Notions techniques Flashcards
17) Énumérez les différents dispositifs de prélèvements pour sang veineux.
Systèmes classiques :
- seringue + aiguille
- aiguille + tubulure (queue de rat)
Système de prélèvement sous vide :
- aiguille à prélèvements multiples + corps de pompe + tubes sous vide
Unité de prélèvement à ailettes (pour les prélèvements difficiles ; peut s’adapter ou non à une système sous vide).
18) Citez les dispositifs de prélèvement pour sang capillaire.
Utilisation de microlances à usage unique.
Avantages des systèmes actuels :
- sécurité (pas de contact avec le sang)
- incision rapide, nette et standardisée
- Rapidité
Pour la méthode d’Ivy (temps de saignement) : dispositif permettant de faire une incision de 1 mm de profondeur.
19) Énumérez le matériel nécessaire pour un prélèvement de sang veineux.
- tubes nécessaires (en fonction des examens demandés)
- table de préconisation
- matériel de prélèvement (prélèvement classique ou sous vide)
- gants
- garrot
- alcool (ou autre antiseptique local)
- pansements hypoallergiques
- coton hydrophile sec
- portoirs pour tubes
- collecteur pour déchets contaminés
- poubelle avec couvercle et sac intérieur
Vérifier les dates de péremption !
20) Quelle est l’utilité d’avoir à disposition dans la salle de prélèvement une table de préconisation ?
Elle permet de connaître le bon choix de tube (et donc d’anticoagulant) pour l’examen demandé.
21) Quels sont les différents antiseptiques utilisés ?
Alcool à 70° et dérivés :
- alcool camphré
- éthanol
- chlorhexidine (si allergie à l’iode)
Iode :
- alcool iodé à 1%
- teinture d’iode à 2% (effacer la teinture avec de l’alcool à 70° pendant 30 s)
- bétadine
Composés organomercuriels :
- merthiolate de sodium
- merfène
- alcools acétoniques
22) Peut-on utiliser l’éther comme antiseptique ?
NON
L’éther est un détergent (il dégraisse la peau) mais n’a pas d’action antiseptique.
23) Qu’est-ce qu’un matériel à usage unique ?
C’est un matériel destiné à n’être utilisé qu’une seule fois. Ce matériel n’est jamais nettoyé. Il est détruit après usage.
24) Quels sont les inconvénients du prélèvement classique ?
- Aucune sécurité (risque élevé d’exposition au sang)
- Risque de coagulation de l’échantillon
- Risque d’hémolyse
- Risque de résultats erronés à cause d’un non respect du ration sang/anticoagulant
- Risque d’hématome pour le patient
- Lenteur du prélèvement
25) Quels sont les avantages du prélèvement sous vide ?
- Sécurité (système clos)
- Pas de manipulation de tubes ouverts
- Peu de risque d’exposition au sang
- Suppression des facteurs hémolysants
- Risque de formation de microcaillots atténué
- Rapidité du prélèvement
- Vide calibré qui permet un niveau de remplissage respecté
- Retrait du garrot dès le 1er tube (confort du patient)
59) Quels sont les principaux anticoagulants utilisés ?
Héparine :
- anticoagulant naturel présent dans le sang circulant (mais à concentration trop faible pour retarder la coagulation)
- empêche la formation de la thrombine ; réduit l’agglutination des plaquettes
Substances complexant ou chélatant le calcium :
- citrate de sodium
- EDTA
Substances précipitant le calcium :
- oxalates d’ammonium, de lithium, de potassium et de sodium
- fluorure de sodium (faible anticoagulant, souvent associé à l’oxalate de potassium)
60) Quel est le rôle du fluorure de sodium utilisé dans les tubes à glycémie ?
C’est un antiglycolytique : il bloque la glycolyse (transformation de glucose en lactate) qui se produit dans les cellules sanguines.
61) Quel est l’anticoagulant utilisé pour les prélèvement des tests de coagulation ?
Citrate de sodium
62) Pourquoi utiliser le citrate de sodium à 0,109 mol/L dans les prélèvements pour les tests de coagulation ?
La concentration en citrate influence la détermination de l’ISI (indice de sensibilité internationale) des thromboplastines. Les fabricants calibrent les thromboplastines avec les plasmas obtenus à partir de sang prélevés sur citrate de sodium à 0,109 mol/L.
63) Quel est l’anticoagulant à utiliser pour faire un ionogramme ?
Héparine
64) Quel est l’anticoagulant à utiliser pour faire une NFS ?
EDTA
65) Quel est l’anticoagulant à utiliser pour faire une vitesse de sédimentation (VS) ?
Citrate de sodium
66) Quel est l’anticoagulant à utiliser pour faire une ammoniémie ?
EDTA ou héparine
67) Quel est l’anticoagulant à utiliser pour faire des tests enzymatiques ?
Tube sec pour les enzymes sériques
EDTA pour les enzymes des cellules sanguines
26) Quel est l’ordre de passage des tubes à connaître et à respecter au moment du prélèvement ?
- Tube de purge (tube sec sans activateur)
- Tube de citrate de sodium hémostase (si piqûre franche, sinon tube sec)
- Tube sans anticoagulant (avec ou sans gel) ou tube neutre
- Tube avec héparine de lithium
- Tube avec EDTA
- Tube avec fluorure de sodium et oxalate
- Tube avec citrate pr VS
27) Pour quelle raison doit-on impérativement respecter cet ordre de passage des tubes lors du prélèvement ?
- contamination possible du tube “coag” par l’anticoagulant du tube précédent (EDTA ou héparine)
- contamination possible d’un tube à l’autre, avec anticoagulant plus faible par anticoagulant plus fort.
28) Prescription : TP, TG, glycémie, numération globulaire, grpes sanguins, électrolytes plasmatiques, RAI.
Quels tubes utiliser ? Dans quel ordre ?
- TP = citrate de sodium
- TG = tube héparinate de lithium
- glycémie = tube fluorure de sodium - oxalate de potassium
- Numération globulaire = tube EDTA
- grpes sanguins et RAI = tube sec ou tube EDTA
- électrolytes plasmatiques = tube héparine de lithium
Ordre :
1. TP = citrate de sodium
2. grpes sanguins et RAI = tube sec
ou
électrolytes plasmatiques = tube héparine de lithium
3. TG = tube héparinate de lithium
4. grpes sanguins et RAI = tube EDTA
ou
Numération globulaire = tube EDTA
5. glycémie = tube fluorure de sodium - oxalate de potassium
40) Que faites vous pr dissoudre l’anticoagulant dans le sang recueilli ?
- anticoagulant en solution : retournements du tube
- anticoagulant en poudre : dissolution plus difficile. Homogénéisation prolongée de 2 à 3 min (20 retournements) juste après le remplissge
- l’homogénéisation des tubes ne doit pas être brutale sinon il y a hémolyse (rendant les analyses impossibles)
Combien de fois faut-il homogénéiser les tubes ?
Par retournements :
- 4 fois pr les tubes citratés
- 8 à 10 fois pr les tubes EDTA
- 5 à 10 fois pr autres tubes
51) Peut-on faire une formule sanguine sur un étalement effectué à partir d’un prélèvement datant de plusieurs jours ?
Non car altération des leucocytes rendant la formule ininterprétable. L’étalement doit être réalisée le plus tôt possible après le prélèvement et séché immédiatement par agitation de la lame par l’air
52) Pour les examens pouvant se faire soit sur du sérum ou du plasma, qu’est-ce qui oriente le choix ?
- l’urgence : plasma car centrifugation immédiate
- la technique utilisée
55) Prélèvement pour la numération des plaquettes
- tube EDTA. Détruit parfois les plaquettes donc doit-être fait rapidement. Sinon les plaquettes vont baisser. Il faut alors utiliser un tube citraté.
- homogénéisation douce (ne pas faire de mousse)
- rejeter tout prélèvement partiellement coagulé
57) Prélèvement de la glycémie post-prandiale
Toujours associée avec une glycémie à jeun.
Prélevée 2h après le début du repas
58) Quels sont les anticoagulants utilisés lors d’un prélèvement sanguin ?
- Héparine : empêche la formation de la thrombine et réduit l’agglutination des plaquettes pr retarder la coagulation
- Substances complexant ou se liant au calcium :
- citrate de sodium : transformation du calcium en
complexe
- EDTA : anticoagulant qui altère le mois les
cellules - Substances précipitant le calcium : oxalates d’ammonium, de lithium, de potassium et de sodium sont des agents précipitants du calcium sous forme d’oxalate de calcium.
Le fluorure de sodium est un faire anticoagulant svt associé à l’oxalate de potassium
62) Pourquoi faire le choix du citrate de sodium 0,109 M (3.2%) ?
La concentration du citrate influence la détermination de l’ISI (indice de sensibilité internationale) de la thromboplastine.
Une concentration élevée allonge de façon variable, selon les réactifs, les temps de coagulation des patients sous anticoagulants
69) Conduite à tenir devant un plasma (ou sérum) hémolysé.
Le tube hémolysé doit être rejeté et le patient doit être prélevé à nouveau.
- les tests de coagulation sont perturbés
- les dosages biochimiques et enzymatiques peuvent être faussés (excès de la kaliémie, l’uricémie et la sidérémie). Il y a des modifications des dosages enzymatique (transaminases, aldolase…)
- la détection des hémolysines est impossible
- le nbr de GR et d’hémoglobine est diminué
89) Modes de conservation d’un échantillon sanguin pour un dosage biochimique dans le plasma ou le sérum dont l’analyse peut être différée
- tube sans gel de séparation : décantation et conservation à +4°C pdt 24h
- centrifugation et séparation du sérum ou du plasma et congélation à -20°C minimum
- conservation à l’aide de produits chimiques qui empêchent les altérations biochimiques et arrêtent le développement des micro-organismes
90) Quelles est la particularité concernant la conservation des échantillons de sérum pour la rubéole ?
La législation stipule que l’on doit conserver les sérums pdt un délais d’un an pour pouvoir suivre l’évolution du taux d’Ac rubéoleux.
La conservation se fait à -20°C
