Notions générales Flashcards
3) Quels sont les points de ponction autorisés pour un prélèvement sanguin par un technicien de laboratoire ?
Sang veineux :
- Pli du coude
- Dos de la main
- Région malléolaire
Sang capillaire :
- Pulpe des doigts
- Lobe de l’oreille
- Talon du nourrisson
4) Sur quelles parties du sang s’effectuent les différents examens ?
- Sur le sang total (plasma + cellules : globules rouges, globules blancs, plaquettes).
- Sur le plasma (partie liquide du sang recueilli sur anticoagulants).
- Sur le sérum (plasma sans fibrinogène ; partie liquide du sang recueilli sur tube sec).
5) Citez quelques cas permettant ou nécessitant l’emploi de sang capillaire.
Pour certaines techniques :
- Frottis sanguin (cellules intactes et bien réparties ; frottis de meilleure qualité).
- Temps de saignement (méthodes de Duke et Ivy).
- Microméthodes
Pour certains patients :
- Nourrissons et jeunes enfants.
- Patients aux abords veineux difficiles.
En cas d’examens fréquemment répétés.
6) Quels sont les buts des principales analyses sanguines ?
Les analyses de biologie médicale sont les examens biologiques qui concourent au diagnostic, au traitement ou à la prévention des maladies humaines ou qui font apparaître toute autre modification de l’état physiologique.
7) Nature des principaux composants sanguins à étudier.
- Constituants biochimiques (lipides, glucides, protides, éléments minéraux).
- Enzymes
- Hormones
- Cellules sanguines (hématies, leucocytes, plaquettes).
- Facteurs de coagulation
- Anticorps et antigènes
29) Comment faire les prélèvements de sang pour sérodiagnostic de maladie virale ?
- Sang recueilli sur tube sec
- Examen fait sur sérum
- Deux prélèvements réalisés à 15 jours d’intervalle pour s’assurer de la stabilité ou de la montée du titre des anticorps (infection).
30) Comment faire les prélèvements de sang pour sérodiagnostic de maladie bactérienne ?
L’examen est fait sur sérum. Le jeûne n’est pas indispensable.
31) Précautions particulières du recueil du sang en vue d’un dosage de fer sérique ?
- Pas de médication à base de fer avant le prélèvement
- Éviter l’hémolyse
- Prélever sur tube sec
- Examen fait sur sérum
32) Quels sont les systèmes actuels facilitant la séparation du sérum et leurs avantages ?
- Systèmes activant la coagulation
- Systèmes permettant d’éliminer la fibrine résiduelle
- Gel séparateur, qui se place à l’interface entre le culot d’hématies et le sérum lors de la centrifugation
Avantages des tubes avec séparateur :
- diminution du temps de contact hématies-sérum pouvant entraîner une hémolyse partielle
- transfert du sérum facilité, sans apport d’hématies
- possibilité de différer certains examens une fois le tube centrifugé
76) Précautions particulières du recueil du sang en vue d’un dosage de glucose sanguin ?
- Malade strictement à jeun
- Utiliser le fluorure de sodium pour inhiber la glycolyse dans les cellules sanguines
- Bien mélanger
77) Précautions à prendre en vue de la détermination d’acide lactique ?
- Prélever sans garrot
- Utiliser le fluorure de sodium (antiglycolytique donc pas de formation de lactate in vitro)
- Conserver l’échantillon dans la glace pour éviter les mécanismes enzymatiques
78) Précautions à prendre en vue de la détermination des gaz du sang et du pH ?
- Sang prélevé sur sang artériel (artères fémorales et artères poplitées)
- Anticoagulant : héparine
- Délai entre prélèvement et mesure : max 30 min
- Homogénéisation en roulant la seringue entre ses mains
79) Détermination du pH sanguin ?
- Actuellement, toujours couplé à la détermination des gaz du sang
- On utilise une seringue héparinée pour prélèvement en anaérobiose
80) Quelles sont les modalités d’un prélèvement en vue d’une recherche d’hématozoaires ?
Interrogatoire précis du patient (origine, voyages récents…)
Prélèvement de préférence sur sang capillaire :
- lors du pic thermique (frissons)
- avant tout traitement antipaludique
- on réalise un frottis (identification de l’espèce) + une goutte épaisse (recherche du parasite)
81) Nombre de prélèvements nécessaires pour la mise en évidence de l’état immunitaire d’un sujet ?
1 seul prélèvement (détermination du taux résiduel d’anticorps).
82) Prélèvement sanguin en vue du dosage de Cortisol ?
On fait souvent 2 prélèvements veineux : un à 8h et un à 20h. Le taux de cortisol a un rythme nycthéméral (taux max au réveil).
83) Recueil du sang en vue du dosage des lactates ?
Recueil directe du sang sans pose du garrot sur acide perchlorique glacé, ou bien prélèvement sur EDTA puis tube apporté immédiatement au labo dans la glace.
84) Prélèvement en vue d’un dosage d’enzymes érythrocytaires ?
Prélèvement sur EDTA ou héparine. Aucun dosage valable ne peut être fait sur un prélèvement coagulé (même partiellement).
70) Quand, où , comment pratiquer une hémoculture ?
Quand prélever ?
- lors du pic thermique (frissons)
- avant tout traitement antiobiotique
Où prélever ?
- Veine du pli du coude
- Ne pas prélever à partir d’un cathéter veineux
Comment prélever ?
- Règles d’asepsie rigoureuses pour éviter toute contamination du prélèvement
- Désinfection soigneuse et large de la peau du malade à la teinture d’iode (2 applications successives à 2 ou 3 minutes d’intervalle) ou Bétadine
- Désinfection des doigts du préleveur + port de gants
Quel volume prélever ?
- Adulte : 2 flacons de 10 ml
- Enfant : 2 flacons de 0,5 à 5 ml
71) Protocole d’une prise de sang en vue d’une hémoculture avec un dispositif sous vide ?
1) Préparation des flacons :
- Enlever les capuchons et désinfecter l’opercule de caoutchouc
2) Préparation du malade :
- Désinfection rigoureuse de la peau et pose du garrot
3) Prélèvement du sang :
- Port de gants obligatoire pour le préleveur
- Ponctionner la veine avec unité de prélèvement spécial hémocultures
- Quand le sang apparait dans la tubulure, desserrer le garrot
4) Inoculation des flacons :
- Commencer par le flacon aérobie puis faire le flacon anaérobie
- Quand le dispositif de prélèvement est retiré du bras du patient, l’éliminer immédiatement dans un container à déchets contaminés
- Désinfecter les bouchons des flacons
- Replacer les capsules de protection
- Transmettre rapidement au laboratoire
72) Quels sont les renseignements qui doivent accompagner une hémoculture envoyée au laboratoire ?
Les étiquettes des flacons doivent comporter :
- nom et prénom du malade
- sexe
- date de naissance
- date et heure de prélèvement
- température du malade au moment du prélèvement
- traitement éventuel en cours
Une demande d’examen accompagne les flacons et comporte les mêmes indications, avec en plus les renseignements cliniques.
73) Citez quelques précautions à prendre en vue d’un prélèvement sanguin pour étude de l’hémostase.
- Garrot peu serré
- Pose du garrot la plus courte possible ( - 1 min)
- Recueil du sang dans des tubes en plastique ou en verre siliconé (verre = activation plaquettaire)
- Éviter l’hémolyse (hématies riches en ADP et thromboplastine tissulaire)
- Jeûne souhaitable mais non impératif si on évite l’absorption de corps gras (prélèvements lactescents inutilisables)
- Anticoagulant : citrate de sodium à 0,109 mol/L
74) Technique de la mesure du temps de saignement par la méthode de Duke (lobe de l’oreille) ?
- Frotter délicatement le lobe de l’oreille à l’éther
- Faire une incision horizontale de 4 mm avec un vaccinostyle
- Déclencher le chronomètre (ne pas presser)
- Toutes les 30 s, absorber le sang avec un filtre sans toucher la partie incisée
- Noter le temps écoulé entre l’incision et l’arrêt du saignement
75) Technique du temps de saignement par la méthode d’Ivy Nelson ?
- Mettre en place le brassard du sphyngomanomètre, gonflé à 40 mmHg
- Faire une incision dans l’avant-bras (dispositif qui permet de faire une incision calibrée de 5 mm de long et 1 mm de profondeur)
- Absorber le sang toutes les 30 s (sans toucher l’incisions)
- Noter le temps écoulé entre l’incision et l’arrêt du saignement
