תרגול 1 Flashcards

1
Q

צווי טריון

A

כאשר יש 2 מטענים על המולקולה

בדרך כלל מסיסה במים

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
2
Q

מתי מתקבלת פעילות אופטית?

A

כאשר יש 4 קבוצות שונות על גבי המולקולה

פחמן כיראלי

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
3
Q

מי החומצה האמינית ללא פעילות אופטית?

A

גליצין !
חומצות אמינו בודדות בעלות איזומרים אופטיים D וL
בחלבונים- L בלבד

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
4
Q

מה מבדיל בין חומצות האמינו השונות?

A

השייר

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
5
Q

חומצות אמינו ארומטיות נפחיות יופיעו הרבה בחלבון מאוורר או צפוף?

A

מאוורר- הרבה ארומטיות

צפוף- פחות קבוצות נפחיות

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
6
Q

האם טירוזין הידרופילית ?

A

כן
טבעת בנזן- לא קוטבית
טירוזין = בנזן+ OH
קבוצת הידרוקסיל יוצרת קשרי מימן עם המים ותורמת להידרופיליות

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
7
Q

מדד הידרופתיות

A

השינוי באנרגיה החופשית בח”א שעוברת מסביבה הידרופובית להידרופילית.

כאשר DELTA-G שלילי- תהליך ספונטני - ח”א הידרופילית (יציבה יותר בסביבה הידרופילית ולכן משתחרתת אנרגיה חופשית)
דלתא G חיובי- תהליך לא ספונטני- ח”א הידרופובית

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
8
Q

aliphatic

A

קב פחמימנית לא מסועפת

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
9
Q

M משקל ח”א

A

משקל ח”א ממוצעת הוא 110

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
10
Q

ח”א חיוניות

A

ח”א שחייבים לקבל מהמזון

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
11
Q

ח”א לא חיוניות

A

התא יודע לייצר אותן לבד

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
12
Q

ח”א חצי חיוניות

A

בעיקר בילדים
ציסטאין,ארגינין, טירוזין והיסטדין (צאט”ה) הן חומצות אמינו חצי חיוניות בעיקר בילדים, משום שהמסלולים המטבוליים שלהם אינם מפותחים באופן מלא.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
13
Q

נקודה איזואלקטרית (IP)

A

הPH בו סך המטען על פני החומצה האמינית שווה לאפס.

הנקודה האיזואלקטרית מחושבת כממוצע בין שני ערכי הPK ביניהם המטען מתאפס.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
14
Q

שינוי מטען ח”א בשינוי PH

A

ל15 חומצות אמינו יש 2 אתרים בהם יכול להשתנות המטען

5 ח”א הן בעלות שייר טעון ולכן יש להן 3 אתרים בהם המטען יכול להשתנות

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
15
Q

נקודת חצי טיטרציה

A

PH=PKA

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
16
Q

חומצות אמינו עם שייר שלילי נחשבות

A

חומציות יותר..

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
17
Q

איזו חומצה אמינית יוצרת קשר דיסולפידי?

A

ציסטאין עם שייר SH

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
18
Q

איזו חומצה אמינית משנה מטען בPH פיזיולוגי ?

A

היסטדין

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
19
Q

בPH קרוב ל0 , כל החומצות האמיניות יהיו..

A

חיוביות

הפרוטון לא עוזב את COOH

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
20
Q

בPH קרוב ל14 , כל החומצות האמיניות יהיו..

A

שליליות

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
21
Q

מהו תחום הבופר?

A

pk+- 0.5

בכל תחום הבופר כולל בקצוות- חצי מהפרוטונים עזבו

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
22
Q

איזה שיירים יכולים למסור פרוטון?

A

חומצות אמינו שליליות וחיוביות ו..
ציסטאין SH הופך לS-
טירוזין - OH הופך לO-

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
23
Q

מהו קשר פפטידי ? כיצד נוצר כיצד מפורק ?

A

קשר אמידי המחבר 2 חומצות אמינו זו לזו. הקשר נוצר בתגובת דחיסה תוך יציאת מולקולת מים.
בתגובת הידרוליזה (כניסת מולקולת מים) הקשר הפפטידי מנותק ונוצרות חומצות אמינו בודדות.

הקשר הפפטידי הוא בעל אופי של קשר כפול חלקי / מישורי- מקובע למצב טרנס ואין סיבוב חופשי הודות לרזוננס שמייצב אותו. כך שומר החלבון על מבנהו המרחבי.
הגבלה על הסיבוב מתקיימת גם בנוכחות קבוצות R נפחיות.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
24
Q

חלבון ללא 5 חומצות האמינו הטעונות ככל הנראה יהיה הידרופובי

A

הקוטביות וק. המימו תורמים גם הם לקוטביות אך במידה מועטה לעומת המטענים שעל השיירים.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
25
Q

מבנה ראשוני של חלבון

A

שרשרת חומצות אמינו מסודרות

מיוצב על ידי הקשר הפפטידי (קשר קוולנטי חזק)

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
26
Q

מבנה שניוני

A

מבנה סיבי - לדוגמה סלילי אלפא (חלבוני השיער)

לנעמי יש סליל אלפא בשיער

27
Q

מבנה שלישוני

A

חלבונים גלובולריים - כמה מבנים שניוניים יחד.

לדוג’ מיוגלובין- 8 קטעי סלילי אלפא

28
Q

?מה מייצב מבנה שלישוני

A

ק. מימן, קשרי ו.ד.ו (הידרופוביים), קשר יוני , קשרים דיסולפידיים (קוולנטיים).

השיירים אחראיים על הקשרים במבנה השלישוני.

29
Q

מבנה רביעוני

A

כמה מבנים שלישוניים שמחוברים זה לזה .
המבנה הרביעוני מאפשר גמישות, מאפשר ביצוע 2 תפקידים מנוגדים לאותו חלבון.
לדוג’ המוגלובין : גם קשור וגם משחרר חמצן.

30
Q

סליל אלפא

A

מבנה שניוני
קשרי מימן בין מימן של חומצה אמינית אחת (בצד האמיני) לחמצן של חומצה אמינית אחרת (בצד הקרבוקסילי)
3.6 חומצות אמינו בכל סיבוב
קבוצות R פונות כלפי חוץ.
החלל שנוצר בתוך הסליל דחוס במרכז ומונע כניסת מולקולות מים, שהיו מתחרות בקשרי המימן המייצבים את המבנה הסלילי.

הפרשי הגובה בסליל בין חומצות אמינו סמוכות הוא 0.15 ננומטר והן מסובבות ב100 מעלות אחת ביחס לשנייה.

31
Q

מהי הצורה הנפןצה ביותר לסליל אלפא?

A

קשר 1:4

32
Q

איזו חומצה אמינית שוברת קשרי אלפא ?

A

פרולין בשל:

  1. היות החנקן האמיני חלק מהטבעת וחוסר במימן לייצוב קשרי המימן של ההליקס.
  2. המצאות חלק מהקשרים הפפטידיים בקונפיגורציית ציס.
33
Q

מהם מפריע ליצירת סליל אלפא בPH=7 או ליציבותו?

A

חומצות אמינו טעונות- דחייה ומשיכה שיפריעו להליקס

חומצןת אמינו ארומטיות נפחיות

34
Q

אנודה

A

מושכת אליה אניונים (טעונים שלילית) ולכן חיובית

35
Q

קתודה

A

מושכת אליה קטיונים (טעונים חיובית) ולכן שלילית

36
Q

משטחי בטא

A

מבנה שניוני- מיוצב על ידי ק. מימן
המישור הפפטידי מסתדר בזיגזג.

כל מה שפוגע באלפא הליקס פוגע גם במשטחי בטא אך בעוצמה נמוכה יותר.
יש שני סוגים של משטחי בטא:
1. פרללי- מקביל- זוית שמרחיקה את החמצן והמימן ולכן הקשר המימני פחות חזק.
2. אנטי פרללי- שאינו מקביל- אורך קשר קצר ולכן הקשר המימני חזק ויציב יותר.

37
Q

חלבון פעיל יהיה

A

במבנה שלישוני ומעלה

38
Q

למה גורמת דנטורציה של חלבון?

A

לפגיעה בפעילות החלבון באופן חלקי או מלא וכן לירידה במסיסות החלבון.

יש ירידה במסיסות בגלל חשיפת האזורים ההידרופוביים לסביבה המימית (לפני הדנטורציה הם היו מופנים כלפי פנים). האזורים ההידרופוביים נצמדים זה לזה ושוקעים.

39
Q

טופולוגיה

A

פירוק המבנה לתת מבנה שלישוני (מצב ביניים בין מבנה שניוני לשלישוני ). יכול ללמד על תפקוד החלבון

40
Q

יצירת מבנה שלישוני

A

יצירת מבנה שלישוני גורמת לירידה קטנה בלבד באנרגיה של החלבון. מבנה מסודרת יותר= האנטרופיה יורדת, אך נוצרות יותר אינטרקציות בין ח”א.

המבנה השלישוני נבנה כך שקודם נוצרים ק. מימן וו.ד.ו ורק בסוף נוצר הקשר הקוולנטי S-S

41
Q

מה גורם לדנטורציה ?

A
  1. העלאת טמפ’-פירוק ק. מימן, מבנה שניוני ומעלה יפגע
  2. שינוי PH- שינוי במטען החלבון- פגיעה במבנה שניוני ומעלה
  3. ממסים אורגניים - שתנן =(אוריאה) וכוהל: משפיעים על אינטרקציות הידרופוביות. מבנה שניוני (אלפא הליקס) ומעלה יפגע.
  4. דטרגנטים - חומרים בעלי קצה הידרופובי וקצה הידרופילי (ולכן מחלישים אינטרציות הידרופוביות ואינטרציות הידרופיליות) כמו מתחלבים. פגיעה במבנה שניוני ומעלה.
  5. מרקפתואתנול - חומר שמחזר קשרי S-S ומפרק אותם. פוגע במבנה השלישוני ומעלה.
42
Q

מהי רנטורציה?

A

תהליך הפוך מדנטורציה, בו מבנה החלבון מתקפל בחזרה למבנה הנרטיבי (הטיבעי ) שלו.
בדרך כלל, דנטורציה מתאפשרת בתנאי מעבדה מיוחדים או אם החלבון לא עבר דנטורציה מלאה.

43
Q

מהו חלבון סוכך (צ’פרון)?

A

חלבון שמסייע למגוון רחב של חלבונים אחרים להתקפל למבנה מרחבי תקין (שניוני ושלישוני), תוך כדי ובסיום תהליך התרגום.

44
Q

הדנטורציה והרנטורציה הם תהליכים קואופרטיביים

A

ככל שניתקים הקשרים כך קל יותר להמשיך לנתק והתהליך מתגבר.

45
Q

מה ניתן להעריך על פי ידיעת רצף חומצות האמינו?

A
  1. מטען החלבון וPI
  2. להעריך מבנה שניוני
  3. חיזוי 2 תכונות חלבון: משקל מולקולרי ומיקום החלבון בתא (חלבון ממברנלי יהיה הידרופובי יותר וכו).
46
Q

מה ניתן לעשות באמצעות השוואה בין רצפי חלבונים?

A
  1. זיהוי אתרים חיוניים לפעילות החלבון

2. זיהוי פגם במחלות תורשתיות

47
Q

ריצוף חלבונים בשיטת אדמן

A

שלב 1: פירוק חלבון לח”א בודדות בסביבה חומצית (HCL או HOLC) וטמפ’ גבוהה. הפרדה במחליף יוניPHם: ניתן לדעת מה סוגי ח”א וכמה מהן יש.

שלב 2: נצמיד לחלבון הארוך את החומר FDNB בקצה האמיני ונפרק בסביבה חומצית. כך נוכל לדעת מי החומצה האמיני שהייתה בקצה האמיני של החלבון.

שלב 3: לוקחים את החלבון ומפרקים אותו למס’ מקטעים (בערך 20 ח”א בכל מקטע). נבצע פעולת פירוק שמפרקת קשר פפטידי ספציפי של ח”א שמחוברת לחומר Phenyl isothio-cyanate - פירוק בתנאים של חומצה חלשה. נבצע את הפעולה במשך 19-20 פעמים ונזהה את החומצה האמינית אחת אחת לפי אורך גל מסוים.

48
Q

מהם שלבי הפרדת החלבונים?

A
  1. קביעת ריכוז החלבון בתמיסה
  2. הפרדת חלבונים מחומרים מסיסים אחרים (כמו סוכרים ומלחים)- הפרדה על בסיס גודל: שיטת הדיאליזה.
  3. הפרדה בין קבוצות של חלבונים על פי: גודל, מטען, הבדלי מסיסות וקישור ספציפי.
49
Q

קביעת ריכוז החלבון בתמיסה : בליעת UV

A

אורך גל 205 ננומטר- באורך גל זה נבלע הקשר הפפטידי
אורך גל 280 ננומטר- באורך גל זה נבלעות טבעות ארומטיות

בליעה גדולה יותר- ריכוז גדול יותר
יתרונות השיטה:
*הבדיקה מהירה ונוחה , אינה מצריכה הכנת עקום כיול ואינה הורסת את החלבון.
חסרונות:
לכל חלבון קבוע בליעה שונה, ולכן מתאים לבדיקת כמות חלבון נקי ולא תערובת חלבונים. כמו כן, אסור שבתמיסה יהיו אלמנטים קולטי קרינה אחרים כמו חומצות גרעין.

50
Q

קביעת ריכוז החלבון בתמיסה- ראקציית ברדפורד

A

מתבססת על הגבת החלבון עם צבען בשם קומסי בלו. לקומסי בלו קבוצות סולפניות (SO-3) והן מגיבות עם שיירים טעונים חיובית בחלבון (ליזין, היסטדין וארגנין). הראקציה מלווה בשינוי צבע מחום לכחול, שעוצמתו נמדדת באורך גל שך 595 ננומטר.

51
Q

דיאליזה

A

שיטה להפרדה בין מקרומולקולות (כמו חלבונים) למיקרומולקולות (כמו מלחים). שקית הדיאליזה מורכבת ממברנה חצי חדירה (נקבים קטנים המונעים יציאת חלבונים מהשקית ומנגד מאפשרים יציאת מולקולות קטנות בקלות.
יש להחליף תמיסה חיצונית, לשמור על מפל ריכוזים גבוה ולהגביר את קצב הדיפוזיה התלוי בהפרש הריכוזים.

נפח מים גדול= מפל ריכוזים גדול

52
Q

salting in/out

A

שיטה שמאפשרת לשלוט במסיסיות החלבון כתלות בהוספת מלח

53
Q

salting in

A

הוספה של מעט מלח (אמוניום סולפאט) בנקודה האיזואלקטרית תגרום להגברת מסיסות החלבון. בPI יש משיכה בין מולקולות החלבון. המלח נצמד למטענים על גבי החלבון, מקטין את האינטרקציה בין מולקולות החלבון והמסיסות גדלה.

54
Q

salting out

השקעת חלבונים באמוניום סולפאט

A

הוספת הרבה מלח (אמוניום סולפאט) בPH השונה מהIP של החלבון תגרום לשקיעת החלבון ולהפרדתו מהתמיסה. יש תחרות בין המלח לחלבון עם מולקולות המים (מלח מסיס יותר מהחלבון ולכן החלבון ישקע).

55
Q

ניתן להפריד בין חלבונים על פי:

A

גודל
מטען
זיקת החלבון לסובסטרט

56
Q

כרומטוגרפיית עמוד (קולונה)

A

הפרדה על פי גודל/ מטען/זיקה.
פאזה נייחת (צמודה לקולונה)- מוצק עליו מריצים את הדוגמה
פאזה נעה- הממס בו מצויה הדוגמה.

חלק מהחלבונים עוברים מהר, חלק לאט וכך מפרידים.

57
Q

הפרדה על פי גודל- מסננת מולקולרית

A

קולנה המכילה פאזה קבועה המורכבת מגרגירי פולימר (חרוזים) המכיל נקבוביות.
החלבונים הגדולים יוצאים ראשונים.
חלבונים קטנים- נכנסים דרך החריצים ולכן הדרך שלהם ארוכה יותר.

58
Q

הפרדה על פי מטען- מחליפי יונים

A

מה שלא נקשר לפאזה הנייחת, יוצא מהקולונה
מחליף אניונים- קושר אניונים
מחליף קטיונים- קושר קטיונים

59
Q

איך משחררים חלבונים שנקשרו למחליף יונים?

A
  1. הוספת מלח

2. שטיפה שתמיסה עם PH שונה- מה שישנה את המטען על החלבון ויגרום לחלבון לצאת.

60
Q

הפרדה בין חלבונים שונים עפי זיקה - אפיניות

A

תנערובת חלבונים מוטענת על עמודה , הבנויה שרף, אליו קשורות בקשר קוולנטי מולקולות ליגנד, האופייני לחלבון המסוים אותו רוצים להפריד מתוך התערובת.

כיצד נשחרר את החלבון מהעמודה ? נשפוך נוזל של ליגנד חופשי והחלבון יקשר לליגנד החופשי במקום לליגנד על השרף ויזרום החוצה.
הפרדה זו ספציפית יותר מהפרדת מטען.

61
Q

אלקטרופורזה בג’ל נטיבי

A

נטיבי= שומר על מבנה החלבון
שיטה להפרדת חלבונים בג’ל מצולב (פוליאקרילאמיד). הפרדה גם לפי גודל וגם לפי מטען. הג’ל חייב להיות אינרטי (שהחומר/החלבון לא יקשר לגל).

מטינים תערובת חלבונים לבארית ומפעילים שדה חשמלי חיובי כלפי מטה (רק חלבונים שליליים ינועו).
לרוב, אם נרצה הפרדה מדויקת- לא נשתמש בשיטה הזו.
ככל שהג’ל יהיה צפוף יותר, לחלבונים קשה יותר לנוע בתוכו.

62
Q

אלקטרופורזה מסוג SDS PAGE

NON NATIVE

A

ההפרדה היא של חלבון שעבר דנטורציה ע”י חימום ודטרגנט SDS( שפותח את החלבון עד למבנה השניוני ועוטף אותו במטען שלילי).
הפרדה על פי גודל
SDS עם המטען השלילי נספח לחלבון ביחס למס’ ח”א בערך של 1:1.

63
Q

מיקוד איזואלקטרי

A

שיטה המבוססת על אלקטרופורזה של חלבונים למציאת הנקודה האיזואלקטרית.
גרדיאנט= סביבה בה הPH משתנה (0-14)
ג’ל נטיבי עם גרדיאנט
כל חלבון עוצר בPI שלו

64
Q

אלקטרופורזה דו מימדית

A

שיטה להפרדת חלבונים בשני מימדים ועל פי 2 תכונות: המסה והנקודה האיזואלקטרית.
קודם עושים מיקוד איזואלקטרי עם גל נטיבי.
אחר כך נטבלת הרצועה בSDS ומונחת על גל פוליאקרילאמיד עם SDS . מטען חשמלי מופעל וכעת החלבונים מופרדים לפי המסה.