COLETA ARMAZENAMENTO TRANSPORTE DE AMOSTRA DE EXAMES VETERINÁRIOS Flashcards
Qual a função e classificação dos tubos
Azul (citrato de sódio)
- Amarelo/vermelho (ativador de coágulo)
- Verde (heparina)
- Lilás/roxo (EDTA)
- Cinza (fluoreto de sódio/EDTA)
Variáveis pré analítica
Coleta inadequada
• Idade do animal,
• raça, sexo e gestação
• Tempo de armazenamento da amostra prolongado
• Stress do animal durante a coleta
• Volume inadequado da amostra
• Conservantes inadequados
• Proporção sangue/anticoagulante
• Medicação que o animal recebeu
• Contaminação da amostra
• Alimentação do animal antes da colheita,
provocando lipemia
• Garroteamento prolongado
• Temperatura inadequada de armazenamento da
amostra
• Exercício físico extenuante
• Jejum prolongado ou diminuído
• Uso do tubo para transporte de material biológico
incorreto
• Hemólise
• Temperatura de armazenamento e transporte da
amostra
Como é feito o preparo do material
Verificar o tipo de frasco a ser utilizado e tipo de anticoagulante, se necessário.
• O ideal é o animal estar em jejum por 12 horas, para evitar que estas amostras apresentem
lipemia. A lipemia pode causar hemólise e alterar os resultados dos exames.
• Informar o uso de medicamentos.
• Homogeneizar de forma correta e não agitar excessivamente a amostra
• Não deixar o material em temperatura ambiente por muito tempo ou em altas temperaturas
ou congelar
Acessos para cole
Veia jugular externa,
• veia safena menor do membro traseiro
• veia cefálica do membro dianteiro
PESQUISA DE HEMOPARASITAS
A pesquisa de Hemoparasitos pode ser realizada através de esfregaços finos de sangue,
• •Selecionar um ponto para coleta em extremidades como orelha ou cauda;
• Coletar a primeira gota extravasada após a perfuração da pele com agulha estéril ou após
corte superficial com lâmina de bisturi;
• Estender a gota de sangue sobre uma lâmina de vidro com auxílio de uma lâmina extensora,
Bioquímicos
Colher por punção venosa 2 a 5 mL de sangue, respeitando o porte do animal.
• Retirar a agulha e transferir o material para um tubo com ativador de coágulo (gel – tampa
amarela) ou tubo seco (tampa vermelha).
• Manter a amostra sob refrigeração (2 a 8 °C) e enviar ao laboratório imediatamente em até
24 hs após a coleta.
• Para dosagens de glicose e ácido lático, utilizar tubo com fluoreto (tampa cinza).
• Nos casos em que a amostra não puder ser encaminhada no mesmo dia ao Laboratório,
aguardar a coagulação da amostra em temperatura ambiente, centrifugar e transferir o soro ou
plasma para um tubo seco ou tipo eppendorf, identificar e congelar.
HEMOSTASIA
Colher por punção venosa 4 mL de sangue, retirar a agulha e transferir
• O material para um tubo com Citrato de sódio (tampa azul), vertendo o sangue até atingir a
marca indicativa no tubo.
• Homogeneizar a amostra com delicadeza e mantê-la sob refrigeração imediata.
• Deve-se evitar o garroteamento prolongado e colher com o mínimo de trauma para que estes
fatores não influenciem no resultado do exame.
• Enviar a amostra imediatamente ao Laboratório. Na impossibilidade disto, centrifugar e
acondicionar o plasma em tubo seco ou tipo eppendorf e congelar em até 30 minutos.
URINALISE
Identificar a forma de coleta (cistocentese, sondagem uretral ou micção espontânea).
• Colher no mínimo 5 mL de urina e manter em refrigeração (2 a 8 °C) imediatamente após a
coleta, até o momento de entrega ao laboratório.
• O ideal é analisar a amostra 30 minutos após a coleta para evitar artefatos pós- colheita e
alterações degenerativas.
• A estabilidade da amostra é de 6 a 12 hs se refrigerado. Em temperatura ambiente a
estabilidade é de apenas 1 hora.
PARASITOLOGIA
Coletar no mínimo 3 gramas de fezes frescas,
• Se as fezes estiverem liquefeitas, pelo menos 10 ml deverão ser fornecidos ao laboratório para
análise.
• Não se recomenda o uso de laxantes e o animal não deverá ter sido submetido a contrastes
radiológicos nos 3 dias anteriores à coleta.
• Manter as amostras frescas refrigeradas de 2 a 8 °C até o momento de envio ao Laboratório,
sem exceder 12 horas.
• Não congelar as amostras.
IMUNOLOGIA, TOXICOLOGIA E
ENDOCRINOLOGIA:
A maior parte das análises imunológicas e hormonais requer soro, porém algumas análises
requerem sangue total com anticoagulante específico ou plasma.
• Para toxicologia diversos materiais podem ser encaminhados (sangue total, soro, conteúdo
gástrico, fígado, etc.).
• Realizar jejum mínimo de 6 a 12 horas para evitar a lipemia. Em animais muito jovens ou
debilitados o jejum poderá ser diminuído para 1 a 2 horas.
• •Antes de iniciar a punção, deixar o álcool usado na antissepsia secar.
• Evitar usar agulhas de menor calibre;
Evitar colher sangue de área com hematoma ou equimose.
• Coletar de 3 ml a 5 ml de sangue.
• Verificar se a agulha está bem adaptada à seringa para evitar a formação de espuma.
• Não puxar o êmbolo da seringa com muita força.
• Descartar a agulha, passar o sangue deslizando cuidadosamente pela parede do tubo. Não
espetar a agulha no tubo para transferência do sangue da seringa para o tubo.
• Após a coleta de amostras em tubos sem anticoagulante, mantê-las em temperatura ambiente
por 20-30 min para permitir a formação e retração do coágulo.
RASPADO DE PELE SUPERFICIAL
Método para detecção de fungos.
• Caso o animal esteja em tratamento, aguardar 15 dias após suspender o antifúngico, antes de realizar
a colheita.
• Caso esteja sendo aplicado medicamento tópico, como pomada ou creme, lavar o local e colher no dia
seguinte.
• Para a acolheita, utilizar lâmina de bisturi estéril.
• Com a lâmina de bisturi, realizar raspado de escamas superficiais de pele.
• Os pelos devem ser colhidos na região das bordas da lesão com auxílio de pinça ou avulsão.
• Acondicionar em coletor estéril ou entre lâmnias de microscopia (vedar o vão entre as lâminas com
esparadrapo ou envolver com filme de PVC)..
• Identificar a amostra.
• Manter à temperatura ambiente.
RASPADO PROFUNDO DE
PELE
Método para pesquisa de ectoparasitas
• Pingar algumas gotas de óleo no local.
• Raspar com a lâmina de bisturi, especialmente nas bordas, até ocorrer leve
sangramento. Durante o procedimento, a lesão deve ser espremida entre polegar e
indicador para expor os ácaros do folículo piloso
• A colheita pode ser realizada em mais de um local.
• Acondicionar o material colhido entre lâmnias de microscopia (vedar o vão entre as
lâminas com esparadrapo ou envolver com filme de PVC)..
• Identificar a amostra.
• Manter à temperatura ambiente. Não exceder 24 horas para o envio.
