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UE 2 Et 3 > Maladies et ravageurs > Flashcards

Maladies et ravageurs Flashcards

1
Q

Plasmopara viticola

A

Mildiou

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2
Q
A

Les taches foliaires apparaissant en début d’infection par Plasmopara viticola sont translucides, d’aspect huileux. C’est pourquoi on parle communément de ‘tâches d’huile’. Mildiou de la vigne

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3
Q
A

Les tâches foliaires provoquées par Plasmopara viticola sont tout d’abord huileuses à translucides puis jaunissent rapidement, comme c’est le cas sur cette feuille. Mildiou de la vigne

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4
Q
A

Les tâches foliaires provoquées par Plasmopara viticola jaunissent puis deviennent nécrotique lorsque la maladie évolue. Mildiou de la vigne

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5
Q
A

Sur la face inférieure des feuilles, la présence de Plasmopara viticola se manifeste par l’apparition d’un duvet blanc à l’envers des ‘tâches d’huile’ observables sur la face supérieure. Mildiou de la vigne

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6
Q
A

Sporulation généralisée à la face inférieure du limbe. Plasmopara viticola (mildiou)

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7
Q
A

Mildiou mosaÏque débutant sur feuille de vigne : de nombreuses et petites lésions chlorotiques, souvent délimitées par les nervures, apparaissent sur le limbe. Plasmopara viticola (Mildiou)

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8
Q
A

Détail des premières taches de mildiou mosaïque sur feuille de vigne : les lésions se nécrosent progressivement. Plasmopara viticola (Mildiou)

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9
Q
A

Mildiou mosaïque bien évolué. Plasmopara viticola (mildiou)

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10
Q
A

Attaque généralisée de mildiou sur feuillage de vigne. De nombreuses feuilles sont plus ou moins entièrement nécrosées et desséchées. Plasmopara viticola

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11
Q
A

Le faciès nommé ‘rot gris’ peut également se rencontrer sur vrille. Plasmopara viticola

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12
Q
A

Ces inflorescences ont été attaquées par Plasmopara viticola qui commence à fructifier en surface.

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13
Q
A

Les fructifications de Plasmopara viticola sur cette grappe sont à l’origine du symptôme ‘rot gris’. (mildiou)

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14
Q
A

Aspect du rot gris finissant, voire rot brun débutant sur baies de raisin. Plasmopara viticola (mildiou)

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15
Q
A

Les fructifications de Plasmopara viticola sont encore présentes sur ces baies présentant un symptôme de rot brun. (rot gris). (mildiou)

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16
Q
A

Détail des fructifications de Plasmopara viticola encore présentes sur cette baies présentant un symptôme de rot brun. (rot gris). (mildiou)

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17
Q
A

Aspect du rot brun sur baies de raisin. Plasmopara viticola (mildiou)

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18
Q
A

Symptôme de rot brun sur baies de raisin Plasmopara viticola (Mildiou)

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19
Q
A

Sur certaines baies, des taches brunes à noirâtres, déprimées ‘en coup de pouce’, peuvent être observées. Quelques unes d’entre-elles sont plus ou moins ratatinées. Plasmopara viticola (Mildiou, « rot brun » )

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20
Q
A

Mildiou mosaÏque sur face supérieure de feuille de vigne : de nombreuses et petites lésions chlorotiques, souvent délimitées par les nervures, apparaissent sur le limbe. Plasmopara viticola (Mildiou)

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21
Q
A

Mildiou mosaïque sur face inférieure de feuille de vigne : les nombreuses et petites lésions souvent délimitées par les nervuressont recouvertes d’une sporulation blanchâtre. Plasmopara viticola (Mildiou)

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22
Q

Sensibilité des baies au mildiou

A

Les baies de raisin sont sensibles au mildiou jusqu’à la véraison. Elles peuvent être atteinte parfois très précocement, après la nouaison, sur des fruits de quelques mm de diamètre issus d’inflorescences déjà attaquées.

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23
Q
A

Synoptique du développement du Mildiou sur vigne (Plasmopara viticola)

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24
Q

Conservation, sources d’inoculum Mildiou

A

Conversation oospores qui se forment en fin de saison dans les tissus mildiousés : jeunes rameaux, baies, mais plus particulièrement les feuilles atteintes de mildiou « mosaïque »

Au printemps, lorsque les températures deviennent plus clémentes, les oeufs germent en 2 jours, voire en plus d’une semaine en fonction de la température

Un filament germinatif apparaît à l’extrémité duquel se forme une macroconidie piriforme

Par la suite, cette structure donne naissance à plusieurs dizaines de zoospores

Celles-ci assurent les contaminations primaires au printemps

Ajoutons que ces oeufs d’hiver sont capables de se conserver plusieurs années dans les sols viticoles

Des contaminations primaires peuvent avoir lieu tout au long de la période végétative de la vigne.

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25
Q

Pénétration et invasion Mildiou

A

Dispersion des en périodes pluvieuses printanières zoospores donc pollution des organes aériens de la vigne les plus proches du sol

Présentes sur les feuilles et les jeunes rameaux, et en présence d’eau, elles perdent leurs flagelles, et émettent un promycélium qui pénètre notamment le limbe par l’intermédiaire des stomates

Par la suite, de nombreux hyphes mycéliens se développent entre les cellules et forment des suçoirs (ou haustoria) qui lui permettent de s’alimenter aux dépends de la vigne (phase d’invasion)

Les premiers symptômes se manifestent une dizaine de jours après les contaminations, ce qui correspond à la période d’incubation.

Les contaminations secondaires sont aussi assurées par des zoospores, mais issues cette fois-ci de sporanges

La durée d’incubation de la contamination secondaire pourra être plus courte, et ne durer que 4 à 5 jours en conditions particulièrement favorables.

Rappelons que les oospores se développeront dans les tissus des feuilles malades en fin de saison et assureront la conservation du champignon pendant l’hiver.

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26
Q

Conditions favorables au développement du Mildiou

A
  • conditions climatiques humides
  • les périodes pluvieuses
  • les hygrométries élevées
  • La température (25°C avec une plage d’activité entre 11 et 30°C)
  • notamment présents sur les ceps trop vigoureux
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27
Q
A

Biologie du champignon associé au Mildiou

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28
Q

Erysiphe necator

A

Oïdium ou “blanc de la vigne”

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29
Q
A

Erysiphe necator est très difficilement détectable en début d’attaque. Quelques rares taches visibles à la face inférieure des feuilles traduisent le parasitisme de ce champignon.

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30
Q
A

Erysiphe necator est maintenant bien installé sur la face supérieure de cette feuille : de nombreuses taches poudreuses blanches, éparses, parsèment le limbe.

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31
Q
A

Le mycélium d’Erysiphe necator couvre maintenant tout le limbe de cette feuille qui a tendance à se déformer.

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32
Q
A

Cette feuille oïdiée est plutôt enroulée ; on note la présence du mycélium d’Erysiphe necator à la face inférieure du limbe.

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33
Q
A

L’oïdium est facilement reconnaissable sur feuille de vigne. Celle-ci est presque entièrement poudreuse et fortement déformée. Erysiphe necator

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34
Q
A

Ce jeune rameau rabougri est plus ou moins couvert par de l’oïdium, ses feuilles ont pris une teinte gris sale, et sont crispées. Erysiphe necator

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35
Q
A

Sur ce rameau le mycélium d’Erysiphe necator est encore présent sur les lésions nécrotiques engendrées par ce champignon parasite obligatoire. (oïdium)

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36
Q
A

Lésions brunâtres sur rameau pas encore aoutés. Erysiphe necator (oïdium)

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37
Q
A

Lésions brunâtres sur rameau encore vert. Erysiphe necator (oïdium)

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38
Q
A

Lésions brunâtres sur rameau aouté. Erysiphe necator (oïdium)

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39
Q
A

De nombreuses baies de cette grappe sont affectées par l’oïdium de la vigne : Erysiphe necator . On est plutôt en début d’attaque sur baies de raisin.

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40
Q
A

Un duvet blanchâtre et plus ou moins poudreux recouvre progressivement cette baie de raisin. Erysphe necator (oïdium)

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41
Q
A

Ces baies de raisin sont plus ou mois recouvertes par le duvet blanchâtre et poudreux produit par Erysphe necator. (oïdium)

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42
Q
A

De nombreuses baies de cette grappe sont affectées par l’oïdium de la vigne : Erysiphe necator . On est plutôt en fin d’attaque sur baies de raisin, la pellicule de celles-ci est superficiellement nécrosée.

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43
Q
A

Les zones de ces baies de raisin vertes, colonisées par le duvet blanchâtre, d’ Erysphe necator, se nécrosent progressivement et prennent une teinte brune à noirâtre. (oïdium)

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44
Q
A

Les baies de cette grappe sont entièrement couvertes par l’oïdium. Certaines d’entre-elles ont éclaté . Erysiphe necator

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45
Q

Conservation et sources d’inoculum d’Oïdium

A

Conservation sous 2 formes différents

  1. mycélium dormant se maintenant dans les bourgeons

2.cléistothèces : structures issues de sa reproduction sexuée se formant à la surface des organes herbacés en fin de saison.
Ces cléistothèces passent l’hiver sur les feuilles tombées au sol, sur les rameaux, mais surtout dans les anfractuosités des écorces des ceps.

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46
Q
A

Synoptique du développement de l’oïdium sur vigne

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47
Q

Pénétration et invasion Oïdium

A
  1. Mycélium dormant:
    présent dans les bourgeons, se réactivant dès que la température devient plus clémente.
    Par la suite, il se propage à la surface des organes, et émet des hyphes spécialisés qui pénètrent dans les cellules épidermiques après avoir percé la cuticule et la paroi des cellules végétales.
  2. Ascospores issues de cléistothèces matures et déhiscents
    Celles-ci germent une fois présentes sur un organe et initient des contaminations primaires.
    Par la suite, plusieurs filaments mycéliens ramifiés se développent ainsi que des haustoria à intervalles réguliers, ce qui permet au champignon de coloniser superficiellement les tissus et de vivre à leurs dépends.
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48
Q

Facteurs influençant le développement du champignon Oïdium

A

•nécessite pas d’eau liquide pour germer et se développer
•requiert une hygrométrie élevée et une faible luminosité
(C’est pourquoi, il affectionne les vignes vigoureuses dans lesquelles la lumière pénètre moins bien)
•températures entre 4°C et 35-40°C, avec un optimum de l’ordre de 20 à 25°C
•Germination s’initie en 1 à 2 heures, voire plusieurs heures en fonction des conditions climatiques. La vitesse de germination augmente avec la température dans un intervalle de 15 à 27°C.
•Les premières sporulations sur feuille apparaissent sous 5 jours à 22°C, et cessent après 35 jours.
•Les humidités relatives élevées sont favorables au développement
•Des vents importants (3m/s) sont nécessaires pour assurer la dispersion des spores.

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49
Q

Protection anti-oïdium

A

Emploi du soufre mouillable ou en poudre. Attention, même en absence de pluie la rémanence du soufre n’excède pas 10 jours.

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50
Q
A

Tache nécrotique rougeâtre se développant à la périphérie d’une feuille de vigne. Botrytis cinerea (pourriture grise)

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51
Q
A

De caractéristiques motifs concentriques et festonnés sont plus ou moins visibles sur ces deux taches positionnées à la périphérie de cette feuille de vigne. Botrytis cinerea (pourriture grise)

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52
Q
A

La partie distale de cette inflorescence colonisée par Botrytis cinerea a pourri et s’est desséchée. Certaines fleurs nécrosées sont tombées.

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53
Q
A

Le pédoncule de cette grappe est entièrement ceinturé par une pourriture occasionnée par Botrytis cinerea

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54
Q
A

Plusieurs baies de cette grappe verte sont plus ou moins pourries et ratatinées à la suite d’une attaque de Botrytis cinerea

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55
Q
A

Plusieurs baies localisées dans la partie centrale de cette grappe montrent une pourriture humide et radiale s’initiant à partir d’une minuscule lésion. Cette dernière, qui a donné lieu à l’appellation ‘piqûre’ dans la région de Moissac, est provoquée par Botrytis cinerea

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56
Q
A

Sur la baie de droite, Botrytis cinerea sporule abondamment sur les tissus mis à l’air au niveau d’une fissure de la pellicule.

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57
Q
A

Sur cépage blanc, les baies atteintes par Botrytis cinerea brunissent et prennent une teinte plus ou moins beige à violacée ; une moisissure grise s’étend à leur surface. (pourriture grise)

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58
Q
A

Détail de la pourriture grise sur dur baies de cépage blanc. Botrytis cinerea

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59
Q
A

Sur cépage noir, Botrytis cinerea entraine une pourriture des baies de couleur brun-rougeâtre à violacésombre. A cela s’ajoute la présence d’une moisissure grise caractéristique à la surface de celles-ci. Botrytis cinerea (pourriture grise)

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60
Q
A

Détail de la pourriture grise sur dur baies de cépage noir. Botrytis cinerea

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61
Q
A

Détail de la pourriture grise sur dur baies de cépage noir. Botrytis cinerea

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62
Q
A

Plusieurs conidiophores arborescents de Botrytis cinerea portent de nombreuses conidies hyalines aisément disséminées par le vent.

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63
Q
A

Plusieurs conidiophores arborescents de Botrytis cinerea portent de nombreuses conidies hyalines aisément disséminées par le vent.

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64
Q
A

Synoptique du développement de la pourriture grise sur vigne (Botrytis cinerea)

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65
Q
A

Représentation schématique d’une feuille de vigne d’un cépage rouge présentant une carence en magnésium (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Présence d’une décoloration rouge internervaire partant du bord du limbe.

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66
Q
A

Carence en magnésium sur merlot

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67
Q
A

Représentation schématique d’une feuille de vigne d’un cépage blanc présentant une carence en magnésium (à gauche feuille carencée, à droite feuille saine). Présence d’un décoloration jaune internervaire partant du bord du limbe.

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68
Q
A

Carence en magnésium (désordre alimentaire)

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69
Q
A

Représentation schématique d’une feuille de vigne présentant une carence en azote (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Décoloration jaune orangé de l’ensemble de la feuille.

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70
Q
A

Représentation schématique d’une feuille de vigne présentant une carence en potassium (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Présence de lésions brunes internervaires.

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71
Q
A

Carence en potassium. Désordre nutritionnel

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72
Q
A

Représentation schématique d’une feuille de vigne présentant une carence en Phosphore (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Le limbe est plus foncé et les nervures ont tendance à devenir violacées.

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73
Q
A

Représentation schématique d’une feuille de vigne présentant une carence en manganèse (à gauche feuille carencée à droite feuille saine). Présence de chloroses internervaires.

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74
Q

Calepitrimerus vitis

A

Acariose

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75
Q
A

Déformation de la feuille due à l’arrêt de croissance du tissu causé par les piqûres de Calepitrimerus vitis(Acariose). Présence de tâches claires en mosaïque sur le limbe.

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76
Q
A

Présence de tâches claires en mosaïque, de couleur jaune, dues aux nombreuses piqûres de Calepitrimerus vitis. (acariose)

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77
Q
A

Rameau possédant des entre noeuds très courts liés à la présence de Calepitrimerus vitis. Ce symptôme n’est pas sans rappeler celui du court noué. (acariose)

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78
Q
A

On distingue difficilement plusieurs acariens jaunâtres, en forme de cornet à frites, sur le limbe de cette feuille de vigne. Calepitrimerus vitis (acariose)

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79
Q
A

Adulte Calepitrimerus vitis (Acariose) caractérisé par une forme conique, un long abdomen annelé et la présence de 2 paires de pattes situées au niveau de la partie antérieure.

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80
Q
A

Adulte Calepitrimerus vitis (Acariose) caractérisé par une forme conique, un abdomen allongé et annelé ainsi que 2 paires de pattes à l’avant de l’animal.

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81
Q

Colomerus vitis

A

Erinose

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82
Q
A

Attaque de Colomerus vitis sur les jeunes feuilles de l’apex d’un rameau de vigne. (érinose)

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83
Q
A

Attaque de Colomerus vitis sur les jeunes feuilles de l’apex d’un rameau de vigne. Les galles foliaires sont plus nombreuses et étendues. (érinose)

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84
Q
A

Les galles provoquées par Colomerus vitis se sont généralisées progressivement à de nombreuses feuilles. (Erinose)

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85
Q
A

Symptôme d’érinose sur feuilles de vigne en fin de cycle végétatif. Les poils hypertrophiés prennent une teinte rougeâtre à marron. Colomerus vitis

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86
Q
A

Détail à la loupe binoculaire de l’hypertrophie des poils à la face inférieure de la feuille causée par les piqures de l’acarien Colomerus vitis (Erinose)

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87
Q
A

Détails des poils hypertrophiés dans une galle d’érinose en fin de cycle végétatif de la vigne. Colomerus vitis

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88
Q
A

Attaque d’érinose sur inflorescence de vigne. Colomerus vitis

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89
Q
A

Détail des poils hypertrophiés dans une galle d’érinose sur inflorescence de vigne. Colomerus vitis

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90
Q

Guignardia bidwellii

A

Black rot

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91
Q

Drosophila spp.

A

Pourriture acide

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92
Q

Drosophila (Sophophora)

A

Pourriture acide

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93
Q
A

Drosophila spp.

Pourriture acide

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94
Q
A

Foyer de pourriture acide s’installant au sur une grappe de cépage blanc.

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95
Q
A

Baie de raisin de cépage noir commençant à se ratatiner à cause de la pourriture acide. Sur la baie de droite, la trace d’un écoulement de jus peut être observé.

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96
Q
A

En présence de symptômes de pourriture acide, les drosophiles ne sont jamais très loin ! Ce sont des insectes vecteurs des agents pathogènes en cause qu’ils dispersent sur de longues distances.

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97
Q
A

Drosophila sp. : mouche du vinaigre sur une feuille de vigne.

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98
Q
A

Une drosophile attirée par une baie affectée par la pourriture acide

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99
Q
A

Aspect d’une drosophile posée sur une baie de raisin. Drosophila sp. (pourriture acide)

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100
Q
A

Adultes mâle (à gauche) et femelle (à droite) de Drosophila suzukii (bioagresseur émergent) à ne pas confondre avec ceux des autres drosophiles associées à la pourriture acide.

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101
Q
A

La pupe des drosophiles se reconnait par la présence de deux stigmates pointus à l’extrémité antérieure. Drosophila sp.

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102
Q

Cycle biologique, dynamique des populations du Drosophila spp.

A

•6 à 8 générations annuelles
•cycle complet de l’oeuf à l’adulte est assez rapide (de l’ordre de 10 à 20 jours)
•présence est observée au printemps et en été (plus importante lors de la maturation des divers fruits qui les attirent)
•les adultes (figure 1) sont attirés par les odeurs volatiles dégagées par les baies
•odeurs sont dégagées suite aux blessures parasitaires ou accidentelles des raisins. •suintements servent de nourriture aux drosophiles qui
•apportent sur leur corps et rejettent lors de leur nutrition divers micro-organismes dont ceux associés à la pourriture acide
•Les femelles pondent alors leurs oeufs fécondés sur les baies.
•Les larves en éclosent rapidement, au bout de 24h
•se nourrissent alors du mélange complexe levures-bactéries et milieu en fermentation
•Trois stades larvaires se succèdent dans les baies jusqu’à la nymphose (formation d’une pupe)
sur place puis apparition des adultes
•L’alimentation des larves favorise la dilacération des tissus des baies
•Leurs fèces, contenant les micro-organismes, vont amplifier le développement de l’acidité volatile, attirant de nouveaux adultes.

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103
Q

Scaphoideus titanus

A

Flavescence dorée

104
Q
A

Flavescence dorée

105
Q
A

Cep de vigne présentant des symptômes de Flavescence dorée

106
Q

Insecte vecteur de la flavescence dorée

A

Scaphoideus titanus

107
Q
A

Aspects des stades larvaires L1 à L3 de Scaphoideus titanus

108
Q
A

Aspect du stade larvaire L4 de Scaphoideus titanus

109
Q
A

Aspect du stade larvaire L5 de Scaphoideus titanus

110
Q
A

Aspect d’un stade adulte de Scaphoideus titanus

111
Q
A

Exuvie de la cicadelle Scaphoideus titanus, observée à la face inférieure de la feuille de vigne.

112
Q
A

Larve de stade L1 de Phlogottetis cyclops à ne pas confondre avec celle de Scaphoideus titanus.

113
Q
A

Cycle biologique de S. titanus
•œufs passent l’hiver en diapause dans l’écorce de vigne
•premières larves éclosent dès le début de mai
•adultes apparaissent à partir de mi-juillet
•fécondation des femelles et ensuite la ponte des œufs se réalisent pendant le mois d’août et septembre

114
Q
A

Cochenilles

115
Q

Nourriture des Cochenilles

A

la sève élaborée de leur plante-hôte

116
Q
A

Anthocyanisation du limbe et enroulement des feuilles d’un pied de vigne (cépage rouge) atteint par l’enroulement. Grapevine leafroll-associated virus (GLRaV)

117
Q
A

Anthocyanisation généralisée du limbe et enroulement d’une feuille d’un pied de vigne (cépage rouge) atteint par l’enroulement. Grapevine leafroll-associated virus (GLRaV)

118
Q
A

Cochenille lécanine (coccidae) à coque dure et dont la ponte n’est pas contenue dans un ovisac.

119
Q
A

Femelle de Parthenolecanium persicae, le bouclier est moins arrondi que celui de P. corni.
Cochenilles

120
Q
A

Cochenille

Parthenolecanium corni femelle adulte. L’insecte est protégé par une coque de forme bien arrondie.

121
Q
A

Larve de Parthenolecanium sp., à ce stade la cochenille est mobile.

122
Q
A

Neopulvinaria innumerabilis se reconnait à son ovisac cotonneux.

123
Q
A

Heliococcus bohemicus cochenille farineuse de la vigne ou cochenille bohémienne appartient à la famille des Pseudococcidae. Noter les longs filaments cireux.

124
Q
A

Phenacoccus aceris, cochenille du pommier (apple mealybug) qui appartient à la famille des Pseudococcidae est une espèce polyphage que l’on trouve sur vigne.Le corps est recouvert d’une cire pulvérulente.

125
Q
A

Planococcus sp., le corps de la femelle est rosé et couvert d’une pulvérulence blanche. P. citri et P. ficus peuvent être observées sur vigne dans le bassin méditerranéen.

Cochenille

126
Q

Reproduction cochenilles

A

Sexuée

127
Q
A

Ericydnus sipylus hyménoptère Encyrtidae (forme microptère), pond dans les larves de cochenilles farineuses (Pseudococcidae)

auxiliaire parasitoïde!

128
Q
A

Cryptolaemus montrouzieri est une coccinelle prédatrice des cochenilles du vignoble.

129
Q
A

Exochomus quadripustulatus adulte, la larve est une prédatrice des oeufs de cochenilles ainsi que des femelles en cours de maturation

130
Q

Empoasca vitis

A

Cicadelle verte

131
Q
A

Cicadelle verte

132
Q
A

Adulte de la cicadelle Empoasca vitis, responsable de la grillure de la vigne. Petite cicadelle verte

133
Q
A

Stade larvaire de Empoasca vitis observé à la face inférieure d’une feuille de vigne. (cicadelle verte)

134
Q
A

Stade larvaire d’ Empoasca vitis. (cicadelle verte)

135
Q
A

Stade larvaire avancé d’Empoasca vitis de couleur vert possédant des ébauches d’ailes développées.

136
Q
A

Stade larvaire d’un phénotype particulier de Empoasca vitis dont la couleur est rosâtre. (cicadelle verte)

137
Q
A

Stade larvaire de Zygina rhamni à ne pas confondre avec celui d’Empoasca vitis.

138
Q
A

Zygina rhamni ne doit pas être confondue avec Empoasca vitis dont elle diffère par ses très grandes antennes. Cicadelle italienne

139
Q
A

Synoptique de développement de Empoasca vitis sur vigne (cicadelle verte)

140
Q

Byctiscus betulae

A

Cigarier

141
Q
A

Cigarier

142
Q
A

Adultes de cigarier. Byctiscus betulae

143
Q
A

Adulte de cigarier. Byctiscus betulae

144
Q
A

Détail d’un oeuf formé par Byctiscus betulae. (cigarier)

145
Q
A

Larve de Byctiscus betulae. (cigarier)

146
Q
A

Un oeuf de Byctiscus betulae est visible au coeur d’un cigare.(cigarier)

147
Q
A

Synoptique de développement de Byctiscus betulae sur vigne. (cigarier)

148
Q

Eupoecilia ambiguella

A

Cochylis

149
Q
A

Cochylis

150
Q
A

Attaque de chenille de cochylis sur boutons floraux, noter les soies qui réunissent entre-eux les fleurs de la grappe.

151
Q
A

Dégâts secondaires sur baies mûres dus aux morsures des chenilles de 2ème génération, avec développement de pourritures dues à Botrytis cinerea à gauche et Aspergillus carbonarius à droite de la photo.

152
Q
A

Glomérule contenant une chenille de cochylis

153
Q
A

Eupoecilia ambiguella : oeufs âgés de 3-4 jours. L’œuf de Cochylis présente une ponctuation orange caractéristique.

154
Q
A

Oeuf de cochylis 3 jours après la ponte (milieu artificiel) avec ses taches oranges caractéristiques.

155
Q
A

La chenille d’Eupoecilia ambiguella est caractérisée par une tête brun à noire. Le corps est orné de protubérance plus foncées que le corps.

156
Q
A

Dessin de la tête d’une larve d’après Marchal 1912. Cela permet d’estimer le stade larvaire d’après la mesure de la largeur de la capsule céphalique.

157
Q
A

Chrysalides de Cochylis en bas, plus courte, plus orange et plus gonflée que celle d’Eudémis en haut. Les couleurs et tailles peuvent varier selon l’alimentation de la chenille

158
Q
A

Eupoecilia ambiguella : la Cochylis (à droite) se distingue facilement de l’Eudémis (à gauche) par la présence d’un chevron brun sur les ailes.

159
Q
A

Représentation schématique des dégâts de Cochylis en fonction des stades phénologiques

160
Q

Méthodes de protection vis-à-vis d’Eupoecilia ambiguella

A

Piéger les adultes avec des pièges sexuels

Mettre en place la confusion sexuelle si possible

161
Q

Drosophila suzukii

A

drosophile japonaise

162
Q
A

Traces de pontes de Drososphila suzukii sur une baie de raisin. Les oeufs sont déposés sous la pellicule, les filaments visibles étant les tubes respiratoires des oeufs.

163
Q
A

Effondrement de la baie de raisin (cépage Merlot) suite au développement des larves de Drosophila suzukii dans la pulpe.

164
Q
A

Adultes mâle (à gauche) et femelle (à droite) de Drosophila suzukii (bioagresseur émergent) à ne pas confondre avec ceux des autres drosophiles associées à la pourriture acide.

165
Q
A

Critères de détermination de Drosophila suzukii : a) bandes rayés sur l’abdomen, b) ovipositeur muni de dentes noires, c) ailes tachetées chez le mâle, d) poils sur les tarses chez le mâle.

166
Q
A

Larve de Drosophila suzukii, normalement de couleur crème, colorée ici par la pulpe du fruit contaminé.

167
Q
A

La pupe de Drosophila suzukii est caractérisée par les stigmates en ailettes.

168
Q

Méthodes de protection vis à vis Drosophile japonaise

A

mise en place d’un piégeage de masse des adultes

169
Q

Lobesia botrana

A

Eudemis

170
Q
A

Lobesia botrana

Eudemis

171
Q
A

Cycle annuel de l’Eudemis de la vigne tel qu’on l’observe en général en Aquitaine. Les mois sont indiqués par leur numéro. a) suivant la latitude du vignoble des chenilles peuvent passer l’hiver sans diapause si une alimentation est disponible, b) Eudémis peut réaliser 4 cycles au Sud de la France

172
Q
A

Perforations des baies avant véraison, des indices qui révèlent la présence de chenilles d’Eudémis.

173
Q
A

Perforations des baies avant véraison, des indices qui révèlent la présence de chenilles d’Eudémis.

174
Q
A

Dégâts occasionnés sur grappe de chasselas à maturité : Lobesia botrana

175
Q
A

Dégâts d’Eudémis sur baie de raisin noir à maturité. Les blessures de ponte favorisent l’installation de champignons parasites secondaires (Botrytis, Aspergillus).

176
Q

Dégâts et nuisibilité d’Eudémis

A
  • attaque principalement aux organes fructifères

* facilitent le développement de microorganismes sur la grappe

177
Q
A

Lobesia botrana adulte sur inflorescence de vigne

Eudemis

178
Q
A

Lobesia botrana : adulte Eudemis

179
Q
A

Chrysalides de Cochylis en bas, plus courte, plus orange et plus gonflée que celle d’Eudémis en haut. Les couleurs et tailles peuvent varier selon l’alimentation de la chenille

180
Q

Cycle eudemis

A

Hiver: Chrysalides (Puppen)

Printemps-Été: Adultes- Œufs- Chenillés

181
Q

Combien des cycles reproducteurs/ générations de Eudemis par an

A

2-4

182
Q

Protection eudemis

A
  1. Mettre en place confusion sexuelle

2. prendre en comte présence et développement de parasitoïdes naturels

183
Q
A

Eulia ou petite tordeuse

184
Q

Argyrotaenia ljungiana

A

Eulia ou petite tordeuse

185
Q
A

Eulia ou petite tordeuse

Les ailes antérieures de la petite tordeuse de la grappe sont de couleur ocre clair et présentent une large bande transversale brune ferrugineuse et une petite tache brune sur l’angle antérieur de l’aile

186
Q
A

Dans cette vue ventrale du papillon, on peut voir les ailes postérieures qui sont ornées d’une frange blanchâtre. Petite tordeuse de la grappe

187
Q

Combien des générations d’Eulia par an

A

3 (Même cycle que Eudemis)

188
Q

Daktulosphaira vitifoliae

A

Phylloxera

189
Q
A

Phylloxera

190
Q
A

Les jeunes feuilles de ce rameau de vigne sont couvertes de galles rougeâtres de Phylloxera sur une vigne américaine. Daktulosphaira vitifoliae

191
Q
A

Les galles rougeâtres de phylloxéra sont surtout visibles à la inférieure du limbe des feuilles de vigne. Daktulosphaira vitifoliae

192
Q
A

Forte attaque de Phylloxera gallicole sur une vigne américaine. Présence de galles rougeâtres sur la face inférieure de la feuille. Daktulosphaira vitifoliae

193
Q
A

Lors de fortes attaques de Phylloxera, des lésions localisées, chlorotiques et plus ou moins nécrotiques sont visibles à la face supérieure du limbe. Daktulosphaira vitifoliae

194
Q
A

Présence de nombreuses galles sur la partie inférieure de feuilles de vigne de cépage américain attaqué par Viteus vitifoliae. Leur nombre entraine une déformation caractéristique du limbe. (phylloxéra)

195
Q
A

Présence d’une nodosité Phylloxérique sur racine de vigne. Daktulosphaira vitifoliae

196
Q
A

Sur cette nodosité on observe plusieurs larves de Daktulosphaira vitifoliae (phylloxera)

197
Q
A

Oeufs à proximité de larves de la deuxième génération radicicole. Daktulosphaira vitifoliae (phylloxéra)

198
Q
A

Détail des oeufs présents dans une galle de phylloxéra. Daktulosphaira vitifoliae

199
Q
A

Détail d’une larve de Daktulosphaira vitifoliae dans une galle en cours de formation. (phylloxera)

200
Q
A

Femelle de Daktulosphaira vitifoliae et ses oeufs dans une galle de phylloxera.

201
Q
A

Ostiole d’une galle située à la face supérieure du limbe par laquelle sortiront les jeunes larves de Daktulosphaira vitifoliae (phylloxera)

202
Q
A

Plusieurs larves de deuxième génération radicicole observées sur racines. Daktulosphaira vitifoliae (phylloxéra)

203
Q
A

Adulte ailé de Daktulosphaira vitifoliae. (phylloxéra)

204
Q

Sparganothis pilleriana

A

Pyrale

205
Q
A

Pyrale

206
Q
A

L’adulte de Sparganothis pilleriana est facilement reconnaisable par rapport aux autres tordeuses de la vigne car il est plus gros. Au repos, ses ailes sont disposées en triangle.

Pyrale

207
Q

Eotetranychus carpini

A

Acarien jaune

208
Q
A

Acarien jaune

209
Q
A

Des lésions rougeâtres sont présentes le long de quelques nervures de cette feuille de vigne. Eotetranychus carpini (Acarien jaune des charmilles)

210
Q
A

Détail des lésions occasionnées sur la face supérieure du limbe par Eotetranychus carpini. (Acarien jaune des charmilles)

211
Q
A

Les nombreuses piqûres réalisées par Eotetranychus carpini sur le limbe entrainent localement, le long des nervures, son jaunissement puis son rougissement. (Acarien jaune des charmilles)

212
Q
A

Détail des lésions occasionnées sur la face inférieure du limbe par Eotetranychus carpini. (Acarien jaune des charmilles)

213
Q
A

Oeuf d’Eotetranychus carpini. (Acarien jaune des charmilles)

214
Q
A

Larve d’Eotetranychus carpini cheminant sous le limbe d’une feuille de vigne. (Acarien jaune des charmilles)

215
Q
A

Femelle et larve d’Eotetranychus carpini sur feuille de vigne. Petit acarien jaune de la vigne, acarien jaune des charmilles

216
Q
A

Femelles hivernantes de l’acarien Eotetranychus carpini, uniformément jaune citron en sortie d’hiver

217
Q
A

Synoptique du développement de Eotetranychus carpini sur vigne

218
Q

Panonychus ulmi

A

Acarien rouge

219
Q
A

Acarien rouge

220
Q
A

Acarien rouge

221
Q
A

Femelle adulte dePanonychus ulmi vue de dessus. On distingue des rangées de poils blancs caractéristiques avec leurs tubercules basals

222
Q
A

Larve de Panonychus ulmi vue de dessous. (araignée rouge)

223
Q

Hivernation Acarien Jaune

A

Femelles fécondées

224
Q

Hivernation Acarien Rouge

A

Œufs

225
Q

Grapevine fan leaf virus (GFLV)

A

Court noué

226
Q
A

Divers désordres vasculaires, aux symptômes plus ou moins évolués, visibles sous l’écorce d’un cep affecté par l’esca

227
Q
A

Détail d’un désordre vasculaire superficiel du bois, notez la coloration jaune orangée et les filets plus sombres. esca

228
Q
A

De nombreuses lésions nécrotiques brunes sont visibles sur ce cep sectionné longitudinalement, ainsi que des stries et des ponctuations brunes à noires. Notons une large altération du bois située au niveau d’une plaie de taille. (esca)

229
Q

Calcul Rendement (kg/ha)

A

Rendement (kg/ha) = nombre de souches x nombres de grappe par souche x poids moyen d’une grappe / surface de la parcelle

230
Q
A

Taille Guyot simple

231
Q
A

Taille en Guyot simple

232
Q
A
233
Q
A

Taille en cordon

1 ou 2 bras horizontaux ayant chacun 3 ou 4 coursons à 2 yeux

234
Q
A

La taille en gobelet

3 à 5 bras (branche) principales terminés par un courson de 3 ou 4 (Bourgeons ou aussi appelé yeux).

235
Q
A

Symptômes de carence en bore

236
Q
A

Étapes de formation de la taille courte de la vigne en Guyot simple

237
Q

Cycle de Mildiou

A

Hiver: oospores
Primavera: zoospores -infection primaire
-inoculation secondaire
Été: -cycles secondaire
Automne: Cycles secondaires - chute de feuilles

238
Q

Oligo Éléments

A 
Fer
Bor 
Manganèse 
Zinc 
Cuivre 
Molybdène
239
Q

Macro Éléments

A 
Hydrogène 
Carbone 
Oxygène 
Azote 
Potassium 
Calcium 
Magnésium 
Phosphore 
Soufre
240
Q

Fonction Fer

A
  • Formation de la chlorophylle

* Constitution de enzymes et acides aminés

241
Q

Fonction Bore

A
  • croissance des tissus
  • formations des fruits
  • absorption de l’eau
242
Q

Fonction manganèse

A
  • activation enzymes
  • formation de la chlorophylle et des protéines
  • accélère la maturation
243
Q

Fonction Zinc

A

•synthèse des protéines, et enzymes et hormones de croissance

244
Q

Fonction Cuivre

A
  • activateur enzymatique
  • synthèse de lignine
  • rôle essentiel dans la photosynthèse
245
Q

Fonction Molybdène

A

•assimilation de l’azoté Et des bactéries fixatrices d’azote

246
Q

Biologie de l’Acariose

A

Hiver: femelles (uniquement) hivernent sous les écorces à la base du sarment ou sous les écailles des bourgeons inférieurs
Débourrement: femelles piquent les bourgeons et pontes
Période végétative : à partir de 8/12 feuilles migrations adultes sur la face inférieure des jeunes feuilles
Véraison: migration des femelles vers la base des sarments

247
Q

Cycle biologique Acarien Jaune

A

•Femelles hivernantes fécondées de couleur jaune vif (avec deux taches pour Tetranychus urticae).
•Localisées sous les écorces des bois lors de l’hivernation.
•Les femelles actives sont légèrement allongées jaunes claires avec
petits points noirs sur le côté.
•4 à 6 générations d’été avec des œufs lisses ronds et incolores.
•Cet acarien n’est observé que sur la face inférieure des feuilles à
partir du printemps.

248
Q

Cycle biologique Acarien Rouge

A
  • Ponte à partir du mois d’août et fécondation à l’automne, œufs capables de supporter des températures très négatives (diapause).
  • Hivernation des « œufs d’hiver » rouges vifs, déposés sur la base des sarments autour des bourgeons ou sur le vieux bois du cep.
  • Éclosion sur la période de débourrement de la vigne dès 15°C de température moyenne.

•Après éclosion, l’acarien passe par 7
stades successifs en 2 phases : une
phase larvaire avec 3 stades mobiles nymphaux, intercalés par 3 stades immobiles de mue dits chrysalides, puis une phase adulte.

  • Larves colonisent les jeunes pousses et arrivent à l’état adulte en 5 à 20 jours suivant la température. Les adultes et les larves, présents sur les deux faces de la feuille piquent le matériel végétal pour s’alimenter.
  • Femelles pondent des « œufs d’été » (plus petits et plus clairs) sur les feuilles, durant 15 jours environ.
  • Dans l’année 4 à 8 générations peuvent se succéder.
249
Q

Biologie de la cicadelle verte

A
  • Femelles fécondées passent l’ hiver sur des conifères ou du lierre
  • Arrivé aux alentours du mois d’avril, elle se déplace vers la vigne, où elles pondent des œufs sur la face inférieure des jeunes feuilles (15 à 20 œufs par feuilles), au niveau des nervures et du pétiole
  • Une fois éclos les larves de couleur vert clair sortent et se nourrissent de la sève en piquant les feuilles ce qui provoquera une décoloration de la feuille.
250
Q

Vecteur du Grapevine fanleaf virus (court noué)

A

Nématodes

251
Q

Vecteur d’enroulement de la vigne (Grapevine Leafroll Virus)

A

Cochenilles

252
Q

Symptômes Carences FOLIAIRES

A
  • RACINES: ↓ Xce
  • BOIS: ∆ Matu , Xce, Aoutement
  • BAIES: ∆ Rdt & Matu ; coulure ; millerandage ; texture
  • Anomalies de coloration des feuilles
  • Anomalies de croissance et de forme des feuilles
  • Nécroses et dessèchements foliaires
253
Q

Travail du sol novembre-décembre

A

Buttage

254
Q

Travail du sol février/mars

A

Décopactage
Préparation plantation
Déchaussage

255
Q

Travail du sol Avril

A

Enfouissement d’herbe

256
Q

Travail du sol mai/juin/juillet

A

Binages

Désherbages

257
Q

Travail du sol septembre / octobre

A

Décopactage

Préparation semis

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