Medios de cultivo Flashcards

1
Q

Uso general

A
  • Agar Nutritivo

* Agar Sangre

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2
Q

Tracto respiratorio

A
  • Agar sangre - Hemolisis
  • Agar chocolate – Neisseria spp, Haemophylus spp
  • Agar Sal Manitol - estafilococos / S. aureus
  • Lowestein – Jensen - Micobacterias
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3
Q

Tracto digestivo

A
  • Agua Peptonada
  • Mac Conkey
  • EMB (Eosina Azul de Metileno)
  • SS -Salmonella-Shiella
  • TCBS –tiosulfato,citrato,bilis, sacarosa
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4
Q

Antibiograma

A

• Muller-Hinton

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5
Q

AGAR SANGRE

A

Es una combinación de un agar base (agar nutritivo)
con el agregado de 5 % de sangre. Permite el
crecimiento de prácticamente todos los microorganismos que pudieran estar presentes

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6
Q

Hemólisis en Agar Sangre

A

Alfa :Solo destruyen los glóbulos rojos que rodean sus colonias en la parte superficial; coloración verdosa
Beta: lisis total de glóbulos rojos que rodean las colonias
GAMA o No hemolíticas: Crecen en agar sangre sin destruir los glóbulos rojos.

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7
Q

¿ESTREPTOCOCOS O ESTAFILOCOCOS?

A

Ambos crecen en Agar sangre
Para distinguirlos se hace la prueba de la catalasa:
Streptococcus spp. = catalasa (-)
Staphylococcus spp. = catalasa (+)

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8
Q

Pruebas para streptoccocus (Bacitricina)

A
  • Sensibilidad a la bacitracina: En caso de haber hemólisis β se resiembra para obtener un cultivo masivo en BHI de 24 hrs, resembrar en A. Sangre y colocar el disco de bacitracina
    Sensible = Presumiblemente grupo A–>S. pyogenes
    Resistente=Otros estreptococos Beta hemolíticos
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9
Q

Pruebas para streptoccocus (Pyr)

A
  • PYR producción de piroglutamil aminopeptidasa
    Se humedece un disco de PYR comercial y se frota con un palillo cargado con colonias del microorganismo a ensayar
    Se le agrega una gota del reactivo revelador PYR y en 5 min se efectúa la lectura.
    POSITIVO en Streptococcus pyogenes β hemolítico Grupo A
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10
Q

Pruebas para streptoccocus (optiquina y CAMP)

A

En caso de haber hemólisis α Se sigue la misma metodología pero con un disco de optiquina.
• Sensible: Presumiblemente–>S. pneumoniae
• Resistente: Presumiblemente–>Streptococos del grupoViridans

Los estreptococos del grupo B producen una proteína
difusible y termoestable (factor CAMP) que aumenta la
beta-hemólisis de Staphylococcus aureus

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11
Q

AGAR SAL MANITOL

A
  • Medio de aislamiento selectivo de estafilococos
  • La concentración de sal inhibe a la mayoría de las bacterias
  • Rojo fenol como indicador de pH
  • Morfología macroscópica: colonias de 2 a 4 mm, convexas, bordes regulares color variable
  • Buscar crecimiento de Staphylococcus aureus, colonias maniltolasa positivas.
  • Degradación del manitol–>acido–>color amarillo verdoso
  • En caso de crecimiento de Staphylococcus se resiembra en caldo manitol 24 h, para realizar la “Prueba de la coagulasa”
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12
Q

PRUEBA DE LA COAGULASA

A

A 0.5ml de plasma de conejo en un tubo estéril se le agregan 0.5 ml de cultivo liquido puro de 24 hrs.
Se mezcla e incuba a 37o C
Observar cada media hora x 4 hrs y en caso se
ser negativa, revisar nuevamente a las 24 hrs.
•Coagulasa (+): Staphylococcus aureus
•Coagulasa (-): Staphylococcus CN (coagulasa -)

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13
Q

AGAR CHOCOLATE

A

Agar sangre pero con globulos rojos lisados–>
libera hemoglobina, hemina (Factor”X”) y
nicotinamida adenina dinucleotido (Factor “V”)

Se puede identificar Neisseria spp

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14
Q

Agar Thayer-Martin VCN

A

= agar chocolate + Antibioticos
Vancomicina- mata G+
Colistina (polimixina) – mata G- excepto Neisseria
Nistatina – elimina hongos

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15
Q

Prueba de la Citocromo Oxidasa

A

-Presencia de la enzima oxidasa, esta esta presente en todas las especies del género Neisseria
•Colocar un trozo de papel de filtro de 3x3cm en una placa de Petri.
•Agregar 2-3 gotas del reactivo de Kovacs en el
centro del papel.
•Extender con el asa de siembra una colonia
sobre el papel impregnado.
•La reacción de color positiva se produce a los
5-10 segundos.
oxidasa + color violeta
oxidasa - no hay color

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16
Q

LÖWENSTEIN-JENSEN

A

• Sulfato de magnesio.
• Citrato de magnesio.
• Asparragina. Actúa como fuente de nitrógeno.
• Harina de patata.
• Glicerina. Actúa como fuente de carbono.
• Huevos frescos enteros. Proporciona albúmina y lípidos, además al coagular le da solidez al medio.
• Verde de malaquita. Inhibe el crecimiento de otras bacterias
Las colonias de M. tuberculosis empiezan a observarse a las 2-3 semanas de incubación

17
Q

Identificación Enterobacterias

A
  • Forma: La mayoría son bacilos rectos
  • Motilidad: Shigella, Yersinia y Klepsiella NO son móviles
  • Cultivo: Mac Conkey, EMB, SS, TCBS
18
Q

AGAR MC CONKEY

A
  • Medio selectivo y diferencial: cultivo y aislamiento de Gram negativos
  • Bacilos entéricos Gram negativos fermentadores y no fermentadores de la lactosa
  • Cristal violeta y sales biliares: Inhibidores de organismos Gram +
  • Lactosa: La fermentación cambia el pH; lactosa positiva (colonias de color rosa con o sin zona de precipitado alrededor), lactosa negativos (colonias incoloras o de color muy claro)
19
Q

AGAR EMB

A
  • Medio selectivo y diferencial
  • Aislamiento selectivo de bacilos Gram -
  • familia Enterobacteriaceae
  • Lactosa y Sacarosa: proporcionan la fuente de energía
  • Los colorantes actúan como inhibidores e indicadores
  • Eosina y el azul de metileno–>precipitado a pH ácido
  • Salmonella y Shigella: translúcidas, de color ámbar o incoloras
  • Coliformes que utilizan la lactosa y/o sacarosa: colonias de color azul a negro con centros obscuros y brillo metálico
20
Q

AGAR SS - SALMONELLA - SHIGELLA

A
  • Sales biliares y verde brillante: inhibidores de bacilos Gram +,bacilos coliformes y del swarming en Proteus spp
  • Permiten el crecimiento de Salmonella spp.
  • Tiosulfato de sodio y el citrato férrico: detección H2S
  • La lactosa proporciona la fuente de carbohidratos
  • Rojo neutro y verde brillante: indicadores de pH
  • Salmonella: colonias de color rosa a blanco, opacas rodeadas por el rojo brillante del medio
  • Microorganismos fermentadores de lactosa o sacarosa: colonias amarillas- verdes rodeadas de una intensa zona de color amarilla-verdosa
  • Algunas cepas de S. typhi pueden desarrollar dando colonias rojas
21
Q

AGAR TCBS AGARTIOSULFATO CITRATO BILIS SACAROSA

A

Levadura y la peptona: nitrógeno y vitaminas.
Citrato sódico, el tiosulfato sódico, la bilis de buey y el colato: proporcionan un pH alcalino que inhibe Gram+ y suprimir coliformes
Vibrio cholerae es sensible a los entornos ácidos
Azul de bromotimol y el azul de timol son indicadores de pH
Alta concentración de sodio
Vibrio cholerae que es halotolerante y otras especies
de Vibrio spp son halofílicas
Sacarosa: carbohidrato
Tiosulfato sódico: fuente de azufre y actúa con el
citrato férrico como indicador para detectar la producción de ácido sulfhídrico
- Vibrio cholerae y V. alginolyticus: Colonias amarillas (fermentadoras de sacarosa)
- V. parahaemolyticus y V. vulnificus: Colonias azul- verdosas (NO fermentadoras de sacarosa)

22
Q

Prueba bioquímica para enterobacterias

TSI AGAR –HIERRO - TRIPLE AZÚCAR

A
  • Fermentación de Glucosa: Fondo cambia a amarillo
  • Fermentación de Lactosa: Superficie cambia amarillo -Fermentación de ambas (sacarosa): Todo el tubo cambia a amarillo
  • Producción de gas: Burbujas en el medio o se desplaza hacia arriba
  • Producción de acido sulfúrico: Precipitado negro en el fondo del tubo
23
Q

Prueba bioquímica para enterobacterias

LIA -AGAR HIERRO LISINA

A
  1. Ocurre fermentación de la glucosa y el medio se torna
    amarillo
  2. Ocurre la descarboxilación: + color púrpura, - permanece amarillo
  3. desaminación de la lisina: la superficie del medio se
    torna rojo/naranja
    Precipitación de sulfuros: Precipitado negro
24
Q

Prueba bioquímica para enterobacterias

MIO - MOVILIDAD, INDOL, ORNITINA

A

MOVILIDAD
La movilidad de las bacterias depende de la presencia de flagelos. Interpretación: Turbidez del medio fuera del área de inoculación
ORNITINA
Mide la capacidad enzimática para descarboxilar un aminoácido y formar una amina, provocando alcalinidad. + púrpura, - amarillo
INDOL
Se manifiesta cuando se adiciona reactivo de Kovac o reactivo de Ehrlich. + anillo rojo en la superficie, - anillo amarillo en la superficie

25
Q

CITRATO DE SIMONS

A

Determina la capacidad de la bacteria a utilizar el citrato como única fuente de carbono para la obtención de energía:
+ Si el medio se torna azul
- Si permanece sin cambio