Hydrates De Carbone Flashcards

1
Q

Quel type de composés sont les hydrates de carbone?

A

Composés organiques comme les sucres, la cellulose et les polymères liés aux protéines

Les hydrates de carbone incluent des substances essentielles comme le glycogène.

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2
Q

Comment sont classés les hydrates de carbone?

A

Monosaccharides, oligosaccharides, polysaccharides

Les polysaccharides peuvent être neutres ou acides.

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3
Q

Quels sont les polysaccharides neutres?

A

Glycogène, amidon, cellulose, chitine

Ces polysaccharides contiennent du glucose.

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4
Q

Qu’est-ce que le glycogène?

A

Polymère de glucose et réserve d’hydrates de carbone dans le foie et les muscles squelettiques

Il est relativement insoluble dans l’eau.

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5
Q

Quel est le rôle principal des mucopolysaccharides acides?

A

Rôle de soutien dans les tissus, comme l’acide hyaluronique

Ils contiennent des groupes carboxyles et sulfatés.

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6
Q

Quelles sont les glycoprotéines?

A

Mucines, mucoprotéines, mucosubstances

Elles peuvent être carboxylées ou sulfatées.

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7
Q

Quels fixateurs doivent être évités pour les glucides?

A

Chlorure mercurique, tétraoxyde d’osmium, glutaraldéhyde

Ces fixateurs peuvent produire des faux positifs.

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8
Q

Quels fixateurs sont bons pour les glucides?

A

Formaldéhyde et éthanol

Ils aident à préserver la structure des glucides.

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9
Q

Qu’est-ce que la méthode APS?

A

Acide périodique de Schiff, utilisée pour indiquer la présence de glycogène dans les tissus

Elle comprend l’oxydation périodique et la détection des glucides.

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10
Q

Quel est le rôle de l’acide périodique dans la méthode APS?

A

Il rompt les liaisons entre deux carbones et libère des aldéhydes réactifs

Cela permet de détecter la présence de glucides.

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11
Q

Quel est le rôle du réactif de Schiff?

A

Il détecte les aldéhydes formés par l’oxydation de l’acide périodique

Cela permet de redonner une couleur au colorant.

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12
Q

Quelles étapes sont impliquées dans la méthode APS-Diastase?

A

Digestion du glycogène, oxydation avec l’acide périodique, réaction avec le réactif de Schiff

Cela permet de distinguer le glycogène des autres substances.

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13
Q

Quelles sont les conditions pour l’oxydation par l’acide périodique?

A

1% pour 5 à 10 minutes, pH de 3 à 4,5

Un temps d’oxydation trop long peut produire des faux négatifs.

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14
Q

Quel est le résultat de la méthode APS pour le glycogène?

A

Magenta (APS positif)

Si le glycogène est digéré, il ne sera pas coloré.

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15
Q

Vrai ou faux: L’APS seul est spécifique pour le glycogène.

A

Faux

Il nécessite l’ajout de l’APS diastase pour la spécificité.

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16
Q

Quel est le rôle de la diastase dans la méthode APS-Diastase?

A

Elle digère le glycogène présent dans les tissus

Cela aide à confirmer la présence de glycogène.

17
Q

Que doit-on faire pour tester la qualité du réactif de Schiff?

A

Ajouter quelques gouttes de formaldéhyde à la solution

Si la solution vire au rose, le réactif est encore bon.

18
Q

Quel est le volume de réactif de Schiff utilisé dans le test?

A

Environ 10 ml

Ce volume est essentiel pour réaliser le test correctement.

19
Q

Que signifie un changement de couleur au rose lors de l’utilisation du réactif de Schiff?

A

Le réactif est encore bon

Cela indique que le réactif n’est pas dégradé et peut être utilisé pour des tests.

20
Q

Quelle est la durée maximale d’exposition au réactif de Schiff?

A

20 minutes

Une exposition prolongée pourrait altérer les résultats du test.

21
Q

Quelle est l’utilité de la réaction histochimique?

A

Elle est plus analytique que l’attachement d’une molécule colorante

La couleur de la réaction indique la composition des éléments du tissu.

22
Q

Quelle est la couleur des noyaux lors de l’utilisation de l’hématoxyline de Harris acidifié?

A

Bleu

Cette coloration permet de faire ressortir les détails nucléaires.

23
Q

Quelle couleur indique la présence de glycogène lors de l’utilisation de l’APS?

A

Rouge pourpre

L’APS réagit positivement avec le glycogène.

24
Q

À quel pH le bleu alcian est-il utilisé pour démontrer les mucopolysaccharides acides et glycoprotéines?

A

pH 2,5

Il colore les mucopolysaccharides acides sulfatés et carboxylés.

25
Q

Quel est le réactif utilisé pour colorer les mucopolysaccharides acides à pH 2,5?

A

Bleu alcian à pH 2,5

Utilisé en solution d’acide acétique 3%.

26
Q

Quel est le résultat de la coloration avec le bleu alcian à pH 2,5?

A

Turquoise pour les mucines acides

Les autres structures peuvent être colorées en rose selon le contrecolorant utilisé.

27
Q

Quel type de mucopolysaccharides ne sera pas coloré par le bleu alcian à pH 1,0?

A

Mucopolysaccharides carboxylés

Ce pH est spécifique aux mucopolysaccharides acides sulfatés.

28
Q

Quel est le principe de la méthode de Mayer Mucicarmine?

A

L’aluminium forme un complexe de chélation avec le carmin

Ce complexe s’attache aux groupements acides des mucines.

29
Q

Quelle est la couleur des mucopolysaccharides acides détectés par muci-carmin?

A

Rose foncé à rouge

Cette coloration est spécifique aux mucopolysaccharides acides épithéliaux.

30
Q

Quel est le rôle du contrecolorant dans l’utilisation du bleu alcian?

A

Faire ressortir le contraste entre le bleu alcian et d’autres structures

Le choix du contrecolorant est crucial pour une bonne visualisation.

31
Q

Quel est le résultat de l’utilisation du bleu alcian à pH 1,0 pour les mucopolysaccharides acides sulfatés?

A

Turquoise

Les autres structures apparaîtront en rose.

32
Q

Quelles sont les étapes de la méthode pour la mise en évidence des mucopolysaccharides acides avec le muci-carmin?

A
  1. Déparaffiner et hydrater
  2. Colorer dans l’hématoxyline de Weigert
  3. Rincer
  4. Colorer dans la solution de muci-carmin
  5. Rincer
  6. Colorer dans la solution de Métanil jaune
  7. Déshydrater
  8. Éclaircir et monter

Ces étapes garantissent une coloration adéquate des tissus.