Cours #2 Flashcards

1
Q

4 méthodes de Next Génération Sequencing (NGS) où se produit l’analyse d’un grand nombre d’échantillons d’ADN physiquement adjacents dans un même instrument (AUTOMATISATION)

A
  1. Pyrosequencing
  2. Illumina (++ utilisé)
  3. Nanopore (MinION)
  4. PacBio
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2
Q

Quelle liaison se forme durant le pyrosequencage et qui relie l’ADN polymérase aux nucléotides

A

Les liaisons phosphodiesters

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3
Q

Lors du pyrosequencage, qu’est-ce qui est libéré à la fin de la réaction

A

Un pyrophosphate (2 P du dNTP) et un ion hydrogène (H+) du groupe hydroxyle

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4
Q

Lors pyrosequencage, enzyme qui effectue le lavage entre chaque nucléotide

A

Apyrase

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5
Q

Enzyme qui clive pyrophosphate et crée de l’ATP avec de l’APS

A

Sulfurylase

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6
Q

Comment est créé la lumière lors du pyrosequencage

A

La luciférase utilise de l’ATP et de la luciférine et émet de la lumière

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7
Q

Que produit la luciferine et l’ATP en réaction avec la luciferase

A

De l’oxyluciférine et de la lumière

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8
Q

Premier développement d’une technologie de séquençage automatisée

A

Pyrosequencage

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9
Q

Limitations du pyrosequencage

A

-Longueur des lectures de séquence (300-500nt), les fragments lus sont courts et l’assemblage se fait par chevauchement
-lent (un nucléotide à la fois)

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10
Q

Étapes principales de ILLUMINA

A
  1. Préparation de l’ADN
  2. «Bridge amplification» pour obtenir des «clusters»
  3. Séquençage
  4. Analyse bio-informatique
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11
Q

ILLUMINA, lors de son ajout, permet d’analyser plusieurs échantillons simultanément

A

Séquence index

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12
Q

À quoi sert P5 et P7

A

Fixation des fragments d’ADN sur la flow cell pour l’amplification

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13
Q

À quoi sert Rd2 et Rd1

A

Amorces utilisés pour initier séquençage des brins d’ADN fixés sur la flow cell

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14
Q

Qui suis-je, contiennent les oligonucléotides pour former P5 et P7

A

Puits

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15
Q

Qui suis-je, contiennent les oligonucléotides pour former P5 et P7

A

Puits

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16
Q

Groupe de copies identiques d’un fragment d’ADN, formé par bridge amplification sur la flow cell

A

Cluster

17
Q

Rôle cluster

A

Augmenter le signal fluorescent généré lors de l’incorporation des nucléotides pour qu’il soit détectable par le capteur

18
Q

Que se passe-t-il lorsque l’ADN polymerase ajoute un nucléotide couplé à un fluorophore

A

L’élongation arrête car le fluorophore bloque la synthèse pour que l’ordinateur enregistre la base

19
Q

Qu’est-ce qui a été rendu possible par analyse bio-informatique

A

L’alignement des séquences («reads»)

20
Q

Vrai ou faux, le génome est une série d’alignements

A

Vrai

21
Q

Qu’est-ce que les Scaffolds

A

Alignements avec séquences de références

22
Q

Vrai ou faux les reads sont plus longues que les contigs

A

Faux, les contigs sont plus longues que les reads

23
Q

Longueur de chaque «cluster»

A

100-200nt

24
Q

Rôle couverture (read depth)

A

S’assure qu’il n’y ait pas d’erreurs dans un cluster en relisant 20-30X la séquence

25
Q

Si une lecture (read) comporte une erreur sur 200 nt, toutes les autres devraient …. (2)

A
  1. Être identiques entre elles
  2. Différentes de celle avec l’erreur
26
Q

Petites ouvertures dans une membrane qui laisse seulement passer une molécule à la fois

A

Nanopores

27
Q

Vrai ou faux, l’amplification est crucial lors du Nanopore Detectors for DNA

A

Faux, elle n’est pas nécessaire, puisqu’il n’y a pas de synthèse, seulement une molécule qui traverse

28
Q

Technique de séquençage basée sur la mesure du courant électrique des bases de l’ADN à travers un trou

A

Séquençage par Nanopores

29
Q

Technique de séquençage qui implique de l’ADN circulaire monocaténaire

A

PacBio

30
Q

Lieu du tube digestif où se trouve le plus de bactéries

A

Le gros intestin (colon)

31
Q

Séquence d’ADN encodant la petite sous-unité du ribosome procaryote

A

Le 16S ADNr

32
Q

De quoi est composé le 16S ADNr

A

9 régions variables et 10 régions conservées

33
Q

Région du 16S ADNr qui donne de l’information sur la composition et la représentation des phylum bactériens présents

A

V3-V4

34
Q

Séquençage de cette molécule est utilisé pour analyser la diversité des bactéries ou des archées

A

16S ADNr

35
Q

Région V3-V4 donne de l’information sur la … et la … des phylum bactériens présents (2)

A
  1. Composition
  2. Représentation
36
Q

Région utilisé pour l’analyse du microbiote fongique

A

ITS2 ARNr

37
Q

Autre approche du séquençage du 16S ADNr

A

Shotgun

38
Q

Méthode shotgun

A

TOUT l’ADN purifié d’un échantillon est séquencé et donné de l’information plus précise sur la composition, les espèces et même les souches, pour l’identification de nouvelles espèces bactériennes