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Exotiques 🦜 > Médecine aviaire (5-6) > Flashcards

Médecine aviaire (5-6) Flashcards

1
Q

Comment est-ce qu’on peut identifier un aérosacculite à la radiographie?

A
  1. Un épaississement de la paroi des sacs aériens
  2. Hyperinflation
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Q

Nommer l’anomalie radiographique présente

A

Élargissement de la silhouette cardiohépatique
= Hépatomégalie ici
Attention, il est très difficile de distinguer entre hépatomégalie et dilatation du proventricule. L’utilisation de radiographie de contraste est nécessaire.

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3
Q

Nommer l’anomalie radiographique présente

A

Dilatation du proventricule

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4
Q

Nommer l’anomalie radiographique ici

A

Hyperparathyroïdisme secondaire nutritionnel

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5
Q

Nommer les ddx pour une distention du proventricule (6)

A

1) infection bactérienne, fongique, parasitaire;
2)ganglionévrite aviaire (PDD- bornavirus)
3)corps étranger
4)intoxication aux métaux lourds
5)néoplasie
6)coelomite (femelle)

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6
Q

Nommer les 3 usages possibles pour l’échographie ainsi que les limitations.

A

Usages:
1. Échocardiographie
2. Biopsie hépatique
3. Évaluation d’une masse, organomégalie, effusion

USAGE LIMITÉ CAR: petite taille des patients et la présence des sacs aériens.

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7
Q

Nommer le meilleure outil pour évaluer la motilité du proventricule

A

Fluoroscopie

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8
Q

Quand est-ce qu’on utilise le CT chez les oiseaux?

A

Utile particulièrement pour évaluer le crâne, les sinus sous-orbitaires, les yeux, les systèmes respiratoire et musculosquelettique.

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9
Q

Nommer les 3 buts de la fluidothérapie.

A
  1. Corriger la déshydratation
  2. Remplacer les pertes
  3. Procurer les fluides de maintien (50 ml/kg /jour)
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10
Q

La plupart des oiseaux critiques sont déshydratés entre ___ et ___%.

A

5 à 7%

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11
Q

Quels sont les besoins hydriques des oiseaux?

A

50 mL /kg/j

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12
Q

Comment est-ce qu’on calcule le déficit en fluides d’un patient?

A

Déficit (ml) = % de déshydratation X poids corporel (g)

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13
Q

À quel rythme on corrige les besoins hydriques de notre patient?

A

-La moitié du déficit devrait être remplacé durant les **premières 12 heures. **
-Le reste du déficit devrait être remplacé au cours des 24-48 heures suivantes, tout en administrant les fluides de maintien.

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14
Q

Comment est-ce qu’on administre des fluides à notre patient? (déshydratation mineure vs sévère)

A
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15
Q

Quel est le volume du jabot d’un oiseau? (combien de fluides est-ce qu’on peut donner PO)

A

Le volume du jabot des psittacidés équivaut à environ 3% de leur poids en gramme.

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16
Q

Vrai ou faux: le cathéter IO doit être changer au 48h

A

Non, 72h

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17
Q

Nommer les 2 sites de fluido IO

A
  1. Ulna distal
  2. Tibiotarse proximal
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18
Q

Nommer 2 avantages et deux complications de la fluido IO.

A

Avantages:
1. Mise en place plus rapide que IV (face dorsale de l’aile!)
2. Pas de risque d’hématome
Complications:
1. Ostéomyélite
2. Pénétration des 2 cortex
3. Extravasation

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19
Q

Comment est-ce qu’on donne un support nutritionnel à un oiseau? (4)

A
  1. Déterminer les besoins nutritionnels (Kcal/jour)
  2. Déterminer la concentration énergétique de la préparation utilisée (Kcal/ml)
  3. Calcul du volume à administrer (ml/jour)
  4. Vérifier que le nombre de ml par repas n’excède pas le volume du jabot du patient (approximativement 3% du poids (g) jusqu’à 5% peut être donné si l’oiseau le tolère bien)
    -La fréquence d’administration varie de 2-3 fois par jour selon le cas.
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20
Q

Nommer la formule pour calculer:
1. Taux métabolique de base
2. Besoins énergétiques de maintien (BEM)
3. Besoins énergétiques réels

A
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21
Q

Expliquer comment on fait le gavage du jabot

A

-Outils :
-Aiguille à gavage métallique : communément utilisée
-Cathéter à gavage flexible : doit maintenir le bec ouvert pour éviter que l’oiseau sectionne le cathéter avec son bec selon le cas.
1. Lubrification préalable de l’aiguille ou cathéter indiquée.
2. L’outil de gavage est inséré au niveau de la partie gauche du bec de l’oiseau, puis dirigé vers la droite au niveau de l’œsophage cervical.
3. Avant l’administration de la formulation, il est primordial de s’assurer qu’il y a « 2 tubes » au niveau du cou : la trachée et l’outil de gavage !
4. La cavité orale de l’oiseau devrait être évaluée tout au long de l’administration de la formulation. S’il y a du reflux ou régurgitation, l’oiseau devrait être relâché immédiatement pour qu’il puisse se secouer la tête et ainsi éviter de suffoquer.

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22
Q

Nommer la quantité de fluides qu’on peut administrer par voie SC

A

5 à 10ml/kg/site

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23
Q

Vrai ou faux: les Gram + sont les pathogènes les plus fréquents chez les oiseaux.

A

FAUX! Gram -

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24
Q

Nommer les 2 facteurs pré-anesthésiques à prendre en considération pour les oiseaux. (IMPORTANT)

A
  1. Jeûne:
    Vider le jabot, réduire le volume du TGI
    Si jabot pas vide : risque d’aspiration peut être minimisé en soulevant la tête de l’oiseau de sorte qu’elle est plus haute que le jabot, ou en procédant à une intubation endotrachéale.
  2. Pré-med: avec opioïdes et benzodiazépines
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25
Q

Nommer les 2 techniques d’induction de l’anesthésie des oiseaux.

A
  1. 4 % pour 8 respirations (ou jusqu’à ce que l’oiseau perde conscience) → 2 % (jusqu’à l’intubation) (intérêt lors de dyspnée)
  2. 1% → 0,5 % q 15-30 secondes
    La concentration d’isoflurane est augmentée progressivement de 0,5 % toutes les 15-30 secondes en commençant à 1 %, jusqu’à l’obtention d’un niveau d’anesthésie suffisant pour l’intubation.
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26
Q

Vrai ou faux: on choisit le plus petit tube possible pour le maintien de l’anesthésie.

A

FAUX! Le plus gros tube possible

27
Q

Nommer les deux méthodes de maintien de l’anesthésie

A
  1. Intubation endotrachéale
  2. Cannulation d’un sac aérien (sac aérien thoracique caudal)
28
Q

Quand est-ce qu’on va faire la cannulation d’un sac aérien? (2)

A
  1. Anesthésie pour intervention au niveau de la cavité orale, du système respiratoire supérieur ou de la trachée
  2. Permettre à un oiseau souffrant d’une obstruction des voies respiratoires supérieures de respirer. La canule demeure en place chez l’oiseau éveillé.
29
Q

Nommer les 3 raisons que la ventilation positive intermittente est indispensable.

A

1) Les oiseaux ont une FR plus lente et une augmentation de leur volume tidal comparativement aux mammifères. Par conséquent, de légers changements au niveau de leur respiration ont un plus grand effet sur leur ventilation minute.

2) L’inspiration et l’expiration sont des phénomènes actifs qui reposent sur les muscles intercostaux. La relaxation musculaire engendrée par l’anesthésie diminue leur action et rend les oiseaux plus susceptibles à la dépression respiratoire.

3) L’obstruction des tubes de petite dimension par des sécrétions est courante.

NOTE: 8-25 respirations par minute, pression de 15cm H20

30
Q

Où est-ce qu’on met le doppler chez les oiseaux?

A

Sur l’artère ulnaire

31
Q

Nommer les 5 points importants pour le réveil des oiseaux

A

1) Contrôler la tête et les ailes de l’oiseau.
2) Surveiller étroitement la fréquence respiratoire et cardiaque.
3) Contrôler la présence de sécrétions dans la cavité buccale et surveiller pour tout signe de régurgitation.
4) Surveiller la température corporelle de l’oiseau et le réchauffer graduellement selon le cas.
5) Éviter les changements brusques de positions (hypotension orthostatique).

32
Q

Nommer les 3 causes possibles d’une dyspnée extra-respiratoire

A

1-Diminution de volume des sacs aériens
-Obésité, organomégalie, rétention d’œuf, ascite
2-**Compression trachéale extraluminale **
-Goitre, abcès, granulome, néoplasie
3-Maladie cardiovasculaire
-Cardiopathie, athérosclérose

33
Q

Nommer les deux grandes origines d’une dyspnée

A
  1. Extra-respiratoire
  2. Respiratoire
34
Q

Nommer la principale présentation clinique d’une maladie du système respiratoire supérieur at les 3 principales catégories de ddx.

A

Présentation: écoulement nasal, enflure péri-orbitale, éternuements
DDX:
1. Rhinite (bactéries, fongis, hypovitaminose A, parasites, CÉ, poxvirus, irritants, toxines)
2. Sinusite (bactéries, fongi, hypovitaminose A, CÉ, irritants, toxines)
3. Trachéite (bactéries, parasites, hypovitaminose A, poxvirus, toxines)

35
Q

Nommer la principale présentation clinique d’une maladie du système respiratoire inférieur at les 4 principales catégories de ddx.

A

Présentation clinique: toux, battements de queue, dépression
1. Pneumonie (bactéries, fongis, virus, toxines)
2. Aérosacculite (bactéries, fongi, parasites, virus)
3. Inhalation d’un corps étranger
4. Allergie (aras)

36
Q

Nommer 2 causes d’une dyspnée suraiguë et sévère

A
  1. Aspiration d’un corps étranger
  2. Exposition à une toxine
37
Q

Nommer 4 causes d’une dyspnée aiguë à chronique

A

Pensez aux causes infectieuses:
1. Bactérienne
2. Fongique
3. Parasitaire (passériformes, colombiformes)
4. Virale

38
Q

Nommer l’agent étiologique de la chlamydiose ainsi que la mode de transmission. Quel est la période d’incubation?

A

Étiologie
-Chlamydia psittaci
Transmission
-Ingestion ou inhalation de la bactérie excrétée par un oiseau infecté.
-Un oiseau infecté peut excréter la bactérie dans ses selles, son urine et ses sécrétions respiratoires et oculaires.
-Des porteurs asymptomatiques existent. Ces oiseaux peuvent excréter la bactérie de façon intermittente surtout en situation de stress.
Incubation
-3 jours à plusieurs semaines
Maladie multisystémique, ZOONOSE

39
Q

Nommer les 3 espèces citées comme porteuses asymptomatiques de la chlamydiose.

A

Perruches ondulées, calopsittes élégantes, inséparables

40
Q

Nommer les signes cliniques de la chlamydiose.

A

Facteurs influencent leur sévérité
Aucun signe pathognomonique
◼ Signes cliniques
◼ Généraux
◼ Respiratoires
◼ Oculaires
◼ Digestifs
◼ Urinaires
◼ Neurologiques (RARES)

41
Q

Comment est-ce qu’on fait le dx antemortem de la chlamydiose? (6)

A
  • Anamnèse, examen!
  • Hémato, biochimie
  • Électrophorèse des protéines
  • RX (hépatomégalie, splénomégalie, aérosacculite, pneumonie)
  • PCR = test de diagnostic = fait partie du test des 4P
  • Tests de détection des Ac
    Cytologie et culture peu utilisées maintenant
42
Q

Vrai ou faux: Il est important de noter qu’il n’existe aucun test qui permet de dire hors de tout doute qu’un oiseau n’a pas la chlamydiose

A

VRAI!

43
Q

Nommer 3 cas qui nous donnent un faux-négatif de chlamydiose.

A
  1. Infection récente
  2. Antibiotiques
  3. Anergie
44
Q

Nommer 2 cas qui nous donnent un faux-positif de chlamydiose.

A
  1. Technique
  2. Réaction croisée
45
Q

Comment est-ce qu’on traite la chlamydiose? (3)

A
  1. Doxycycline (45-60 jours en général)
  2. Échecs thérapeutiques possibles:
    –>Retirer les sources de calcium dans la diète durant la période de traitement parce que le calcium peut diminuer l’absorption de la doxycycline.
  3. Effets secondaires (vomissements lorsque donné PO)
46
Q

Comment est-ce qu’on prévient la transmission de la chlamydiose? (4)

A
  1. Quarantaine
  2. Nettoyage (pas d’aspirateur)
  3. Désinfection: très importante durant les 2 premières semaines du traitement parce que l’oiseau peut continuer d’excréter la bactérie.
  4. Oiseaux en contact = tx indiqué
47
Q

Nommer l’étiologie, la tramission et les espèces prédisposées à l’Aspergillose (3)

A

Étiologie: Aspergillus fumigatus (pathogène opportuniste pas contagieux)
Transmission: L’oiseau s’infecte par inhalation de spores (conidie).
Espèces:
1. Gris d’Afrique
2. Amazones
3. Pionus

48
Q

Nommer les 2 lésions présents lors d’aspergillose

A

Pneumonie granulomateuse miliaire et/ou la formation de granulomes au niveau des sacs aériens et/ou de la trachée et/ou du syrinx

49
Q

Quel est la différence entre l’aspergillose et la chlamydiose?

A

Lors d’Aspergillose:
Lésions limitées au système respiratoire et 1 oiseau malade typiquement

50
Q

Comment est-ce qu’on fait le dx de l’aspergillose?

A

Anamnèse, examen!
◼ Hématologie, biochimie (foie et reins sont normaux)
◼ Électrophorèse des protéines
◼ PCR (sang, écouvillon respiratoire)
◼ ÉLISA = peu sensible
◼ Radiographies, CT
◼ Endoscopie, lavage trachéal (cytologie, culture)

NOTE: diagnostic est difficile!!

51
Q

Comment est-ce qu’on traite l’aspergillose?

A

Difficile!! La meilleure option est la thérapie combinée en utilisant un antifongique topique, c’est-à-dire qui entre en contact avec les lésions au niveau du système respiratoire et un antifongique systémique.
NOTE: attention aux Gris d’Afrique avec l’itraconazole! (meurent d’hépatotoxicité)

52
Q

Nommer les 4 signes cliniques associées avec les mites de sacs aériens.

A
  1. Changement/perte de voix
  2. Sifflements, sécrétions
  3. Secoue de la tête
  4. Abattement

Espèces atteints: Pinsons diamant de Gould, canaris

53
Q

Comment est-ce qu’on fait le diagnostic et le traitement des mites de sacs aériens?

A

DX: Signalement, signes cliniques, examen (transillumination), endoscopie
Traitement: Ivermectin PO ou TOPIQUE!!!

54
Q

Expliquer l’intoxication au Teflon.
Étiologie:
Signes cliniques (2):
TX (4):

A

Étiologie: Polytétrafluoroéthylène, poêle laissée sur la cuisinière (202C)
Signes cliniques:
1. Mortalité soudaine
2. Dyspnée aiguë et sévère
TX: PRONOSTIC SOMBRE
1. Oxygène
2. AINS
3. Diurétique
4. ATBs

55
Q

Vrai ou faux: la variole aviaire est commune chez les oiseaux de compagnie sauf les passériformes.

A

FAUX! rare sauf chez passériformes

56
Q

Variole aviaire
Étiologie:
Transmission:
3 formes

A

Étiologie: Poxvirus
Transmission: lésion épithéliale nécessaire (insectes, mites)
3 formes:
CUTANÉ:
-Conjonctivite
-Ulcérations, croûtes et déformations a/n des bordures palpébrales
Forme diphtérique:
-Lésions a/n systèmes digestif et respiratoire supérieurs
-Mortalité élevée lors d’infection secondaire
-Forme septicémique:
-Pneumonie, mortalité élevée
-Rencontrée chez les Passériformes (CANARIS)

57
Q

Comment est-ce qu’on fait le dx de la variole aviaire?

A

-Inclusion intracytoplasmique éosinophilique: Corps de Bollinger

58
Q

Comment est-ce qu’on fait la gestion de la variole aviaire?

A
  1. Biosécurité
  2. Antiparasitaire
  3. Antibiotique
59
Q

Expliquer la présentation clinique de l’hypovitaminose A (3), le dx et les traitements (3)

A

Présentation: nodules/plaques blanches, effacement des papilles choanales, inappétence, dysphagie
DX: cytologie: cellules épithéliales kératinisées sans inflammation
TX:
1. Vitamine A parentérale
2. Corriger la diète
3. Débridement

60
Q

Vrai ou faux: l’hypovitaminose A prédispose aux infections

A

VRAI!

61
Q

Nommer les 2 espèces typiquement atteintes de mites de bec et des pattes

A

Perruches ondulées et canaris

62
Q

Comment est-ce qu’on traite les mites du bec et des pattes?

A

Ivermectin PO ou topique

62
Q

Expliquer l’étiologie, la présentation clinique et le traitement pour les kystes folliculaires.

A

étiologie: génétique
Présentation clinique: canaris prédisposés, masse ferme, jaunâtre résultant de la croissance d’une plume à l’intérieur du follicule lui-même.
-Infection bactérienne secondaire fréquente.
TX: Excision chirurgicale

63
Q

Nommer les 2 comportements associées au mutilation du plumage

A
  1. Plumes normales sur la tête
  2. Plumes anormales où l’oiseau a accès avec son bec

Exotiques 🦜 (8 decks)

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