Maladies et ravageurs Flashcards
1
Q
Plasmopara viticola
A
Mildiou
2
Q
A
Les taches foliaires apparaissant en début d’infection par Plasmopara viticola sont translucides, d’aspect huileux. C’est pourquoi on parle communément de ‘tâches d’huile’. Mildiou de la vigne
3
Q
A
Les tâches foliaires provoquées par Plasmopara viticola sont tout d’abord huileuses à translucides puis jaunissent rapidement, comme c’est le cas sur cette feuille. Mildiou de la vigne
4
Q
A
Les tâches foliaires provoquées par Plasmopara viticola jaunissent puis deviennent nécrotique lorsque la maladie évolue. Mildiou de la vigne
5
Q
A
Sur la face inférieure des feuilles, la présence de Plasmopara viticola se manifeste par l’apparition d’un duvet blanc à l’envers des ‘tâches d’huile’ observables sur la face supérieure. Mildiou de la vigne
6
Q
A
Sporulation généralisée à la face inférieure du limbe. Plasmopara viticola (mildiou)
7
Q
A
Mildiou mosaÏque débutant sur feuille de vigne : de nombreuses et petites lésions chlorotiques, souvent délimitées par les nervures, apparaissent sur le limbe. Plasmopara viticola (Mildiou)
8
Q
A
Détail des premières taches de mildiou mosaïque sur feuille de vigne : les lésions se nécrosent progressivement. Plasmopara viticola (Mildiou)
9
Q
A
Mildiou mosaïque bien évolué. Plasmopara viticola (mildiou)
10
Q
A
Attaque généralisée de mildiou sur feuillage de vigne. De nombreuses feuilles sont plus ou moins entièrement nécrosées et desséchées. Plasmopara viticola
11
Q
A
Le faciès nommé ‘rot gris’ peut également se rencontrer sur vrille. Plasmopara viticola
12
Q
A
Ces inflorescences ont été attaquées par Plasmopara viticola qui commence à fructifier en surface.
13
Q
A
Les fructifications de Plasmopara viticola sur cette grappe sont à l’origine du symptôme ‘rot gris’. (mildiou)
14
Q
A
Aspect du rot gris finissant, voire rot brun débutant sur baies de raisin. Plasmopara viticola (mildiou)
15
Q
A
Les fructifications de Plasmopara viticola sont encore présentes sur ces baies présentant un symptôme de rot brun. (rot gris). (mildiou)
16
Q
A
Détail des fructifications de Plasmopara viticola encore présentes sur cette baies présentant un symptôme de rot brun. (rot gris). (mildiou)
17
Q
A
Aspect du rot brun sur baies de raisin. Plasmopara viticola (mildiou)
18
Q
A
Symptôme de rot brun sur baies de raisin Plasmopara viticola (Mildiou)
19
Q
A
Sur certaines baies, des taches brunes à noirâtres, déprimées ‘en coup de pouce’, peuvent être observées. Quelques unes d’entre-elles sont plus ou moins ratatinées. Plasmopara viticola (Mildiou, « rot brun » )
20
Q
A
Mildiou mosaÏque sur face supérieure de feuille de vigne : de nombreuses et petites lésions chlorotiques, souvent délimitées par les nervures, apparaissent sur le limbe. Plasmopara viticola (Mildiou)
21
Q
A
Mildiou mosaïque sur face inférieure de feuille de vigne : les nombreuses et petites lésions souvent délimitées par les nervuressont recouvertes d’une sporulation blanchâtre. Plasmopara viticola (Mildiou)
22
Q
Sensibilité des baies au mildiou
A
Les baies de raisin sont sensibles au mildiou jusqu’à la véraison. Elles peuvent être atteinte parfois très précocement, après la nouaison, sur des fruits de quelques mm de diamètre issus d’inflorescences déjà attaquées.
23
Q
A
Synoptique du développement du Mildiou sur vigne (Plasmopara viticola)
24
Q
Conservation, sources d’inoculum Mildiou
A
Conversation oospores qui se forment en fin de saison dans les tissus mildiousés : jeunes rameaux, baies, mais plus particulièrement les feuilles atteintes de mildiou « mosaïque »
Au printemps, lorsque les températures deviennent plus clémentes, les oeufs germent en 2 jours, voire en plus d’une semaine en fonction de la température
Un filament germinatif apparaît à l’extrémité duquel se forme une macroconidie piriforme
Par la suite, cette structure donne naissance à plusieurs dizaines de zoospores
Celles-ci assurent les contaminations primaires au printemps
Ajoutons que ces oeufs d’hiver sont capables de se conserver plusieurs années dans les sols viticoles
Des contaminations primaires peuvent avoir lieu tout au long de la période végétative de la vigne.
25
Pénétration et invasion Mildiou
Dispersion des en périodes pluvieuses printanières zoospores donc pollution des organes aériens de la vigne les plus proches du sol
Présentes sur les feuilles et les jeunes rameaux, et en présence d'eau, elles perdent leurs flagelles, et émettent un promycélium qui pénètre notamment le limbe par l'intermédiaire des stomates
Par la suite, de nombreux hyphes mycéliens se développent entre les cellules et forment des suçoirs (ou haustoria) qui lui permettent de s'alimenter aux dépends de la vigne (phase d'invasion)
Les premiers symptômes se manifestent une dizaine de jours après les contaminations, ce qui correspond à la période d'incubation.
Les contaminations secondaires sont aussi assurées par des zoospores, mais issues cette fois-ci de sporanges
La durée d'incubation de la contamination secondaire pourra être plus courte, et ne durer que 4 à 5 jours en conditions particulièrement favorables.
Rappelons que les oospores se développeront dans les tissus des feuilles malades en fin de saison et assureront la conservation du champignon pendant l'hiver.
26
Conditions favorables au développement du Mildiou
* conditions climatiques humides
* les périodes pluvieuses
* les hygrométries élevées
* La température (25°C avec une plage d'activité entre 11 et 30°C)
* notamment présents sur les ceps trop vigoureux
27
Biologie du champignon associé au Mildiou
28
Erysiphe necator
Oïdium ou "blanc de la vigne"
29
Erysiphe necator est très difficilement détectable en début d'attaque. Quelques rares taches visibles à la face inférieure des feuilles traduisent le parasitisme de ce champignon.
30
Erysiphe necator est maintenant bien installé sur la face supérieure de cette feuille : de nombreuses taches poudreuses blanches, éparses, parsèment le limbe.
31
Le mycélium d'Erysiphe necator couvre maintenant tout le limbe de cette feuille qui a tendance à se déformer.
32
Cette feuille oïdiée est plutôt enroulée ; on note la présence du mycélium d'Erysiphe necator à la face inférieure du limbe.
33
L'oïdium est facilement reconnaissable sur feuille de vigne. Celle-ci est presque entièrement poudreuse et fortement déformée. Erysiphe necator
34
Ce jeune rameau rabougri est plus ou moins couvert par de l'oïdium, ses feuilles ont pris une teinte gris sale, et sont crispées. Erysiphe necator
35
Sur ce rameau le mycélium d'Erysiphe necator est encore présent sur les lésions nécrotiques engendrées par ce champignon parasite obligatoire. (oïdium)
36
Lésions brunâtres sur rameau pas encore aoutés. Erysiphe necator (oïdium)
37
Lésions brunâtres sur rameau encore vert. Erysiphe necator (oïdium)
38
Lésions brunâtres sur rameau aouté. Erysiphe necator (oïdium)
39
De nombreuses baies de cette grappe sont affectées par l'oïdium de la vigne : Erysiphe necator . On est plutôt en début d'attaque sur baies de raisin.
40
Un duvet blanchâtre et plus ou moins poudreux recouvre progressivement cette baie de raisin. Erysphe necator (oïdium)
41
Ces baies de raisin sont plus ou mois recouvertes par le duvet blanchâtre et poudreux produit par Erysphe necator. (oïdium)
42
De nombreuses baies de cette grappe sont affectées par l'oïdium de la vigne : Erysiphe necator . On est plutôt en fin d'attaque sur baies de raisin, la pellicule de celles-ci est superficiellement nécrosée.
43
Les zones de ces baies de raisin vertes, colonisées par le duvet blanchâtre, d' Erysphe necator, se nécrosent progressivement et prennent une teinte brune à noirâtre. (oïdium)
44
Les baies de cette grappe sont entièrement couvertes par l'oïdium. Certaines d'entre-elles ont éclaté . Erysiphe necator
45
Conservation et sources d'inoculum d’Oïdium
Conservation sous 2 formes différents
1. mycélium dormant se maintenant dans les bourgeons
2.cléistothèces : structures issues de sa reproduction sexuée se formant à la surface des organes herbacés en fin de saison.
Ces cléistothèces passent l'hiver sur les feuilles tombées au sol, sur les rameaux, mais surtout dans les anfractuosités des écorces des ceps.
46
Synoptique du développement de l'oïdium sur vigne
47
Pénétration et invasion Oïdium
1. Mycélium dormant:
présent dans les bourgeons, se réactivant dès que la température devient plus clémente.
Par la suite, il se propage à la surface des organes, et émet des hyphes spécialisés qui pénètrent dans les cellules épidermiques après avoir percé la cuticule et la paroi des cellules végétales.
2. Ascospores issues de cléistothèces matures et déhiscents
Celles-ci germent une fois présentes sur un organe et initient des contaminations primaires.
Par la suite, plusieurs filaments mycéliens ramifiés se développent ainsi que des haustoria à intervalles réguliers, ce qui permet au champignon de coloniser superficiellement les tissus et de vivre à leurs dépends.
48
Facteurs influençant le développement du champignon Oïdium
•nécessite pas d'eau liquide pour germer et se développer
•requiert une hygrométrie élevée et une faible luminosité
(C'est pourquoi, il affectionne les vignes vigoureuses dans lesquelles la lumière pénètre moins bien)
•températures entre 4°C et 35-40°C, avec un optimum de l'ordre de 20 à 25°C
•Germination s'initie en 1 à 2 heures, voire plusieurs heures en fonction des conditions climatiques. La vitesse de germination augmente avec la température dans un intervalle de 15 à 27°C.
•Les premières sporulations sur feuille apparaissent sous 5 jours à 22°C, et cessent après 35 jours.
•Les humidités relatives élevées sont favorables au développement
•Des vents importants (3m/s) sont nécessaires pour assurer la dispersion des spores.
49
Protection anti-oïdium
Emploi du soufre mouillable ou en poudre. Attention, même en absence de pluie la rémanence du soufre n'excède pas 10 jours.
50
Tache nécrotique rougeâtre se développant à la périphérie d'une feuille de vigne. Botrytis cinerea (pourriture grise)
51
De caractéristiques motifs concentriques et festonnés sont plus ou moins visibles sur ces deux taches positionnées à la périphérie de cette feuille de vigne. Botrytis cinerea (pourriture grise)
52
La partie distale de cette inflorescence colonisée par Botrytis cinerea a pourri et s'est desséchée. Certaines fleurs nécrosées sont tombées.
53
Le pédoncule de cette grappe est entièrement ceinturé par une pourriture occasionnée par Botrytis cinerea
54
Plusieurs baies de cette grappe verte sont plus ou moins pourries et ratatinées à la suite d'une attaque de Botrytis cinerea
55
Plusieurs baies localisées dans la partie centrale de cette grappe montrent une pourriture humide et radiale s'initiant à partir d'une minuscule lésion. Cette dernière, qui a donné lieu à l'appellation 'piqûre' dans la région de Moissac, est provoquée par Botrytis cinerea
56
Sur la baie de droite, Botrytis cinerea sporule abondamment sur les tissus mis à l'air au niveau d'une fissure de la pellicule.
57
Sur cépage blanc, les baies atteintes par Botrytis cinerea brunissent et prennent une teinte plus ou moins beige à violacée ; une moisissure grise s'étend à leur surface. (pourriture grise)
58
Détail de la pourriture grise sur dur baies de cépage blanc. Botrytis cinerea
59
Sur cépage noir, Botrytis cinerea entraine une pourriture des baies de couleur brun-rougeâtre à violacésombre. A cela s'ajoute la présence d'une moisissure grise caractéristique à la surface de celles-ci. Botrytis cinerea (pourriture grise)
60
Détail de la pourriture grise sur dur baies de cépage noir. Botrytis cinerea
61
Détail de la pourriture grise sur dur baies de cépage noir. Botrytis cinerea
62
Plusieurs conidiophores arborescents de Botrytis cinerea portent de nombreuses conidies hyalines aisément disséminées par le vent.
63
Plusieurs conidiophores arborescents de Botrytis cinerea portent de nombreuses conidies hyalines aisément disséminées par le vent.
64
Synoptique du développement de la pourriture grise sur vigne (Botrytis cinerea)
65
Représentation schématique d'une feuille de vigne d'un cépage rouge présentant une carence en magnésium (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Présence d'une décoloration rouge internervaire partant du bord du limbe.
66
Carence en magnésium sur merlot
67
Représentation schématique d'une feuille de vigne d'un cépage blanc présentant une carence en magnésium (à gauche feuille carencée, à droite feuille saine). Présence d'un décoloration jaune internervaire partant du bord du limbe.
68
Carence en magnésium (désordre alimentaire)
69
Représentation schématique d'une feuille de vigne présentant une carence en azote (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Décoloration jaune orangé de l'ensemble de la feuille.
70
Représentation schématique d'une feuille de vigne présentant une carence en potassium (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Présence de lésions brunes internervaires.
71
Carence en potassium. Désordre nutritionnel
72
Représentation schématique d'une feuille de vigne présentant une carence en Phosphore (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Le limbe est plus foncé et les nervures ont tendance à devenir violacées.
73
Représentation schématique d'une feuille de vigne présentant une carence en manganèse (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Présence de chloroses internervaires.
74
Calepitrimerus vitis
Acariose
75
Déformation de la feuille due à l'arrêt de croissance du tissu causé par les piqûres de Calepitrimerus vitis(Acariose). Présence de tâches claires en mosaïque sur le limbe.
76
Présence de tâches claires en mosaïque, de couleur jaune, dues aux nombreuses piqûres de Calepitrimerus vitis. (acariose)
77
Rameau possédant des entre noeuds très courts liés à la présence de Calepitrimerus vitis. Ce symptôme n'est pas sans rappeler celui du court noué. (acariose)
78
On distingue difficilement plusieurs acariens jaunâtres, en forme de cornet à frites, sur le limbe de cette feuille de vigne. Calepitrimerus vitis (acariose)
79
Adulte Calepitrimerus vitis (Acariose) caractérisé par une forme conique, un long abdomen annelé et la présence de 2 paires de pattes situées au niveau de la partie antérieure.
80
Adulte Calepitrimerus vitis (Acariose) caractérisé par une forme conique, un abdomen allongé et annelé ainsi que 2 paires de pattes à l'avant de l'animal.
81
Colomerus vitis
Erinose
82
Attaque de Colomerus vitis sur les jeunes feuilles de l'apex d'un rameau de vigne. (érinose)
83
Attaque de Colomerus vitis sur les jeunes feuilles de l'apex d'un rameau de vigne. Les galles foliaires sont plus nombreuses et étendues. (érinose)
84
Les galles provoquées par Colomerus vitis se sont généralisées progressivement à de nombreuses feuilles. (Erinose)
85
Symptôme d'érinose sur feuilles de vigne en fin de cycle végétatif. Les poils hypertrophiés prennent une teinte rougeâtre à marron. Colomerus vitis
86
Détail à la loupe binoculaire de l'hypertrophie des poils à la face inférieure de la feuille causée par les piqures de l'acarien Colomerus vitis (Erinose)
87
Détails des poils hypertrophiés dans une galle d'érinose en fin de cycle végétatif de la vigne. Colomerus vitis
88
Attaque d'érinose sur inflorescence de vigne. Colomerus vitis
89
Détail des poils hypertrophiés dans une galle d'érinose sur inflorescence de vigne. Colomerus vitis
90
Guignardia bidwellii
Black rot
91
Drosophila spp.
Pourriture acide
92
Drosophila (Sophophora)
Pourriture acide
93
Drosophila spp.
| Pourriture acide
94
Foyer de pourriture acide s'installant au sur une grappe de cépage blanc.
95
Baie de raisin de cépage noir commençant à se ratatiner à cause de la pourriture acide. Sur la baie de droite, la trace d'un écoulement de jus peut être observé.
96
En présence de symptômes de pourriture acide, les drosophiles ne sont jamais très loin ! Ce sont des insectes vecteurs des agents pathogènes en cause qu'ils dispersent sur de longues distances.
97
Drosophila sp. : mouche du vinaigre sur une feuille de vigne.
98
Une drosophile attirée par une baie affectée par la pourriture acide
99
Aspect d'une drosophile posée sur une baie de raisin. Drosophila sp. (pourriture acide)
100
Adultes mâle (à gauche) et femelle (à droite) de Drosophila suzukii (bioagresseur émergent) à ne pas confondre avec ceux des autres drosophiles associées à la pourriture acide.
101
La pupe des drosophiles se reconnait par la présence de deux stigmates pointus à l'extrémité antérieure. Drosophila sp.
102
Cycle biologique, dynamique des populations du Drosophila spp.
•6 à 8 générations annuelles
•cycle complet de l'oeuf à l'adulte est assez rapide (de l'ordre de 10 à 20 jours)
•présence est observée au printemps et en été (plus importante lors de la maturation des divers fruits qui les attirent)
•les adultes (figure 1) sont attirés par les odeurs volatiles dégagées par les baies
•odeurs sont dégagées suite aux blessures parasitaires ou accidentelles des raisins. •suintements servent de nourriture aux drosophiles qui
•apportent sur leur corps et rejettent lors de leur nutrition divers micro-organismes dont ceux associés à la pourriture acide
•Les femelles pondent alors leurs oeufs fécondés sur les baies.
•Les larves en éclosent rapidement, au bout de 24h
•se nourrissent alors du mélange complexe levures-bactéries et milieu en fermentation
•Trois stades larvaires se succèdent dans les baies jusqu'à la nymphose (formation d'une pupe)
sur place puis apparition des adultes
•L'alimentation des larves favorise la dilacération des tissus des baies
•Leurs fèces, contenant les micro-organismes, vont amplifier le développement de l'acidité volatile, attirant de nouveaux adultes.
103
Scaphoideus titanus
Flavescence dorée
104
Flavescence dorée
105
Cep de vigne présentant des symptômes de Flavescence dorée
106
Insecte vecteur de la flavescence dorée
Scaphoideus titanus
107
Aspects des stades larvaires L1 à L3 de Scaphoideus titanus
108
Aspect du stade larvaire L4 de Scaphoideus titanus
109
Aspect du stade larvaire L5 de Scaphoideus titanus
110
Aspect d'un stade adulte de Scaphoideus titanus
111
Exuvie de la cicadelle Scaphoideus titanus, observée à la face inférieure de la feuille de vigne.
112
Larve de stade L1 de Phlogottetis cyclops à ne pas confondre avec celle de Scaphoideus titanus.
113
Cycle biologique de S. titanus
•œufs passent l'hiver en diapause dans l'écorce de vigne
•premières larves éclosent dès le début de mai
•adultes apparaissent à partir de mi-juillet
•fécondation des femelles et ensuite la ponte des œufs se réalisent pendant le mois d'août et septembre
114
Cochenilles
115
Nourriture des Cochenilles
la sève élaborée de leur plante-hôte
116
Anthocyanisation du limbe et enroulement des feuilles d'un pied de vigne (cépage rouge) atteint par l'enroulement. Grapevine leafroll-associated virus (GLRaV)
117
Anthocyanisation généralisée du limbe et enroulement d'une feuille d'un pied de vigne (cépage rouge) atteint par l'enroulement. Grapevine leafroll-associated virus (GLRaV)
118
Cochenille lécanine (coccidae) à coque dure et dont la ponte n'est pas contenue dans un ovisac.
119
Femelle de Parthenolecanium persicae, le bouclier est moins arrondi que celui de P. corni.
Cochenilles
120
Cochenille
Parthenolecanium corni femelle adulte. L'insecte est protégé par une coque de forme bien arrondie.
121
Larve de Parthenolecanium sp., à ce stade la cochenille est mobile.
122
Neopulvinaria innumerabilis se reconnait à son ovisac cotonneux.
123
Heliococcus bohemicus cochenille farineuse de la vigne ou cochenille bohémienne appartient à la famille des Pseudococcidae. Noter les longs filaments cireux.
124
Phenacoccus aceris, cochenille du pommier (apple mealybug) qui appartient à la famille des Pseudococcidae est une espèce polyphage que l'on trouve sur vigne.Le corps est recouvert d'une cire pulvérulente.
125
Planococcus sp., le corps de la femelle est rosé et couvert d'une pulvérulence blanche. P. citri et P. ficus peuvent être observées sur vigne dans le bassin méditerranéen.
Cochenille
126
Reproduction cochenilles
Sexuée
127
Ericydnus sipylus hyménoptère Encyrtidae (forme microptère), pond dans les larves de cochenilles farineuses (Pseudococcidae)
auxiliaire parasitoïde!
128
Cryptolaemus montrouzieri est une coccinelle prédatrice des cochenilles du vignoble.
129
Exochomus quadripustulatus adulte, la larve est une prédatrice des oeufs de cochenilles ainsi que des femelles en cours de maturation
130
Empoasca vitis
Cicadelle verte
131
Cicadelle verte
132
Adulte de la cicadelle Empoasca vitis, responsable de la grillure de la vigne. Petite cicadelle verte
133
Stade larvaire de Empoasca vitis observé à la face inférieure d'une feuille de vigne. (cicadelle verte)
134
Stade larvaire d' Empoasca vitis. (cicadelle verte)
135
Stade larvaire avancé d'Empoasca vitis de couleur vert possédant des ébauches d'ailes développées.
136
Stade larvaire d'un phénotype particulier de Empoasca vitis dont la couleur est rosâtre. (cicadelle verte)
137
Stade larvaire de Zygina rhamni à ne pas confondre avec celui d'Empoasca vitis.
138
Zygina rhamni ne doit pas être confondue avec Empoasca vitis dont elle diffère par ses très grandes antennes. Cicadelle italienne
139
Synoptique de développement de Empoasca vitis sur vigne (cicadelle verte)
140
Byctiscus betulae
Cigarier
141
Cigarier
142
Adultes de cigarier. Byctiscus betulae
143
Adulte de cigarier. Byctiscus betulae
144
Détail d'un oeuf formé par Byctiscus betulae. (cigarier)
145
Larve de Byctiscus betulae. (cigarier)
146
Un oeuf de Byctiscus betulae est visible au coeur d'un cigare.(cigarier)
147
Synoptique de développement de Byctiscus betulae sur vigne. (cigarier)
148
Eupoecilia ambiguella
Cochylis
149
Cochylis
150
Attaque de chenille de cochylis sur boutons floraux, noter les soies qui réunissent entre-eux les fleurs de la grappe.
151
Dégâts secondaires sur baies mûres dus aux morsures des chenilles de 2ème génération, avec développement de pourritures dues à Botrytis cinerea à gauche et Aspergillus carbonarius à droite de la photo.
152
Glomérule contenant une chenille de cochylis
153
Eupoecilia ambiguella : oeufs âgés de 3-4 jours. L'œuf de Cochylis présente une ponctuation orange caractéristique.
154
Oeuf de cochylis 3 jours après la ponte (milieu artificiel) avec ses taches oranges caractéristiques.
155
La chenille d'Eupoecilia ambiguella est caractérisée par une tête brun à noire. Le corps est orné de protubérance plus foncées que le corps.
156
Dessin de la tête d'une larve d'après Marchal 1912. Cela permet d'estimer le stade larvaire d'après la mesure de la largeur de la capsule céphalique.
157
Chrysalides de Cochylis en bas, plus courte, plus orange et plus gonflée que celle d'Eudémis en haut. Les couleurs et tailles peuvent varier selon l'alimentation de la chenille
158
Eupoecilia ambiguella : la Cochylis (à droite) se distingue facilement de l'Eudémis (à gauche) par la présence d'un chevron brun sur les ailes.
159
Représentation schématique des dégâts de Cochylis en fonction des stades phénologiques
160
Méthodes de protection vis-à-vis d'Eupoecilia ambiguella
Piéger les adultes avec des pièges sexuels
Mettre en place la confusion sexuelle si possible
161
Drosophila suzukii
drosophile japonaise
162
Traces de pontes de Drososphila suzukii sur une baie de raisin. Les oeufs sont déposés sous la pellicule, les filaments visibles étant les tubes respiratoires des oeufs.
163
Effondrement de la baie de raisin (cépage Merlot) suite au développement des larves de Drosophila suzukii dans la pulpe.
164
Adultes mâle (à gauche) et femelle (à droite) de Drosophila suzukii (bioagresseur émergent) à ne pas confondre avec ceux des autres drosophiles associées à la pourriture acide.
165
Critères de détermination de Drosophila suzukii : a) bandes rayés sur l'abdomen, b) ovipositeur muni de dentes noires, c) ailes tachetées chez le mâle, d) poils sur les tarses chez le mâle.
166
Larve de Drosophila suzukii, normalement de couleur crème, colorée ici par la pulpe du fruit contaminé.
167
La pupe de Drosophila suzukii est caractérisée par les stigmates en ailettes.
168
Méthodes de protection vis à vis Drosophile japonaise
mise en place d’un piégeage de masse des adultes
169
Lobesia botrana
Eudemis
170
Lobesia botrana
| Eudemis
171
Cycle annuel de l'Eudemis de la vigne tel qu'on l'observe en général en Aquitaine. Les mois sont indiqués par leur numéro. a) suivant la latitude du vignoble des chenilles peuvent passer l'hiver sans diapause si une alimentation est disponible, b) Eudémis peut réaliser 4 cycles au Sud de la France
172
Perforations des baies avant véraison, des indices qui révèlent la présence de chenilles d'Eudémis.
173
Perforations des baies avant véraison, des indices qui révèlent la présence de chenilles d'Eudémis.
174
Dégâts occasionnés sur grappe de chasselas à maturité : Lobesia botrana
175
Dégâts d'Eudémis sur baie de raisin noir à maturité. Les blessures de ponte favorisent l'installation de champignons parasites secondaires (Botrytis, Aspergillus).
176
Dégâts et nuisibilité d’Eudémis
* attaque principalement aux organes fructifères
| * facilitent le développement de microorganismes sur la grappe
177
Lobesia botrana adulte sur inflorescence de vigne
Eudemis
178
Lobesia botrana : adulte Eudemis
179
Chrysalides de Cochylis en bas, plus courte, plus orange et plus gonflée que celle d'Eudémis en haut. Les couleurs et tailles peuvent varier selon l'alimentation de la chenille
180
Cycle eudemis
Hiver: Chrysalides (Puppen)
| Printemps-Été: Adultes- Œufs- Chenillés
181
Combien des cycles reproducteurs/ générations de Eudemis par an
2-4
182
Protection eudemis
1. Mettre en place confusion sexuelle
| 2. prendre en comte présence et développement de parasitoïdes naturels
183
Eulia ou petite tordeuse
184
Argyrotaenia ljungiana
Eulia ou petite tordeuse
185
Eulia ou petite tordeuse
Les ailes antérieures de la petite tordeuse de la grappe sont de couleur ocre clair et présentent une large bande transversale brune ferrugineuse et une petite tache brune sur l'angle antérieur de l'aile
186
Dans cette vue ventrale du papillon, on peut voir les ailes postérieures qui sont ornées d'une frange blanchâtre. Petite tordeuse de la grappe
187
Combien des générations d’Eulia par an
3 (Même cycle que Eudemis)
188
Daktulosphaira vitifoliae
Phylloxera
189
Phylloxera
190
Les jeunes feuilles de ce rameau de vigne sont couvertes de galles rougeâtres de Phylloxera sur une vigne américaine. Daktulosphaira vitifoliae
191
Les galles rougeâtres de phylloxéra sont surtout visibles à la inférieure du limbe des feuilles de vigne. Daktulosphaira vitifoliae
192
Forte attaque de Phylloxera gallicole sur une vigne américaine. Présence de galles rougeâtres sur la face inférieure de la feuille. Daktulosphaira vitifoliae
193
Lors de fortes attaques de Phylloxera, des lésions localisées, chlorotiques et plus ou moins nécrotiques sont visibles à la face supérieure du limbe. Daktulosphaira vitifoliae
194
Présence de nombreuses galles sur la partie inférieure de feuilles de vigne de cépage américain attaqué par Viteus vitifoliae. Leur nombre entraine une déformation caractéristique du limbe. (phylloxéra)
195
Présence d'une nodosité Phylloxérique sur racine de vigne. Daktulosphaira vitifoliae
196
Sur cette nodosité on observe plusieurs larves de Daktulosphaira vitifoliae (phylloxera)
197
Oeufs à proximité de larves de la deuxième génération radicicole. Daktulosphaira vitifoliae (phylloxéra)
198
Détail des oeufs présents dans une galle de phylloxéra. Daktulosphaira vitifoliae
199
Détail d'une larve de Daktulosphaira vitifoliae dans une galle en cours de formation. (phylloxera)
200
Femelle de Daktulosphaira vitifoliae et ses oeufs dans une galle de phylloxera.
201
Ostiole d'une galle située à la face supérieure du limbe par laquelle sortiront les jeunes larves de Daktulosphaira vitifoliae (phylloxera)
202
Plusieurs larves de deuxième génération radicicole observées sur racines. Daktulosphaira vitifoliae (phylloxéra)
203
Adulte ailé de Daktulosphaira vitifoliae. (phylloxéra)
204
Sparganothis pilleriana
Pyrale
205
Pyrale
206
L'adulte de Sparganothis pilleriana est facilement reconnaisable par rapport aux autres tordeuses de la vigne car il est plus gros. Au repos, ses ailes sont disposées en triangle.
Pyrale
207
Eotetranychus carpini
Acarien jaune
208
Acarien jaune
209
Des lésions rougeâtres sont présentes le long de quelques nervures de cette feuille de vigne. Eotetranychus carpini (Acarien jaune des charmilles)
210
Détail des lésions occasionnées sur la face supérieure du limbe par Eotetranychus carpini. (Acarien jaune des charmilles)
211
Les nombreuses piqûres réalisées par Eotetranychus carpini sur le limbe entrainent localement, le long des nervures, son jaunissement puis son rougissement. (Acarien jaune des charmilles)
212
Détail des lésions occasionnées sur la face inférieure du limbe par Eotetranychus carpini. (Acarien jaune des charmilles)
213
Oeuf d'Eotetranychus carpini. (Acarien jaune des charmilles)
214
Larve d'Eotetranychus carpini cheminant sous le limbe d'une feuille de vigne. (Acarien jaune des charmilles)
215
Femelle et larve d'Eotetranychus carpini sur feuille de vigne. Petit acarien jaune de la vigne, acarien jaune des charmilles
216
Femelles hivernantes de l'acarien Eotetranychus carpini, uniformément jaune citron en sortie d'hiver
217
Synoptique du développement de Eotetranychus carpini sur vigne
218
Panonychus ulmi
Acarien rouge
219
Acarien rouge
220
Acarien rouge
221
Femelle adulte dePanonychus ulmi vue de dessus. On distingue des rangées de poils blancs caractéristiques avec leurs tubercules basals
222
Larve de Panonychus ulmi vue de dessous. (araignée rouge)
223
Hivernation Acarien Jaune
Femelles fécondées
224
Hivernation Acarien Rouge
Œufs
225
Grapevine fan leaf virus (GFLV)
Court noué
226
Divers désordres vasculaires, aux symptômes plus ou moins évolués, visibles sous l'écorce d'un cep affecté par l'esca
227
Détail d'un désordre vasculaire superficiel du bois, notez la coloration jaune orangée et les filets plus sombres. esca
228
De nombreuses lésions nécrotiques brunes sont visibles sur ce cep sectionné longitudinalement, ainsi que des stries et des ponctuations brunes à noires. Notons une large altération du bois située au niveau d'une plaie de taille. (esca)
229
Calcul Rendement (kg/ha)
Rendement (kg/ha) = nombre de souches x nombres de grappe par souche x poids moyen d’une grappe / surface de la parcelle
230
Taille Guyot simple
231
Taille en Guyot simple
232
233
Taille en cordon
1 ou 2 bras horizontaux ayant chacun 3 ou 4 coursons à 2 yeux
234
La taille en gobelet
3 à 5 bras (branche) principales terminés par un courson de 3 ou 4 (Bourgeons ou aussi appelé yeux).
235
Symptômes de carence en bore
236
Étapes de formation de la taille courte de la vigne en Guyot simple
237
Cycle de Mildiou
Hiver: oospores
Primavera: zoospores -infection primaire
-inoculation secondaire
Été: -cycles secondaire
Automne: Cycles secondaires - chute de feuilles
238
Oligo Éléments
```
Fer
Bor
Manganèse
Zinc
Cuivre
Molybdène
```
239
Macro Éléments
```
Hydrogène
Carbone
Oxygène
Azote
Potassium
Calcium
Magnésium
Phosphore
Soufre
```
240
Fonction Fer
* Formation de la chlorophylle
| * Constitution de enzymes et acides aminés
241
Fonction Bore
* croissance des tissus
* formations des fruits
* absorption de l’eau
242
Fonction manganèse
* activation enzymes
* formation de la chlorophylle et des protéines
* accélère la maturation
243
Fonction Zinc
•synthèse des protéines, et enzymes et hormones de croissance
244
Fonction Cuivre
* activateur enzymatique
* synthèse de lignine
* rôle essentiel dans la photosynthèse
245
Fonction Molybdène
•assimilation de l’azoté Et des bactéries fixatrices d’azote
246
Biologie de l’Acariose
Hiver: femelles (uniquement) hivernent sous les écorces à la base du sarment ou sous les écailles des bourgeons inférieurs
Débourrement: femelles piquent les bourgeons et pontes
Période végétative : à partir de 8/12 feuilles migrations adultes sur la face inférieure des jeunes feuilles
Véraison: migration des femelles vers la base des sarments
247
Cycle biologique Acarien Jaune
•Femelles hivernantes fécondées de couleur jaune vif (avec deux taches pour Tetranychus urticae).
•Localisées sous les écorces des bois lors de l’hivernation.
•Les femelles actives sont légèrement allongées jaunes claires avec
petits points noirs sur le côté.
•4 à 6 générations d’été avec des œufs lisses ronds et incolores.
•Cet acarien n’est observé que sur la face inférieure des feuilles à
partir du printemps.
248
Cycle biologique Acarien Rouge
* Ponte à partir du mois d'août et fécondation à l'automne, œufs capables de supporter des températures très négatives (diapause).
* Hivernation des « œufs d'hiver » rouges vifs, déposés sur la base des sarments autour des bourgeons ou sur le vieux bois du cep.
* Éclosion sur la période de débourrement de la vigne dès 15°C de température moyenne.
•Après éclosion, l'acarien passe par 7
stades successifs en 2 phases : une
phase larvaire avec 3 stades mobiles nymphaux, intercalés par 3 stades immobiles de mue dits chrysalides, puis une phase adulte.
* Larves colonisent les jeunes pousses et arrivent à l’état adulte en 5 à 20 jours suivant la température. Les adultes et les larves, présents sur les deux faces de la feuille piquent le matériel végétal pour s’alimenter.
* Femelles pondent des « œufs d'été » (plus petits et plus clairs) sur les feuilles, durant 15 jours environ.
* Dans l’année 4 à 8 générations peuvent se succéder.
249
Biologie de la cicadelle verte
* Femelles fécondées passent l’ hiver sur des conifères ou du lierre
* Arrivé aux alentours du mois d’avril, elle se déplace vers la vigne, où elles pondent des œufs sur la face inférieure des jeunes feuilles (15 à 20 œufs par feuilles), au niveau des nervures et du pétiole
* Une fois éclos les larves de couleur vert clair sortent et se nourrissent de la sève en piquant les feuilles ce qui provoquera une décoloration de la feuille.
250
Vecteur du Grapevine fanleaf virus (court noué)
Nématodes
251
Vecteur d’enroulement de la vigne (Grapevine Leafroll Virus)
Cochenilles
252
Symptômes Carences FOLIAIRES
* RACINES: ↓ Xce
* BOIS: ∆ Matu , Xce, Aoutement
* BAIES: ∆ Rdt & Matu ; coulure ; millerandage ; texture
* Anomalies de coloration des feuilles
* Anomalies de croissance et de forme des feuilles
* Nécroses et dessèchements foliaires
253
Travail du sol novembre-décembre
Buttage
254
Travail du sol février/mars
Décopactage
Préparation plantation
Déchaussage
255
Travail du sol Avril
Enfouissement d’herbe
256
Travail du sol mai/juin/juillet
Binages
| Désherbages
257
Travail du sol septembre / octobre
Décopactage
| Préparation semis
