Hydrates De Carbone Flashcards

1
Q

Quel type de composés sont les hydrates de carbone?

A

Composés organiques comme les sucres, la cellulose et les polymères liés aux protéines

Les hydrates de carbone incluent des substances essentielles comme le glycogène.

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2
Q

Comment sont classés les hydrates de carbone?

A

Monosaccharides, oligosaccharides, polysaccharides

Les polysaccharides peuvent être neutres ou acides.

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3
Q

Quels sont les polysaccharides neutres?

A

Glycogène, amidon, cellulose, chitine

Ces polysaccharides contiennent du glucose.

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4
Q

Qu’est-ce que le glycogène?

A

Polymère de glucose et réserve d’hydrates de carbone dans le foie et les muscles squelettiques

Il est relativement insoluble dans l’eau.

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5
Q

Quel est le rôle principal des mucopolysaccharides acides?

A

Rôle de soutien dans les tissus, comme l’acide hyaluronique

Ils contiennent des groupes carboxyles et sulfatés.

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6
Q

Quelles sont les glycoprotéines?

A

Mucines, mucoprotéines, mucosubstances

Elles peuvent être carboxylées ou sulfatées.

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7
Q

Quels fixateurs doivent être évités pour les glucides?

A

Chlorure mercurique, tétraoxyde d’osmium, glutaraldéhyde

Ces fixateurs peuvent produire des faux positifs.

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8
Q

Quels fixateurs sont bons pour les glucides?

A

Formaldéhyde et éthanol

Ils aident à préserver la structure des glucides.

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9
Q

Qu’est-ce que la méthode APS?

A

Acide périodique de Schiff, utilisée pour indiquer la présence de glycogène dans les tissus

Elle comprend l’oxydation périodique et la détection des glucides.

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10
Q

Quel est le rôle de l’acide périodique dans la méthode APS?

A

Il rompt les liaisons entre deux carbones et libère des aldéhydes réactifs

Cela permet de détecter la présence de glucides.

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11
Q

Quel est le rôle du réactif de Schiff?

A

Il détecte les aldéhydes formés par l’oxydation de l’acide périodique

Cela permet de redonner une couleur au colorant.

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12
Q

Quelles étapes sont impliquées dans la méthode APS-Diastase?

A

Digestion du glycogène, oxydation avec l’acide périodique, réaction avec le réactif de Schiff

Cela permet de distinguer le glycogène des autres substances.

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13
Q

Quelles sont les conditions pour l’oxydation par l’acide périodique?

A

1% pour 5 à 10 minutes, pH de 3 à 4,5

Un temps d’oxydation trop long peut produire des faux négatifs.

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14
Q

Quel est le résultat de la méthode APS pour le glycogène?

A

Magenta (APS positif)

Si le glycogène est digéré, il ne sera pas coloré.

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15
Q

Vrai ou faux: L’APS seul est spécifique pour le glycogène.

A

Faux

Il nécessite l’ajout de l’APS diastase pour la spécificité.

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16
Q

Quel est le rôle de la diastase dans la méthode APS-Diastase?

A

Elle digère le glycogène présent dans les tissus

Cela aide à confirmer la présence de glycogène.

17
Q

Que doit-on faire pour tester la qualité du réactif de Schiff?

A

Ajouter quelques gouttes de formaldéhyde à la solution

Si la solution vire au rose, le réactif est encore bon.

18
Q

Quel est le volume de réactif de Schiff utilisé dans le test?

A

Environ 10 ml

Ce volume est essentiel pour réaliser le test correctement.

19
Q

Que signifie un changement de couleur au rose lors de l’utilisation du réactif de Schiff?

A

Le réactif est encore bon

Cela indique que le réactif n’est pas dégradé et peut être utilisé pour des tests.

20
Q

Quelle est la durée maximale d’exposition au réactif de Schiff?

A

20 minutes

Une exposition prolongée pourrait altérer les résultats du test.

21
Q

Quelle est l’utilité de la réaction histochimique?

A

Elle est plus analytique que l’attachement d’une molécule colorante

La couleur de la réaction indique la composition des éléments du tissu.

22
Q

Quelle est la couleur des noyaux lors de l’utilisation de l’hématoxyline de Harris acidifié?

A

Bleu

Cette coloration permet de faire ressortir les détails nucléaires.

23
Q

Quelle couleur indique la présence de glycogène lors de l’utilisation de l’APS?

A

Rouge pourpre

L’APS réagit positivement avec le glycogène.

24
Q

À quel pH le bleu alcian est-il utilisé pour démontrer les mucopolysaccharides acides et glycoprotéines?

A

pH 2,5

Il colore les mucopolysaccharides acides sulfatés et carboxylés.

25
Quel est le réactif utilisé pour colorer les mucopolysaccharides acides à pH 2,5?
Bleu alcian à pH 2,5 ## Footnote Utilisé en solution d’acide acétique 3%.
26
Quel est le résultat de la coloration avec le bleu alcian à pH 2,5?
Turquoise pour les mucines acides ## Footnote Les autres structures peuvent être colorées en rose selon le contrecolorant utilisé.
27
Quel type de mucopolysaccharides ne sera pas coloré par le bleu alcian à pH 1,0?
Mucopolysaccharides carboxylés ## Footnote Ce pH est spécifique aux mucopolysaccharides acides sulfatés.
28
Quel est le principe de la méthode de Mayer Mucicarmine?
L'aluminium forme un complexe de chélation avec le carmin ## Footnote Ce complexe s'attache aux groupements acides des mucines.
29
Quelle est la couleur des mucopolysaccharides acides détectés par muci-carmin?
Rose foncé à rouge ## Footnote Cette coloration est spécifique aux mucopolysaccharides acides épithéliaux.
30
Quel est le rôle du contrecolorant dans l'utilisation du bleu alcian?
Faire ressortir le contraste entre le bleu alcian et d'autres structures ## Footnote Le choix du contrecolorant est crucial pour une bonne visualisation.
31
Quel est le résultat de l'utilisation du bleu alcian à pH 1,0 pour les mucopolysaccharides acides sulfatés?
Turquoise ## Footnote Les autres structures apparaîtront en rose.
32
Quelles sont les étapes de la méthode pour la mise en évidence des mucopolysaccharides acides avec le muci-carmin?
1. Déparaffiner et hydrater 2. Colorer dans l’hématoxyline de Weigert 3. Rincer 4. Colorer dans la solution de muci-carmin 5. Rincer 6. Colorer dans la solution de Métanil jaune 7. Déshydrater 8. Éclaircir et monter ## Footnote Ces étapes garantissent une coloration adéquate des tissus.