Chapitre 9 - caractérisation des environnements complexes Flashcards

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1
Q

Sur quoi reposent les approches classiques et moléculaires respectivement?

A
  • approche classique repose sur cultivabilité des bactéries métaboliques et les relations physiologiques entre les bac.
  • Approche moléculaire met à profit des méthodes qui permettent la détection ,al quantification, l’identification de mo et la détermination des gènes et de leur expression san égard à leur croissance
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2
Q

Quelle est la différence entre une sonde immunologique et une sonde nucléotidique?

A
immunologique = anticorps couplés à une molécule marquées à une sonde
nucléotique = courtes séquences d'acides nucléique marquée avec fluorochrome
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3
Q

Quelle est la différence entre la version classique et quantitative de la PCR?

A

la version quantitative utilise une courbe standard pour la quantification des mo amplifiés par les amorces alors que la classique permet de vérifier la présence /absence d’une bactérie dans un échantillon

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4
Q

Quelle est la différence entre la PCR quantitative et la PCR en temps réel?

A

en temps réel utilise des amorces universelles et permet de quantifier l’ADN total contenu dans l’échantillon

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5
Q

quel est le fonctionnement général d’un cytomètre en flux?

A

cellule bactérienne en suspension marquée par fluorochrome va dans chambre d’écoulement par pression de gaz où il y a aussi un liquide d’entrainement. Elle sort de la chambre par une buse. Cela permet la focalisation hydrodynamique (alignement des cellules). Elle passe ensuite devant faisceau laser. Compte total calculé

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6
Q

Comment appelle-t-on la sous-estimation du compte de mo d’un environnement?

A

The great plate count anomaly

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7
Q

Quelles sont les étapes des analyses moléculaires de biodiversité?

A

1- Extraction de l’ADN de l’environnement complexe
2- PCR 16S (universelle)
3- Séquençage nouvelle génération –> base de données

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8
Q

Qu’est-ce que la métagénomique?

Quelles sont les 2 approches?

A

analyse génomique de l’ADN extrait d’un enviro complexe (isolement direct des a.nucléiques)
1-métagénomique pure (séquençage haut débit de tous les fragments d’ADN pour assembler les génomes et chercher des séquences similaires avec bases de données)
2- métagénomique fonctionnelle (étude de l’expression de molécules in vitro à partir de fragment d’ADN cloné)

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9
Q

Quelle est la procédure de la métagénomique pure (séquençage haut débit)?

A
1-extraction de l'ADN
2-Fragmentation de l'ADN
3- Séquençage nouvelle génération
4- Analyse des données
*pas de PCR universelle
--> insertion des fragments dans des plasmides pour que la transcription et la traduction mènent à l'apparition d'une nouvelle capacité métabolique
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10
Q

Vrai ou Faux: la séparation physique de l’échantillon permet d’enrichir la population qui nous intéresse avant l’extraction de l’ADN

A

Vrai
Si tout ADN extrait était analysé sans égard à la grosseur, l’ADN serait très hétérogène et les séquences seraient difficiles à analyser

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11
Q

Qu’étudie le “Human microbiome project”?

A

Rôle du microbiome dans la santé humaine et la maladie

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12
Q

Qu’étudie le metaSUB?

A

la manière dont les gens peuvent interagir avec de nouvelles espèces de bactéries dépendant de l’environnement auquel ils sont exposés (transports en commun)

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13
Q

En quoi doit-on transformer les ARNm pour les manipuler et les séquencer (métatranscriptomique)

A

ARNc

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14
Q

Quels sont les biais associés à l’utilisatio ndes approches moléculaires? (3)

A

1- amplification
2- séquençage
3- représentativité de l’ADN extrait comparé au consortium naturel

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15
Q

Vrai ou faux: les approches moléculaires sont les meilleures pour assurer une bonne représentativité

A

plus ou moins vrai, l’utilisation simultanée des approches classiques et moléculaires assurent ensemble une meilleure couvertures des mo environnementaux.

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