VL 9: Biochemie des lichtgetriebenen Energiestoffwechsels Flashcards

1
Q

Lichtgetriebene Energiekonservierung

A
  • Photosynthetische Lichtreaktionen
    • Antennen
    • Reaktionszentren
  • Lichtgetriebene Protonenpumpen
    • Bakteriorhodopsin (irreführender Name, weil in Haloarchaea vorkkommend)
    • Proteorhodopsin
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2
Q

Antennen als Lichtsammler

A
  • Reaktionszentrum
    • Komplexe von integralen Membranproteinen
    • Stattfindungsort der Ladungstrennung
      • nach Lichtsabsorption wird Elektron auf ein negatives Redoxpotential gebracht
  • Pigment
    • versch. Varianten von Antennensystemen, da RZ alleine nicht ausreichend
    • unterschiedl. AS in unterschiedlichen Organismen für efizientes Lichtsammeln
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3
Q

Schematisches Zusammenspiel von Antennensystemen und Reaktionszentren - Cyanobakterien

A
  • Phycobilisomen
    • Proteinkomplexe
    • mol Masse > ganzes Ribosom
    • sitzen auf PS II
      • bestehend aus 2 Kern-UE (D1 und D2)
      • umgebend von zwei intrinsischen Antennenproteinen (CP 43 und CP 57)
        • Chl a und Carotinoid bindend
  • Q und FeS
    • jeweils erster stabiler elektronenakzeptor nach Lichtreaktion eines Photosystems
    • PS II : Q (Chinon/Quinone)
      • fettlösliche Elektronencarrier
      • 2 Carbonylgruppen
      • einzeln nacheeinander reduziert werden können
    • PS I: Fe-S
      • 4Fe-4S Zentrum
      • Cystein-Schwefel
      • 1 der 4 Eisenionen valenzwechsel durchlaufen (+3 –> +2 bzw. +2 –> +3)
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4
Q

Elektronencarrier

A
  • Q und FeS
    • jeweils erster stabiler elektronenakzeptor nach Lichtreaktion eines Photosystems
    • PS II : Q (Chinon/Quinone)
      • fettlösliche Elektronencarrier
      • 2 Carbonylgruppen
      • einzeln nacheeinander reduziert werden können
    • PS I: Fe-S
      • 4Fe-4S Zentrum
      • Cystein-Schwefel
      • 1 der 4 Eisenionen valenzwechsel durchlaufen (+3 –> +2 bzw. +2 –> +3)
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5
Q

Schematisches Zusammenspiel von Antennensystemen und Reaktionszentren (RC) - Prochlorophyten

A
  • Prochlorophyten
    • besondere Gruppe von Cyanobakterien
    • in riesen Konzenrationen in Weltmeeren
    • keine Phycobilisomen sondern Chlorophyllbindende Proteine
      • fungieren als Antennen
      • enthalten Chlb (sonst nur in Chloroplasten)
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6
Q

Antennen und Reaktionszentren Heliobakterien, Purpurbakterien, grüne Schwefelbakterien, Grüne nichtschwefelbakterien

A
  • nur 1 PS in jeweiligen Organismen
    • PS II
      • Heterodimere (dunkel und hellmagenta)
      • Chinon (Q) als Elektronencarrier
    • PS I
      • Homodimere
      • Fe-S-Zentren als Elektronencarrier
  • Chlorosomen
    • Lichtsammel(antennen) Komplexe der Grünen Bakterien
    • Lipidmonoschicht Kompartimente
    • riesege Anzahl v bChl c, d und e eingeschlossen
    • Größe kann variieren
  • Grüne Nichtschwefelbakterien
    • kleine Chlorosomen
    • bis zu 50 000 BChl Moleküle
  • Grüne Schwefelbaktrien
    • große Chlorosomen
      • bis zu 250 000 BChl Moleküle
      • keine direkte Interaktion mit RC
    • BChl a bindenendes Protein (FannerMatthews-Olson) FMO Protein zwischengeschaltet
    • Basalschicht weggelassen
    • Spektrale Eigenschaften der Pigmente in jeweiligen Ketten (?)
      • erlauben Energietransfer von den Pigmenten in AS bis RC
      • BChl c (742nm) ,d,e in Chlorosomen in Rotbereich kurzwelligere Anregungswellenlängen als BChl a in Basalplatte
      • BChl a in Basalplatte (792 nm) kurzwelliger als BChl a in FMO Proteinen
      • BChl a in FMO (805 nm) kurzwelliger als im RC (865 nm)
      • Energiegefälle, sodass thermodynamisch möglich vorgeschaltete Pigmente ihre E an nachgeschaltete Pigmente weiterzugeben
  • Heliobakterien
    • nacktes Homodimeres RC
    • keinerlei Antennensysteme nachgewiesen
  • Purpurbakterien
    • RC durch ringförmig angeordnete Proteinkomplexe umgeben
    • diese PK enthalten BChl a, Bezeichnung LH
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7
Q

Phycobilisomen

A
  • Antennenkomplexe der Cyanobakterien
  • aus 3 Arten von Lichtabsorbierenden Proteinkomplexen
    • Allophycocyanin
      • sitzt direkt auf RC
    • Phycocyanin
      • peripher angeordnet
    • Phycoerythrin
      • peripher angeordnet
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8
Q

Phycoerythrine, Phycocyanine

A
  • offenkettige Tetrapyrrole
  • werden aus Häm gebildet
  • kovalent an Cysteinrest der Proteinkette
  • unterscheiden sich an Reduktionsgrad
  • Spektrale Eigenschaften von Antennen und RC den effizienten Transfer von Lichtenergie
  • Phycoerythrine absorbieren im grünen - gelben Bereich des sichtbaren Spektrums
  • Phycocyanine im langwelligeren Oragnen
  • RC im Roten
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9
Q

Phycobiliproteine und Phycobilisomen, Phycocyanin, Struktur, Anordnung

A
  • (a) Phycocyanin
    • typischer Vertreter der Biline
    • offenettiges Tetrapyrrol
    • biosynthetisch von einem geschlossenen Prrhyrinringsystem durch den Verlust eines Kohlenstoffatoms als Kohlenmonoxis ableitet
    • dargestellte Struktur prosthetische Gruppe von Phycocyanin
    • kommt bei Cyanobakterien und Rotalgen vor
  • (b) Struktur Phycobilisom
    • Phycocyanin absorbiert bei höheren Energien (kürzeren Wellenlängen) als Allophycocyanin
    • Chl a absorbiert bei längerren WL (niedrigeren Energien) als Allophycocyanin
    • Energiefluss
      • Phycocyanin –> Allophycocyanin –> Chlorophyll a von PS II
  • (c) Elektronenmikroskopische Aufnahme Dünnschnitt Cyanobakterium Synechocyis
    • dunkelfarbige, kugelige Phycobilisomen
    • an die lamellaern Membranen angeheftet
      *
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10
Q

Ringförmige Darstellung der Phycobilisomen

A
  • grundlegender Aufbau von Allophycocyanin, Phycocyanin und Phycooerythrin ist gleich
  • alphabeta-Dimere
  • Allophycocyanin
    • 2 Phycocyanobiline pro alpha-beta-Dimere gebunden
  • Phycocyanin
    • 3 Phycocyanobiline pro ab-Dimer
  • Phycoerythrin
    • 5 Erythrobilino pro ab-Dimer
  • 3 ab-Dimere lagern sich zu Trimer an
  • 2 Trimere lageren sich zu Hexamer an
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11
Q

Superkomplexe aus Phycobilisomen/PSI/PSII

A
  • 2 - 5 Doppelhexamere APS Kern
  • in diesem Fall 3 Doppelhexamere
  • Anzahl Doppelhexamere Phycocyanins und Phycoerythrins variiert
    • abhängig von Stickstoffversorgung der Zellen
    • aufgrund der Stickstoffhaltigen AS in Proteinen
    • abhängig der Lichtintensität unter der die Bakterien wachsen
      *
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12
Q

Light-harvesting Komplexe der Purpurbakterien

A
  • unmittelbar RC herum sitzt LH1
  • RC
    • absorbieren bei 870 nm
  • LH1
    • 16 alpha-beta-Dimere
    • pro ab-Dimer 2 Chla Moleküle
    • absorbieren 850 nm
  • peripher LH2
  • LH2
    • alpha-betaDimere
    • versch. Organismen 8-10 fach
    • 3 Chla Moleküle, 1 Carotinoid
    • absorbieren max. bei 800 nm
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13
Q

Zusammenfassung Antennenkomplexe

A
  • Cyanobakterien
    • Phycobilisomen (Phycoerythrine, Phycocyanine
  • Purpurbakterien
    • LH Komplexe 1 und 2
  • Grüne Bakterien
    • Chlorosomen
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14
Q

Reaktionszentren

A
  • Typ I
    • PS 1
    • RC 1
    • Grüne Schwefelbakterien, Heliobakterien
    • Eisen-Schwefel-Zentrum als Elektronenakzeptor
  • Typ II
    • PS II
    • RC II
    • Purpurbakterien, Grüne Nichtschwefelbakterien
    • Chinon als Elektronenakzeptor
  • Merke
    • Das Redox-Potential des reduzierten Fe-S-Akzeptors von Typ I-RC ist deutlich negativer als das des Chinonakzeptors von Typ II-RC
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15
Q

Elektronentransportkette - Cyanobkterien

A
  • nach Lichtreaktion in PS II landet jeweils ein Elektron in stabilen Chinon
  • tauscht mit Chinon aus Chinonpool aus Thylakoidmembran
  • Cytochrom b6f-Komplex oxidiert reduziertes Chinon, reduziert dabei Kupferion in Plastocyanin (PC), Reduktion durch Aufnahme Elektron von Kuper(II) –> Kupfer (II), durch Abgabe Elektron Rückreaktion Oxidation
  • Reoxidation erfolgt am PS-I, Lichtreaktion, Elektron landet im stabilen FeS-Akzeptor
  • Redoxpotential des FeS ist negativ genug um damit Ferredoxin zu reduzieren
  • reduziertes Fd wird von der Ferredoxin NADP Oxidoreduktase als Elektronendonator genutzt um NADP+ zu NADPH zu reduzieren
  • Protonenpotential wird aufgebaut für ATP-Synthase als treibende Kraft
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16
Q

Elektronenfluss bei der oxygenen Photosynthese der Pflanzen (das so genannte Z-Schema)

A
  • Intermediate nach Standardpotentialen angeordnet
  • Standardpotentiale der stabilen Akzeptoren (Qb bei PS II und FeS bei PS I) deutlich voneinander unterscheiden
  • Elektron landet nicht sofort beim stabilen Elektronenakzeptor, sondern weiter Akzeptoren kurzlebig zwischengeschaltet
    • kurzlebig (ps-ns)
    • langlebig (mikros-ms)
  • beim Zyklischen Elektronenfluss wird ATP synthetisiert aber keine Reduktionskraft aufgebaut
    • von Fd zu Cyt bf
17
Q

Elektronenfluss bei der anoxygenen PS von Purpurbakterien

A
  • Typ II RC
  • besitzen nur 1 Typ RC
  • nach Lichtreaktion gelangen Elektronen über Bacteriophyophytin zu stabilen QbAkzeptor in Chinonpool, zu Cyt bc1 Komplex
  • Elektronen fließen über C-Typ Cytochrom zurück in Reaktionszentrum
  • Protonenpotential wird generiert
  • zyklischer Elektronentransfer, der keinen exogenen Elektronendonator benötigt
  • für CO2 Assimilation muss aber Reduktionskraft regeneriert werden
    • rückläufiger Elektronentransport (energie verbrauchend)
18
Q

Struktur des Reaktionszentrums eines phototrophen Purpurbakteriums

A

(a) Anordnung der Pigmentmoleküle

  • Proteinketten weg, nur noch Cofaktoren
  • Zentrum: Special Pair von BChl a (organge), auf die bei Reaktion die gesamte Energie übertragen wird
  • unmittelbar benachbarte akzessorische BChl a Moleküle (gelb)
  • Bacteriopheophytin Moleküle (blau)
  • unten dunkelgelb 2 Chinone

(b) Strukturmodell

  • in Membran eingebettet
  • 2 integrale Membranproteine (M und L)
  • H UE mit RC direkt assoziiert
20
Q

Reaktionszentren - Vergleich

A
  • NADH 320 mV Redoxpotential!!
21
Q

Bacteriorhodopsin Struktur, Bedeutung

A
  • nicht in Bakterien sondern Halophilen Bakterien
  • integrales Mmebranprotein
  • protonenpumpendes Chromoprotein
  • Sekundärstrukturelemente
    • 7 Helikale Bereiche , die Membran drchspannen
    • in 7. Transmaemban Helix ist an Lysinrest Retinal gebunden
  • Retinal
    • all-trans-Retinal
    • Cofaktor
  • Salzkonzentrationen an Sättigungsgrenze
  • Aerobier
  • nutzen Bacteriorhodopsin unter sauerstoffmangel
  • große Mengen an Bakteriorhodopsin in Membran, purpur
    *
22
Q

Lichtreaktion Bakteriorhopsin

A
  • nach Lichtreaktion all-trans-Retinal zu 13-cis-Retinal
  • protonierte Schiffsche Base ihre Position in Protein verändert von Innenseite zur Außenseite wandert
  • Proton wird zunächst aus saure AS übertragen und auf Außenseite freigesetzt
  • Retinalcofaktor geht wieder in Grundzustand über
  • Saure AS wird mit H versorgt
  • geht in all-trans Konfig über
23
Q

Zusammenfassung

A
  • In den verschiedenen Gruppen photosynthetischer Prokaryoten sind Pigmente in der Cytoplasmamembran, in Thylakoiden, intrazellulären membranstapeln oder Vesikeln, oder in Chlorosomen lokalisiert
  • Lichtsammelkomplexe (Antennen) leiten die Lichtenergie zu den Reaktionszentren. Als Antennen dienen Phycobilisomen (Cyanobakterien), “light-harvesting”-omplexe (Purpurbakterien) und Chlorosomen (Grüne Bakterien)
  • Typ I- und Typ II-Reaktionszentren unterscheiden sich u.a. durch das Redoxpotential des stabilen Primäakzeptors. Typ I-Reaktionszentren ermöglicheen diie direkte Reduktion von NADP+. Typ II_reaktionszentren machen rückläufigen Elektronentransport erforderlich
  • Lichtgetriebene Ionenpumpen bilden Protonen-(Bakteriorhodopsin, Proteirhodopsin) oder Chloridgradienten (Halorhodopsin), die der ATP-Synthese bzw. Als Anpassung an Standorte mit hoher Osmolarität dienen