Chap 2 Techniques D'analyse De La Composition Biochimique Des Cellules Flashcards
Quels sont les 3 types de chromatographies pour séparer les molécules
1.gel filtration
Les grosses protéines sortent en premier car les petites ont se la difficulté à se faufiler et restent collé aux billes de gel
2.antigène-anticorps
Les premières sont les protéines qui ne sont pas reconnues par les anticorps et les derniers sont celles visés
3.échange ionique
Ex. Si on veut récupérer les protéines chargés négativement, les positives sortent en premier et met nacl (compétition) pour faire décoller les négatives
Quelles sont les 8 techniques d’analyse acide nucléique et protéines
- immuno-histochomie (ihc)
- immunofluorescence (ifc)
- FACS (cryométrie de flux)
- ELISA
- hybridation in situ
- Southern-blot
- Western blot
- nothern-blot
Deçrire le principe et les étapes pour la détection d’une protéine d’intérêt à l’aide d’anticorps sur support SOLIDE
Principe (a partir d’un homogenat cellulaire)
- séparation des protéines selon leur poids moléculaire (électrophorèse-dans un champ électrique)
- immunodetection de la protéine d’intérêt-avec anticorps
ÉTAPES
- extraction et préparation des protéines des échantillons biologiques
- migration (par electrophorese dans un support avec gel/pas malléable) et transfert sur une membrane
- immunodetection
Expliquer le principe de la centrifugation
1.rupture des cellules pour libérer organites et autres constituants broyage de cellule. On les met d’abord dans une solution de pH salin saccharose isotonique (avec mixeur, Potter, ultrason, choc osmotique…) pour obtenir un homogenat cellulaire (organites en suspension + débris cellulaire +constituants biochimiques en solution
2.séparation des constituants par centrifugation;
particules les plus massifs sont au fond
Plus la vitesse de centrifugation est rapide, plus on sépare les molécules en petites tailles
Expliquer le principe de l’ultracentrifugation différentielle
Basé sur la difference de vitesse de sédimentation des organites
Permet de separer des organites avec faible difference de taille
Milieu froid
Centrifugations successives de plus en plus rapide
Expliquer le principe de l’ultracentrifugation sur gradient de densité
-permet de séparer en une seule fois des organites
-gradient de saccharose/sucrose pour les organites et protéine
-gradient de chlorure de césium pour les molécules d’acides nucléiques
Plus dense au fond
Décrire les étapes pour le western blot (1a
3) détection des protéines totale (donc présence ou non) et immunobavardage (1-2 et 4 a 7) permet de déterminer spécifiquement une protéine
- extraction des protéines cellulaires en condition dénaturante ( les protéines sont linéaires , pas de pont disulfure, chargées négativement)
- Electrophorese sur gel d’acrylamide ( séparation seulement en fonction de la masse moléculaire des protéines car comme elles sont toutes chargés négativement, elles se dirigent vers le pole positif (anode)
- Étape pour savoir s’il y a presence ou non de protéine : coloration des gels au bleu de coomassie
Les protéines de même taille apparaissent sous la forme d’une bande - pré-hybridation des membranes (saturation de la membrane avec des protéines de lait)
- Incubation avec l’anticorps primaire (anti corps qui cible la protéine) anti x
- incubation avec l’anticorps secondaire (anticorps anti anti x)
- révélation par chemiluminescence
La techique de western blot permet de detercter quoi (2)
La présence ou non d’un proteine (sauvage ou muté)
La présence d’une protéine mutée plus courte ou plus grande
La technique est donc semi quantitative
Expliquer le concept d’anticorps 1 et 2
Exemple: j’ai une protéine cible x humaine sur une membrane
Anticorps primaire de lapin anti x (la protéine x a été injecté dans un lapin et il a développé des anticorps de type igG anti x
Anticorps secondaire de chèvre anti anti x de lapin couple à une enzyme (les anti x de lapin ont été injecté à une chèvre et la chèvre a fait des anticorps anti lapin anti humain
Être capable d’analyser une western blot
Qu’est-ce qu’une protéine contrôle
But? Savoir si protéine 1 et 2 sont présentes
Sert à quoi le contrôle interne?
Protéine contrôle: protéine qui est exprime de la même manière dans les échantillons contenant le protéine 1 et la protéine 2 (tubuline, actine, GADPH..)
Dans la protéine controle, toutes les échantillons devraient contenir le même nombre de protéine, donc les lignes devraient toutes avoir le même ton de noir (+ noir= + protéine)
Sert à quoi le contrôle interne?
1- la présence ou non d’une protéine ( sauvage ou mutée/plus courte)
2-si il y a plus d’une protéine en particulier, est ce que c’est parce ce qu’il y en a vraiment plus ou c’est parce qu’on a mis plus de protéines initialement dans l’échantillon
Quel est le principe d’une gamme étalon
C’est une solution de référence avec différents dosage , donc selon la concentration voulu de la protéine contrôle, on mettra plus ou moins de volume pour pouvoir ensuite comparer l’es concentrations inconnus
Décrire le dosage biologique Elisa
But: détecter la présence et la quantité d’une protéine
Étapes:
Enzyme peroxdase
1.On fait une gamme étalon avec protéine de référence BSA
2.Analyse par spectrométrie (plus foncé= plus protéine= plus de densité optique )
+rapide
- ne sait pas si protéine est active
-doit faire étalon
Sur support liquide
technique permettant la détection d’une protéine d’intérêt à l’aide d’anticorps sur support liquide (dosage)
Décrire immunohistochimie (ihc) et immunofluorescence (ifc)
But: détecter la localisation d’une protéine spécifique à l’aide d’un ac marqué sur support solide (coupe tissu, culture tissulaire)
Ihc: traceur visible (colorant réaction enzymatique)
Ifc: traceur fluorescent (fluorochrome) DAPI bleu et GFP vert et RHODAMINE rouge
DOIT AMPLIFIER LE SIGNAL
Décrire cytometrie de flux FACS
But:technique qui permet la mesure simultanée de plusieurs caractéristiques physique (trier les cellules selon la taille, forme, marquage ) de
CELLULES EN SUSPENSION
étapes:
Histogramme biparametrique ++ ou monoparametrique +
Tri de cellules exemple lymphocytes b de t
Négatif:lent et faible quantité de cellule qu’on peut étudier
Décrire l’electrophorese bidirectionnel 2D
On réalise l’electrophorese dans un tube étroit de gel polyacrylamide ou un gradient de pH est établi et on soumet à un fort courant électrique, les protéines migrent vers leur phi
Ensuite on sépare selon la taille des protéines (sds page)
Positif: grande quantité étudié
Tri de cellules exemple lymphocytes b de t