7. Proteómica Flashcards

1
Q

Protocolo

A
  1. Definir condições de cultura (controlo vs stress) + preparar cultura de células
  2. Obter extratos proteicos de interesse
  3. Fracionar extratos proteicos /Separar proteínas
  4. Visualizar / detetar proteínas
  5. Quantificar a abundância relativa de cada proteína em cada condição
  6. Identificar as proteínas
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2
Q

Análise proteómica

  1. Obtenção de extratos proteicos
A

Tampão apropriado

Se não
ANÁLISE COMPROMETIDA!!
perda de proteínas e amostra não representativa do proteoma

Deve conter inibidores de proteases!!

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3
Q

Descreve o passo 3 da análise proteómica:

  1. Fracionar extratos proteicos/Separação de proteínas
A

> > 1-D - separação de acordo com o seu PM.
Baixa resolução; feita por comparação com marcadores

> > 2-D - 1º ponto isoelétrico da proteína (IEF), 2º PM (1-D)

Focagem isoelétrica (IEF) - usa um gradiente de pH imobilizado (IPG) para separar as proteínas de acordo com o seu ponto isoelétrico. Geralmente o gradiente utilizado é entre 3 e 7 mas o extremo superior tb pode ser 10
( !! há perda de proteínas com pontos isoelétricos extremos !!)

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4
Q

Proteómica

  1. Visualização/Deteção das proteínas
A

Deteção depende do tipo de marcação de proteínas

  • Radioatividade
  • SPYRO Ruby
  • Nitrato de prata
  • Azul de comassie

Proteómica redox (deteção do perfil de oxidação do proteoma)

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5
Q

Análise proteómica

  1. Análise quantitativa - Comparação de géis

Como se compara a abundância de proteínas?

A

Requer software específico

Descrever normalização

Problema principal

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6
Q

Proteómica

  1. Identificação das proteínas
A

Electroblotting: sequenciação e imunodeteção

Espetrometria de Massa

ETC ETC

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7
Q

Espetrometria de Massa (MS) para identificação de proteínas

A

Técncia MALDI-TOF

  1. Digerir proteínas (tripsina) -> péptidos
  2. Análise por espetrometro -> M péptido
  3. Peptide mass fingerprinting (PMF) - conjunto de péptidos identifica a proteína
  4. ID da proteína

Vantagens:
Permite identificar mods pós tradução

Resultados podem ser ambíguos

Limitações
Proteína integrais da membrana não podem ser identificadas

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8
Q

Limitações das técnicas baseadas 2-D

A
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9
Q

Alternativas a 2D

A

MudPIT
iTRAQ
ICAT
SILAC

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10
Q

MudPIT

A

Multi dimensional Protein Identification Technology
aka
Shotgun proteomics

Mesmo príncipio que separação em gel 2D MAS usando MDLC (cromatografia líquida multidimensional)

  1. Digestão
  2. Separação por MDLC (multidimensional liquid chromatography)
  3. Obtenção do espetro de massa (MS/MS ou MS^2)
  4. Comparar espetro com base de dados
  5. Identificar proteínas a partir dos péptidos

> > 1 amostra

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11
Q

ICAT

A

I sotopoe
C oded
A finnity
T ags

Tag= grupo reaccional (connects to the aminoacid)
+ cadeia intermédia (HEAVY / LIGHT)
+ cauda (biotina permite realizar cromatografia de afinidade)

  1. Amostras marcadas (light tag + heavy tag)
  2. Misturadas + digeridas
  3. Cromatografia de afinidade biotina
  4. MS
  5. MS/MS
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12
Q

iTRAQ

A
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13
Q

SILAC

A

Stable Isotope Labelling w Aminoacids in cell Culture

À cultura de células são fornecidos aa marcados com isótopos

Same as ICAT MAS permite estudar denovo sythesized proteome

Permite comparar 3 amostras

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14
Q

Técnicas baseadas em LC-MS vs 2D

A

Vantagens ^_^
. Mais rápidas
.Permitem identificam e quantificação de proteínas com pontos isoeleétricos extremos de pouca abundânica e hidrofóbicas

Desvantagens T_T
.Mais caras
.Mais complexas

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