan hépatique devrait minimalement inclure le dosage de l’enzyme hépatique alanine aminotransférase (ALT).

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11
Q

Pourquoi l’enzyme aspartate aminotransférase (AST) est-elle moins spécifique au foie ?

A

L’AST est moins spécifique au foie en raison de sa présence dans de multiples organes.

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12
Q

Dans quels cas les gamma-glutamyltranspeptidases (GGT) sont-elles utiles ?

A

Les GGT augmentent dans les hépatites toxiques médicamenteuses et alcooliques.

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13
Q

Que peuvent indiquer les différentes formes de bilirubine dans les analyses ?

A

La bilirubine totale, libre et conjuguée peuvent être mesurées pour suspecter une stase biliaire.

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14
Q

À quoi sert l’albumine dans les analyses sanguines ?

A

L’albumine sert à évaluer la nutrition et la présence de maladies aiguës ou chroniques.

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15
Q

Pourquoi la pré-albumine est-elle plus représentative de l’état nutritionnel actuel ?

A

La pré-albumine reflète mieux l’état nutritionnel actuel en raison de sa demi-vie plus courte.

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16
Q

Quelles valeurs inclut habituellement un bilan rénal ?

A

Un bilan rénal habituel inclut la créatinine, le sodium, le potassium et le chlore.

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17
Q

Pourquoi la créatinine ne doit-elle pas être utilisée en valeur absolue comme mesure de la fonction rénale ?

A

La créatinine dépend de la masse musculaire du patient et peut être augmentée temporairement après l’activité physique

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18
Q

Quelles sont les conséquences d’une hyponatrémie ?

A

Une hyponatrémie peut conduire à un œdème cérébral.

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19
Q

Comment une hypernatrémie affecte-t-elle le corps ?

A

Une hypernatrémie provoque des symptômes de déshydratation, allant des douleurs musculaires à l’altération de l’état de conscience.

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20
Q

Quels effets ont les variations du taux de potassium sérique ?

A

Les variations du taux de potassium sérique affectent principalement la contractilité et le rythme cardiaques

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21
Q

Quand observe-t-on une diminution du chlore sérique ?

A

Une diminution du chlore sérique se voit en cas de vomissements ou de diarrhées profuses.

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22
Q

Quelles conditions provoquent une élévation du chlore sérique ?

A

Une élévation du chlore sérique se voit dans l’acidose métabolique et la déshydratation.

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23
Q

Qu’indique un taux élevé d’urée plasmatique ?

A

Un taux élevé d’urée plasmatique est associé à des encéphalopathies et donne des indications sur l’état d’hydratation du patient.

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24
Q

Quel test a remplacé graduellement le test au KOH et pourquoi ?

A

Le test au calcofluor a remplacé graduellement le test au KOH car il est plus rapide à réaliser en laboratoire et met davantage en évidence les cellules fongiques grâce à la teinte blanche qu’il donne aux structures contenant de la chitine.

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25
Q

Quel est le rôle de la chitine dans le test au calcofluor ?

A

La chitine, un polysaccharide azoté, rend les cellules fongiques fluorescentes d’un violet vif à la lumière ultraviolette.

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26
Q

Pourquoi utilise-t-on une solution de KOH conjointement au test au calcofluor ?

A

Une solution de KOH est utilisée pour dissoudre les débris de kératine qui accompagnent fréquemment les spécimens.

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27
Q

Quel est l’avantage d’ajouter un colorant comme le bleu de Evans dans le test au calcofluor ?

A

Le bleu de Evans réduit la fluorescence du fond de la lame et des tissus non fongiques, rendant les éléments fongiques plus visibles.

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28
Q

Comment apparaissent les éléments fongiques et non fongiques dans le test au calcofluor combiné au bleu de Evans ?

A

Les tissus non-fongiques apparaissent rouge-orangé et les éléments fongiques sont vert pomme lorsqu’exposés à la lumière ultraviolette.

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29
Q

Quelles structures permettent d’identifier le test à l’hydroxyde de potassium (KOH) ?

A

Le test à l’hydroxyde de potassium permet d’identifier la présence des hyphes et des spores de dermatophytes et de levures.

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30
Q

Pourquoi le test à l’hydroxyde de potassium ne permet-il pas d’identifier précisément le microorganisme en cause ?

A

L’identification précise du microorganisme nécessite des cultures fongiques.

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31
Q

Quels types de spécimens peuvent être prélevés pour le test à l’hydroxyde de potassium ?

A

Les spécimens peuvent être des squames obtenues par grattage des lésions, le toit d’une vésicule, un grattage du lit unguéal profond ou des débris sous-unguéaux.

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32
Q

Quelle concentration de solution d’hydroxyde de potassium est utilisée dans le test à l’hydroxyde de potassium ?

A

Une solution aqueuse d’hydroxyde de potassium à une concentration de 10 % à 20 % est utilisée.

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33
Q

Combien de temps laisse-t-on la solution d’hydroxyde de potassium agir avant l’examen au microscope ?

A

On laisse la solution d’hydroxyde de potassium agir pendant 5 à 15 minutes.

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34
Q

Quel est le rôle d’une goutte de colorant ajoutée dans le test à l’hydroxyde de potassium ?

A

La goutte de colorant rend les champignons plus visibles.

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35
Q

Quels éléments fongiques sont recherchés lors de l’examen au microscope dans le test à l’hydroxyde de potassium ?

A

On recherche des hyphes vus comme des cylindres bleu-vert avec des embranchements et des septums, ou des spores.

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36
Q

Quelle structure fongique est typique du Tinea versicolor dans le test à l’hydroxyde de potassium ?

A

La présence d’hyphes recourbés avec des levures rondes ayant l’aspect d’un spaghetti aux boulettes (spaghetti-and-meatballs) est typique du Tinea versicolor.

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37
Q

Quelle est la sensibilité estimée du test à l’hydroxyde de potassium ?

A

La sensibilité du test à l’hydroxyde de potassium est estimée à environ 60 %.

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38
Q

Quelle est la sensibilité du test à l’acide périodique Schiff (PAS) ?

A

La sensibilité du test à l’acide périodique Schiff est d’environ 90 %.

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39
Q

Que permet d’identifier le test à l’acide périodique Schiff (PAS) ?

A

Le test à l’acide périodique Schiff met en évidence les polysaccharides de la membrane cytoplasmique des dermatophytes.

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40
Q

Quelle est la différence principale entre le test à l’acide chromique Schiff (CAS) et le test à l’acide périodique Schiff (PAS) ?

A

Le test à l’acide chromique Schiff utilise un oxydant plus puissant, permettant de colorer la membrane basale et les fibres réticulées des dermatophytes.

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41
Q

Quel est l’avantage du test à l’acide chromique Schiff par rapport au test à l’acide périodique Schiff ?

A

Le contraste entre le fond de la lame et le spécimen de mycose est amélioré.

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42
Q

Comment les sillons suspects pour la présence de mites sont-ils grattés lors du prélèvement des squames de lésions galeuses ?

A

Les sillons sont grattés à l’aide d’une lame #11 ou 15.

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43
Q

Que permet de visualiser la technique de squames de lésions galeuses ?

A

Cette technique permet de visualiser les mites elles-mêmes, leurs œufs et leurs résidus fécaux.

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44
Q

Quel est le but de la coloration de Gram ?

A

La coloration de Gram permet de mettre en évidence les caractéristiques de la paroi bactérienne et de catégoriser les différents pathogènes responsables des infections.

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45
Q

Quelles sont les différences entre les parois des bactéries à Gram positif et à Gram négatif ?

A

Les bactéries à Gram positif ont une paroi simple dense en peptidoglycanes, alors que les bactéries à Gram négatif ont moins de peptidoglycanes mais possèdent une membrane externe additionnelle.

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46
Q

Comment les bactéries à Gram positif et à Gram négatif apparaissent-elles après la coloration de Gram ?

A

Les bactéries à Gram positif apparaissent violettes, et les bactéries à Gram négatif apparaissent roses.

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47
Q

Quelle technique de coloration est utilisée pour les mycobactéries ?

A

La technique de coloration de Ziehl-Neelsen est utilisée pour les mycobactéries.

48
Q

Quelle technique de coloration est utilisée pour les spirochètes ?

A

La technique de coloration de Warthin-Starry est utilisée pour les spirochètes.

49
Q

Pourquoi les levures apparaissent-elles violettes à la coloration de Gram ?

A

Les levures apparaissent violettes en raison de leur membrane, bien que leur composition soit différente de celle des bactéries Gram positif.

50
Q

Quels types de bactéries cocci Gram positif peuvent être trouvés en amas, en chaînettes ou en paires ?

A

En amas : Staphylococcus.

En chaînettes : Streptococcus, Enterococcus.

En paires : Pneumocoque.

51
Q

Quels types de bactéries bâtonnets Gram positif peuvent être identifiés ?

A

Listeria, Corynebacterium, Bacillus, Clostridium.

52
Q

Quels types de bactéries cocci Gram négatif peuvent être identifiés ?

A

Neisseria, Moraxella.

53
Q

Quels types de bactéries bâtonnets Gram négatif peuvent être identifiés ?

A

Entérobactéries, Pseudomonas, Haemophilus, Bacteroides fragilis.

54
Q

Que permet d’identifier la technique de coloration de Tzanck ?

A

La technique de coloration de Tzanck permet d’identifier la présence des virus de l’herpès simplex (HSV) et de la varicelle (VZV).

55
Q

La coloration de Tzanck peut-elle différencier les virus de l’herpès simplex (HSV) et de la varicelle (VZV) ?

A

NON

56
Q

Quelle est la préparation des lames pour la coloration de Tzanck ?

A

La préparation des lames est similaire à celle du test à l’hydroxyde de potassium, sauf que les spécimens sont fixés avec du méthanol et laissés à sécher à l’air libre avant d’être colorés.

57
Q

Que recherche-t-on au microscope lors d’une coloration de Tzanck ?

A

On recherche des cellules géantes multinucléées ou des kératinocytes atypiques à larges noyaux.

58
Q

Quelle est la sensibilité de la coloration de Tzanck ?

A

La sensibilité de ce test est meilleure lorsqu’il est effectué sur des lésions précoces.

59
Q

Quels types d’échantillons sont les plus adéquats pour les cultures bactériennes ?

A

Les échantillons les plus adéquats pour les cultures bactériennes sont le contenu d’une vésicule, d’une pustule ou d’une bulle intacte. Un kyste peut également être aspiré à l’aiguille.

60
Q

Pourquoi est-il fréquent d’obtenir de nombreux contaminants lors de cultures sur des ulcères ?

A

Il est fréquent d’obtenir de nombreux contaminants à la culture malgré un débridement et un nettoyage vigoureux de la plaie.

61
Q

Quelle méthode donne la meilleure sensibilité et spécificité pour identifier le microorganisme responsable d’une infection locale ?

A

La mise en culture d’une biopsie cutanée du fond de l’ulcère donne la meilleure sensibilité et spécificité.

62
Q

Comment sont prélevés les échantillons pour les cultures fongiques ?

A

Les échantillons pour les cultures fongiques sont prélevés à l’aide d’un coton-tige sur les muqueuses et les régions humides, par le grattage de squames, par le curetage des débris unguéaux proximaux ou par biopsie.

63
Q

Pourquoi est-il avantageux de préciser le diagnostic présomptif lors de l’envoi d’un spécimen microbiologique ?

A

Préciser le diagnostic présomptif permet de choisir la meilleure méthode de culture pour obtenir des informations précises sur l’organisme cultivé.

64
Q

Pourquoi est-il important d’identifier précisément la région anatomique d’où provient un échantillon microbiologique ?

A

Identifier la région anatomique permet de mieux comprendre le contexte de la lésion et d’adapter les tests pour obtenir un diagnostic précis.

65
Q

Comment se fait généralement l’ensemencement des spécimens microbiologiques ?

A

L’ensemencement se fait en boîte de Pétri sur une gélose propice à la croissance de l’organisme suspecté.

66
Q

Quel est le délai moyen pour obtenir les résultats d’une culture bactérienne ?

A

Les résultats d’une culture bactérienne sont disponibles en 24 à 48 heures à 25 °C après le traitement du spécimen.

67
Q

Quel est le délai moyen pour la croissance du Candida et des dermatophytes ?

A

Le Candida pousse en moyenne en 3 jours à 37 °C, et les dermatophytes jusqu’à 6 semaines à 37 °C.

68
Q

Quelle est la méthode la plus spécifique pour visualiser le Treponema pallidum ?

A

La microscopie sur fond noir est la méthode la plus spécifique pour visualiser le Treponema pallidum.

69
Q

Quel échantillon est utilisé pour la microscopie sur fond noir ?

A

Le liquide séreux récolté à la surface d’un chancre est utilisé pour la microscopie sur fond noir.

70
Q

Quel est le rôle de l’immunofluorescence directe (DIF) ?

A

L’immunofluorescence directe utilise un anticorps marqué avec un fluorochrome qui se lie à l’antigène recherché, permettant de révéler la présence d’auto-anticorps dans les tissus cutanés.

71
Q

En quoi consiste l’immunofluorescence indirecte (IIF) ?

A

L’immunofluorescence indirecte utilise deux anticorps : un premier qui se lie à l’antigène recherché, puis un second marqué par un fluorochrome qui se lie au premier anticorps.

72
Q

Comment les techniques d’immunofluorescence sont-elles indiquées dans le diagnostic des pathologies ?

A

Ces techniques sont indiquées dans les pathologies comportant une composante immunologique.

73
Q

Que permet de mesurer l’immunofluorescence indirecte ?

A

L’immunofluorescence indirecte permet de mesurer l’activité de la maladie en représentant une titration des auto-anticorps présents dans le sérum.

74
Q

Quel type de lésion est recommandé pour une biopsie ?

A

Il est recommandé de prélever une lésion d’allure récente et non altérée.

75
Q

Quelles exceptions existent concernant le choix d’une lésion pour la biopsie ?

A

Les manifestations cutanées de certaines maladies systémiques, comme le lupus érythémateux, sont plus facilement identifiables à partir d’une lésion ancienne.

76
Q

Quelle solution est recommandée pour la désinfection de la peau avant une biopsie ?

A

Une solution de chlorhexidine est recommandée pour désinfecter la peau avant une biopsie.

77
Q

Quelle anesthésie locale est utilisée avant une biopsie ?

A

Une anesthésie locale par infiltration de xylocaïne à une profondeur juste sous-jacente à la lésion.

78
Q

Quel est l’avantage d’utiliser un anesthésiant contenant de l’épinéphrine pour une biopsie ?

A

Un anesthésiant contenant de l’épinéphrine réduit les saignements et prolonge l’effet anesthésiant.

79
Q

Pourquoi les spécimens doivent-ils être manipulés le moins possible lors d’une biopsie ?

A

Les spécimens doivent être manipulés le moins possible pour préserver leurs caractéristiques histologiques microscopiques.

80
Q

Quelle solution est généralement utilisée pour conserver les spécimens lors d’une biopsie ?

A

Les spécimens sont généralement conservés dans une solution de formol à 10 % de concentration.

81
Q

Quelles sont les indications courantes d’une biopsie ?

A

Une biopsie est indiquée lorsqu’on suspecte une néoplasie maligne, pour la plupart des maladies bulleuses et dans toute situation où l’examen clinique ne permet pas d’obtenir un diagnostic précis.

82
Q

Pourquoi la biopsie par rasage doit-elle être utilisée avec parcimonie ?

A

La biopsie par rasage ne permet pas une analyse des couches en profondeur de l’épiderme.

83
Q

Pour quels types de lésions la biopsie par rasage est-elle appropriée ?

A

La biopsie par rasage est appropriée pour les lésions surélevées d’allure bénigne (naevus, kératose séborrhéique, acrochordon, etc.).

84
Q

Pourquoi la biopsie par rasage n’est-elle pas appropriée pour les lésions d’allure maligne ?

A

La biopsie par rasage ne permet pas une analyse des couches en profondeur de l’épiderme.

85
Q

Comment le saignement est-il contrôlé après une biopsie par rasage ?

A

Le saignement est contrôlé par une pression locale et un pansement.

86
Q

Quand une suture épidermique est-elle parfois nécessaire après une biopsie par rasage ?

A

Une suture épidermique est parfois nécessaire pour refermer la plaie.

87
Q

En quoi la biopsie par rasage profond diffère-t-elle de la biopsie par rasage classique ?

A

La biopsie par rasage profond permet de prélever plus profondément les tissus d’une lésion superficielle sans atteindre le tissu sous-cutané.

88
Q

Quand faut-il refermer le site de la biopsie par rasage profond avec des points de suture ?

A

Il faut refermer le site de la biopsie par rasage profond avec des points de suture lorsqu’une composante dermique probable est présente.

89
Q

Comment la biopsie au poinçon est-elle réalisée ?

A

La biopsie au poinçon est réalisée en appuyant perpendiculairement et fermement un cylindre métallique aux rebords coupants sur la lésion à analyser.

90
Q

Que doit comporter un spécimen obtenu par biopsie au poinçon pour être de qualité ?

A

Un spécimen doit comporter l’épiderme, le derme et une mince couche de tissu sous-cutané.

91
Q

Pourquoi une biopsie de 4 mm et plus doit-elle être suturée ?

A

Une biopsie de 4 mm et plus doit être suturée pour une meilleure guérison.

92
Q

Dans quel cas une marge de tissu sain devrait-elle être prélevée en même temps qu’une partie de la lésion ?

A

Une marge de tissu sain devrait être prélevée si cela est possible, sans compromettre la qualité du prélèvement.

93
Q

Comment une biopsie par incision est-elle réalisée ?

A

Une biopsie par incision est réalisée en excisant partiellement ou complètement la lésion en surface et en profondeur jusqu’à la graisse sous-cutanée ou même jusqu’au fascia musculaire.

94
Q

Quelle méthode permet d’obtenir une cicatrice étroite lors d’une biopsie par incision ?

A

Couper la peau pour former une ellipse plus longue que large dans un rapport de 3:1 ou 4:1 permet d’obtenir une cicatrice étroite.

95
Q

Quand peut-on utiliser des lambeaux de rotation ou d’avancement pour fermer un défaut cutané ?

A

Des lambeaux de rotation ou d’avancement peuvent être utilisés lorsque l’emplacement ou la taille de la lésion ne permet pas une incision en ellipse.

96
Q

Pourquoi une biopsie par incision peut-elle être réalisée en deux temps ?

A

Une biopsie par incision peut être réalisée en deux temps suite à une biopsie moins invasive qui a permis de diagnostiquer une lésion maligne.

97
Q

Que faut-il faire pour une lésion suspecte retirée en tout ou en partie lors d’une biopsie par incision ?

A

La lésion doit être orientée à l’aide de sutures non résorbables et adéquatement documentée sur la requête d’examen histopathologique.

98
Q

Pourquoi le médium de culture pour dermatophytes (DTM) est-il préféré en clinique podiatrique ?

A

Le médium de culture pour dermatophytes est préféré en clinique podiatrique à cause de sa facilité d’utilisation.

99
Q

Quelle substance est ajoutée au médium de culture pour dermatophytes (DTM) pour éviter la contamination bactérienne ?

A

La cycloheximide est ajoutée pour éviter la contamination bactérienne.

100
Q

Comment le DTM indique-t-il la présence d’un dermatophyte ?

A

Le DTM passe du jaune au rouge lorsqu’il y a présence d’un dermatophyte, grâce au rouge phénol, un indicateur de pH présent dans le mélange.

101
Q

Comment le prélèvement de l’échantillon biologique est-il réalisé pour le DTM ?

A

Le site est nettoyé avec de l’alcool isopropylique, puis des squames ou des débris de la tablette unguéale sont prélevés par grattage.

102
Q

Pourquoi le DTM doit-il être lu dans les 14 jours suivant l’ensemencement ?

A

Le DTM doit être lu dans les 14 jours pour éviter les faux positifs.

103
Q

Quel champignon pousse généralement dans les premières 24 heures sur le DTM ?

A

Le Candida albicans

104
Q

Quand le Trichophyton mentagrophytes devient-il visible sur le DTM ?

A

4 à 7 jours.

105
Q

Pourquoi le DTM doit-il être considéré comme un outil de dépistage ?

A

Le DTM ne permet pas l’identification des dermatophytes, mais confirme plutôt leur présence ou leur absence.

106
Q

Quels organismes non dermatophytes peuvent donner des faux positifs sur le DTM ?

A

Aspergillus, Penicillium et d’autres levures peuvent donner des faux positifs.

107
Q

Quel est le but des tests d’allergies épicutanés ?

A

Les tests d’allergies épicutanés permettent d’identifier l’agent causal des dermatites de contact.

108
Q

Comment les substances à tester sont-elles déposées pour les tests d’allergies épicutanés ?

A

Les substances à tester sont déposées dans de petites cupules fixées à la peau à l’aide d’une pellicule plastique.

109
Q

Quelle durée les substances doivent-elles rester en place lors des tests épicutanés ?

A

Les substances doivent rester en place pour 24 à 48 heures.

110
Q

Comment confirme-t-on une hypersensibilité à un agent lors d’un test épicutané ?

A

On confirme une hypersensibilité par l’apparition de lésions vésiculo-papuleuses au site de l’application de l’allergène.

111
Q

Quel type de test est réalisé lorsqu’on soupçonne une photosensibilité ?

A

Un photopatch-test est réalisé lorsqu’on soupçonne une photosensibilité.

112
Q

Comment un photopatch-test est-il réalisé ?

A

Une petite région cutanée est exposée à différents rayonnements UV avec ou sans combinaison d’une exposition topique à une substance.

113
Q

Quels tests permettent d’évaluer la présence d’allergènes systémiques ?

A

Les tests à la piqûre (prick tests) permettent d’évaluer la présence d’allergènes systémiques.

114
Q

Comment les solutions contenant des allergènes sont-elles appliquées pour les prick tests ?

A

Des gouttes de plusieurs solutions contenant des allergènes sont déposées sur la peau, le plus souvent au dos ou sur un avant-bras.

115
Q

Que fait une aiguille de petit calibre lors d’un prick test ?

A

Une aiguille de petit calibre provoque une minime brèche dans la peau jusqu’au derme au centre de chaque goutte.

116
Q

Comment se manifeste une allergie à une substance lors d’un prick test ?

A

Une papule œdémateuse apparaît en une vingtaine de minutes lorsqu’une allergie à une substance est présente.

117
Q
A