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Certificat de prélèvement sanguin > Notions générales > Flashcards

Notions générales Flashcards

1
Q

3) Quels sont les points de ponction autorisés pour un prélèvement sanguin par un technicien de laboratoire ?

A

Sang veineux :

  • Pli du coude
  • Dos de la main
  • Région malléolaire

Sang capillaire :

  • Pulpe des doigts
  • Lobe de l’oreille
  • Talon du nourrisson
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Q

4) Sur quelles parties du sang s’effectuent les différents examens ?

A
  • Sur le sang total (plasma + cellules : globules rouges, globules blancs, plaquettes).
  • Sur le plasma (partie liquide du sang recueilli sur anticoagulants).
  • Sur le sérum (plasma sans fibrinogène ; partie liquide du sang recueilli sur tube sec).
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3
Q

5) Citez quelques cas permettant ou nécessitant l’emploi de sang capillaire.

A

Pour certaines techniques :

  • Frottis sanguin (cellules intactes et bien réparties ; frottis de meilleure qualité).
  • Temps de saignement (méthodes de Duke et Ivy).
  • Microméthodes

Pour certains patients :

  • Nourrissons et jeunes enfants.
  • Patients aux abords veineux difficiles.

En cas d’examens fréquemment répétés.

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4
Q

6) Quels sont les buts des principales analyses sanguines ?

A

Les analyses de biologie médicale sont les examens biologiques qui concourent au diagnostic, au traitement ou à la prévention des maladies humaines ou qui font apparaître toute autre modification de l’état physiologique.

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5
Q

7) Nature des principaux composants sanguins à étudier.

A
  • Constituants biochimiques (lipides, glucides, protides, éléments minéraux).
  • Enzymes
  • Hormones
  • Cellules sanguines (hématies, leucocytes, plaquettes).
  • Facteurs de coagulation
  • Anticorps et antigènes
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6
Q

29) Comment faire les prélèvements de sang pour sérodiagnostic de maladie virale ?

A
  • Sang recueilli sur tube sec
  • Examen fait sur sérum
  • Deux prélèvements réalisés à 15 jours d’intervalle pour s’assurer de la stabilité ou de la montée du titre des anticorps (infection).
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7
Q

30) Comment faire les prélèvements de sang pour sérodiagnostic de maladie bactérienne ?

A

L’examen est fait sur sérum. Le jeûne n’est pas indispensable.

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8
Q

31) Précautions particulières du recueil du sang en vue d’un dosage de fer sérique ?

A
  • Pas de médication à base de fer avant le prélèvement
  • Éviter l’hémolyse
  • Prélever sur tube sec
  • Examen fait sur sérum
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9
Q

32) Quels sont les systèmes actuels facilitant la séparation du sérum et leurs avantages ?

A
  • Systèmes activant la coagulation
  • Systèmes permettant d’éliminer la fibrine résiduelle
  • Gel séparateur, qui se place à l’interface entre le culot d’hématies et le sérum lors de la centrifugation

Avantages des tubes avec séparateur :

  • diminution du temps de contact hématies-sérum pouvant entraîner une hémolyse partielle
  • transfert du sérum facilité, sans apport d’hématies
  • possibilité de différer certains examens une fois le tube centrifugé
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10
Q

76) Précautions particulières du recueil du sang en vue d’un dosage de glucose sanguin ?

A
  • Malade strictement à jeun
  • Utiliser le fluorure de sodium pour inhiber la glycolyse dans les cellules sanguines
  • Bien mélanger
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11
Q

77) Précautions à prendre en vue de la détermination d’acide lactique ?

A
  • Prélever sans garrot
  • Utiliser le fluorure de sodium (antiglycolytique donc pas de formation de lactate in vitro)
  • Conserver l’échantillon dans la glace pour éviter les mécanismes enzymatiques
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12
Q

78) Précautions à prendre en vue de la détermination des gaz du sang et du pH ?

A
  • Sang prélevé sur sang artériel (artères fémorales et artères poplitées)
  • Anticoagulant : héparine
  • Délai entre prélèvement et mesure : max 30 min
  • Homogénéisation en roulant la seringue entre ses mains
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13
Q

79) Détermination du pH sanguin ?

A
  • Actuellement, toujours couplé à la détermination des gaz du sang
  • On utilise une seringue héparinée pour prélèvement en anaérobiose
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14
Q

80) Quelles sont les modalités d’un prélèvement en vue d’une recherche d’hématozoaires ?

A

Interrogatoire précis du patient (origine, voyages récents…)

Prélèvement de préférence sur sang capillaire :

  • lors du pic thermique (frissons)
  • avant tout traitement antipaludique
  • on réalise un frottis (identification de l’espèce) + une goutte épaisse (recherche du parasite)
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15
Q

81) Nombre de prélèvements nécessaires pour la mise en évidence de l’état immunitaire d’un sujet ?

A

1 seul prélèvement (détermination du taux résiduel d’anticorps).

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16
Q

82) Prélèvement sanguin en vue du dosage de Cortisol ?

A

On fait souvent 2 prélèvements veineux : un à 8h et un à 20h. Le taux de cortisol a un rythme nycthéméral (taux max au réveil).

17
Q

83) Recueil du sang en vue du dosage des lactates ?

A

Recueil directe du sang sans pose du garrot sur acide perchlorique glacé, ou bien prélèvement sur EDTA puis tube apporté immédiatement au labo dans la glace.

18
Q

84) Prélèvement en vue d’un dosage d’enzymes érythrocytaires ?

A

Prélèvement sur EDTA ou héparine. Aucun dosage valable ne peut être fait sur un prélèvement coagulé (même partiellement).

19
Q

70) Quand, où , comment pratiquer une hémoculture ?

A

Quand prélever ?

  • lors du pic thermique (frissons)
  • avant tout traitement antiobiotique

Où prélever ?

  • Veine du pli du coude
  • Ne pas prélever à partir d’un cathéter veineux

Comment prélever ?

  • Règles d’asepsie rigoureuses pour éviter toute contamination du prélèvement
  • Désinfection soigneuse et large de la peau du malade à la teinture d’iode (2 applications successives à 2 ou 3 minutes d’intervalle) ou Bétadine
  • Désinfection des doigts du préleveur + port de gants

Quel volume prélever ?

  • Adulte : 2 flacons de 10 ml
  • Enfant : 2 flacons de 0,5 à 5 ml
20
Q

71) Protocole d’une prise de sang en vue d’une hémoculture avec un dispositif sous vide ?

A

1) Préparation des flacons :
- Enlever les capuchons et désinfecter l’opercule de caoutchouc

2) Préparation du malade :
- Désinfection rigoureuse de la peau et pose du garrot

3) Prélèvement du sang :
- Port de gants obligatoire pour le préleveur
- Ponctionner la veine avec unité de prélèvement spécial hémocultures
- Quand le sang apparait dans la tubulure, desserrer le garrot

4) Inoculation des flacons :
- Commencer par le flacon aérobie puis faire le flacon anaérobie
- Quand le dispositif de prélèvement est retiré du bras du patient, l’éliminer immédiatement dans un container à déchets contaminés
- Désinfecter les bouchons des flacons
- Replacer les capsules de protection
- Transmettre rapidement au laboratoire

21
Q

72) Quels sont les renseignements qui doivent accompagner une hémoculture envoyée au laboratoire ?

A

Les étiquettes des flacons doivent comporter :

  • nom et prénom du malade
  • sexe
  • date de naissance
  • date et heure de prélèvement
  • température du malade au moment du prélèvement
  • traitement éventuel en cours

Une demande d’examen accompagne les flacons et comporte les mêmes indications, avec en plus les renseignements cliniques.

22
Q

73) Citez quelques précautions à prendre en vue d’un prélèvement sanguin pour étude de l’hémostase.

A
  • Garrot peu serré
  • Pose du garrot la plus courte possible ( - 1 min)
  • Recueil du sang dans des tubes en plastique ou en verre siliconé (verre = activation plaquettaire)
  • Éviter l’hémolyse (hématies riches en ADP et thromboplastine tissulaire)
  • Jeûne souhaitable mais non impératif si on évite l’absorption de corps gras (prélèvements lactescents inutilisables)
  • Anticoagulant : citrate de sodium à 0,109 mol/L
23
Q

74) Technique de la mesure du temps de saignement par la méthode de Duke (lobe de l’oreille) ?

A
  • Frotter délicatement le lobe de l’oreille à l’éther
  • Faire une incision horizontale de 4 mm avec un vaccinostyle
  • Déclencher le chronomètre (ne pas presser)
  • Toutes les 30 s, absorber le sang avec un filtre sans toucher la partie incisée
  • Noter le temps écoulé entre l’incision et l’arrêt du saignement
24
Q

75) Technique du temps de saignement par la méthode d’Ivy Nelson ?

A
  • Mettre en place le brassard du sphyngomanomètre, gonflé à 40 mmHg
  • Faire une incision dans l’avant-bras (dispositif qui permet de faire une incision calibrée de 5 mm de long et 1 mm de profondeur)
  • Absorber le sang toutes les 30 s (sans toucher l’incisions)
  • Noter le temps écoulé entre l’incision et l’arrêt du saignement
25
Q

33) Comment situez-vous le prélèvement sanguin dans le processus de réalisation d’une analyse de biologie médicale ?

A

Le prélèvement sanguin constitue la 1ère étape de l’analyse

La phase préanalytique conditionne la qualité du résultat final

26
Q

Combien de fois faut-il homogénéiser les tubes ?

A

Par retournements :

  • 4 fois pr les tubes citratés
  • 8 à 10 fois pr les tubes EDTA
  • 5 à 10 fois pr les autres tubes
27
Q

Quels sont les différences entre le plasma et le sérum ?

A

Plasma : Fraction acellulaire du sang. Il est obtenu à partir du sang prélevé sur anticoagulant, centrifugé et séparé du culot globulaire

Sérum : Obtenu à partir du sang prélevé sans anticoagulant (tube sec), centrifugé et séparé du culot globulaire

28
Q

Donner les avantages et les inconvénients du plasma

A

Avantages :

  • constituant naturel du sang
  • séparation rapide de la phase liquide des cellules par centrifugation évitant la diffusion de molécules cellulaires vers le plasma
  • exploration possible de la coagulation en différé (facteurs protéiques de la coagulation non consommés)

Inconvénients :

  • interférences de l’anticoagulant avec certains dosages (EDTA)
  • modification de la fluidité du liquide et de son absorbance
  • précipitation du calcium en oxalate de calcium interférant dans les dosages spectrophotométriques
29
Q

Donner les avantages et les inconvénients du sérum

A

Avantages :

  • meilleures conservation des aliquotes congelés
  • coagulation impossible avec fluidité plus grande dans les tubulures des automates
  • pas d’ajout de molécules d’interférences possible avec les analyses.

Inconvénients :

  • délais d’obtention plus grand
  • difficulté de prélever dans le tube avec un grand risque de contamination érythrocytaire
  • consommation par coagulation de molécules et production de métabolites

Certificat de prélèvement sanguin (6 decks)

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