Wykład 8 Flashcards

1
Q

Jaką część wszystkich białek komórkowych szacuje się zaangażowaną w dowolnym stopniu w błony komórkowe?

A

Większość białek w komórce jest w pewnym stopniu związana z błonami.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
2
Q

Jaki procent białek stanowią białka integralne błon?

A

Około 20–30% wszystkich białek to białka integralne błonowe.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
3
Q

Ile procent białek komórki ma przyłączoną kotwicę GPI?

A

Zaledwie około 0,5% białek komórkowych jest zakotwiczonych do błony przez GPI.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
4
Q

Jaką część celów terapeutycznych stanowią białka błonowe?

A

Ponad 60% wszystkich zatwierdzonych celów terapeutycznych to białka błonowe.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
5
Q

Spośród błonowych celów terapeutycznych, jaki procent to receptory związane z białkami G?

A

Ponad 50% błonowych celów to receptory sprzężone z białkami G (GPCR).

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
6
Q

Czym są receptory błonowe i jakie cechy je wyróżniają?

A

Są to białka integralne (lub trwale zakotwiczone w błonie) odpowiedzialne za odbiór i przekaz sygnałów z zewnątrz do wnętrza komórki. Ich aktywność może być modulowana przez lipidy oraz stan fizykochemiczny dwuwarstwy.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
7
Q

Jakie cztery główne klasy receptorów błonowych wyróżnia się w klasyfikacji funkcjonalnej?

A

Bezpośrednio związane z kanałem jonowym, sprzężone z białkiemG (GPCR), z kinazą tyrozynową lub serynowo‑treoninową (RTK/RSK) oraz wewnątrzkomórkowe (np. receptory jądrowe).

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
8
Q

Jakie różnice w efekcie i czasie reakcji mają poszczególne klasy receptorów błonowych?

A

Kanały jonowe – bezpośredni efekt, odpowiedź w milisekundach; GPCR – przez białkoG i ewentualnie enzym, odpowiedź w sekundach; RTK/KS‑T – najczęściej bezpośrednio, odpowiedź w minutach; receptory wewnątrzkomórkowe – przez zmianę transkrypcji, odpowiedź w godzinach.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
9
Q

Co to są receptory kinazy tyrozynowej (RTK) i jak przebiega ich aktywacja?

A

Białka transbłonowe z pojedynczą helisą TM i domeną kinazy cytoplazmatycznej. Aktywacja wymaga dimeryzacji: ligandy PDGF tworzą pre‑dimer, EGF odsłania miejsce dimeryzacji, insulina indukuje zmianę konformacyjną już istniejącego dimeru, FGF–dimer stabilizowany przez heparan.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
10
Q

Jak PDGF, EGF, insulina i FGF różnią się mechanizmem dimeryzacji RTK?

A

PDGF: ligand jest dimerem i przyciąga dwa monomery; EGF: pojedyncze cząsteczki wiążą receptor i odsłaniają miejsce dimeryzacji; insulina: receptor wstępnie dimerowy, ligand indukuje przesunięcie konformacyjne; FGF: wymagane dwie cząsteczki FGF i heparan do stabilizacji dimeru.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
11
Q

Czym charakteryzuje się rodzina receptorów ErbB i jak wpływa ich dimeryzacja na sygnalizację?

A

Rodzina ErbB (HER1–HER4) wiąże różne ligandy (EGF, HB‑EGF, NRG). Mogą tworzyć homo‑ lub heterodimery, a kombinacja receptorów determinuje aktywację szlaków: RAS/RAF/MEK/ERK (proliferacja), PI3K/AKT/mTOR (przeżycie), JAK/STAT (angiogeneza), PLCγ/PKC (metastaza).

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
12
Q

Jak zbudowany jest receptor EGFR i jak zmienia się jego struktura przy aktywacji?

A

EGFR ma cztery zewnętrzne domeny (L1–CR–L2–CR2), jedną helisę TM i domenę kinazy wewnątrzkomórkowo. W spoczynku jest monomerem w „złożonej” konformacji; po przyłączeniu EGF odsłania się interfejs dimeryzacyjny, tworzy asymetryczny dimer kinazowy i aktywuje domenę enzymatyczną.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
13
Q

Co to jest asymetryczny dimer kinazowy w EGFR i dlaczego jest ważny?

A

To dimer, gdzie jedna domena kinazy („donor”) aktywuje drugą („akceptor”) przez specyficzny interfejs helis i pętli β. Mechanizm transaktywacji wzmacnia sygnał kinazy i umożliwia precyzyjną kontrolę aktywności enzymatycznej.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
14
Q

Dlaczego helisy transbłonowe RTK oddziałują ze sobą i jak to wpływa na sygnalizację?

A

Helisy TM mogą tworzyć homotypowe interakcje (motyw GxxxG), stabilizując dimer i przekazując zmianę konformacyjną z domeny zewnątrzkomórkowej do domeny kinazy, co reguluje aktywność enzymatyczną.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
15
Q

Gdzie znajduje się domena kinazowa RTK i jakie znaczenie ma jej lokalizacja?

A

Zawsze po stronie cytoplazmatycznej, co umożliwia fosforylację białek adaptorowych i efektorowych w cytosolu. Bliskość błony pozwala na szybkie przekazywanie sygnału do szlaków cytosolowych i jądrowych.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
16
Q

Jak nadekspresja lub mutacje RTK przyczyniają się do procesów nowotworowych?

A

Nadmierna dimeryzacja lub mutacje prowadzą do konstytutywnej aktywacji szlaków proliferacji i przeżycia, sprzyjając transformacji nowotworowej. Terapie przeciw nowotworom wykorzystują inhibitory kinazowe lub przeciwciała blokujące dimeryzację.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
17
Q

Jakie strategie terapeutyczne wykorzystują wiedzę o strukturze i aktywacji EGFR?

A

Monoklonalne przeciwciała blokujące domenę ligandową lub dimeryzację (np. cetuksymab), małe inhibitory kinazy (TKI) wiążące domenę ATP (np. gefitynib, erlotynib), leki allosteryczne zakłócające interfejs asymetrycznego dimera.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
18
Q

Jak receptor EGFR inicjuje przekazywanie sygnału wewnątrz komórki po związaniu EGF?

A

Po związaniu EGF z zewnętrzną domeną receptora następuje odsłonięcie interfejsu dimeryzacji, utworzenie asymetrycznego dimeru kinazowego (jedna domena aktywuje drugą przez bezpośredni interfejs), a następnie autofosforylacja reszt tyrozynowych w ogonie cytoplazmatycznym, co tworzy miejsca wiążące białka adaptorowe (Grb2, PI3K, PLCγ).

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
19
Q

W jaki sposób powstaje asymetryczny dimer domeny kinazowej EGFR i dlaczego jest on ważny?

A

Asymetryczny dimer tworzy się, gdy jedna domena kinazy („donor”) wiąże się z drugą („akceptor”), zmieniając jej konformację na aktywną. Pozwala to na precyzyjną transaktywację kinazową, ograniczając samorzutną aktywność i zapewniając wzmocnienie sygnału tylko po prawidłowej dimeryzacji.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
20
Q

Jakie główne szlaki efektorowe uruchamia fosforylowany EGFR i jakie reakcje komórkowe wywołują?

A

– RAS→RAF→MEK→ERK: proliferacja– PI3K→PIP₃→PDK1→AKT→mTOR: przeżycie, zahamowanie apoptozy– JAK→STAT: regulacja transkrypcji, angiogeneza– PLCγ→DAG→PKC: migracja, inwazja

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
21
Q

Jak rolę w sygnalizacji EGFR pełnią fosfatydyloinozytole (PIP₂ i PIP₃) oraz fosfataza PTEN?

A

Po aktywacji EGFR PI3K przekształca PIP₂ w PIP₃, co przyciąga PDK1 i AKT do błony, inicjując szlak przeżycia. PTEN deponuje PIP₃ do PIP₂, ograniczając sygnał AKT i pełniąc funkcję hamującą tumorogenezę przez negatywne sprzężenie zwrotne szlaku PI3K/AKT.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
22
Q

Co oznacza pojęcie „próg pobudliwości” i dlaczego pojedynczy receptor nie wystarcza do wywołania odpowiedzi?

A

Każda kaskada zawiera mechanizmy autoregulacji i sprzężeń zwrotnych: sygnał musi przekroczyć minimalną amplitudę i czas trwania, by zmienić stan komórki. Pojedynczy receptor daje lokalną aktywację, ale bez skumulowania (amplifikacji) i utrzymania sygnału kaskada zostaje wygaszona.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
23
Q

Jak amplifikacja sygnału w kaskadzie EGFR wpływa na odpowiedź komórki?

A

Związanie niewielkiej liczby ligandów prowadzi do rekrutacji wielu cząsteczek efektorowych na fosforylowane reszty tyrozynowe, co nasila sygnał. Amplifikacja umożliwia szybkie i rozległe pobudzenie komórki, ale dzięki pętlom zwrotnym sygnał zostaje wygaszony, jeśli nie utrzyma się odpowiednia intensywność i czas trwania.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
24
Q

W jaki sposób lipidy błonowe (cholesterol, fosfatydylocholina) modulują aktywność EGFR?

A

Domeny bogate w cholesterol (SM) i fosfatydylocholinę tworzą mikrośrodowiska, w których receptory EGFR są odseparowane i stabilizowane w nieaktywnych konfiguracjach. Zapobiega to spontanicznej dimeryzacji i nadmiernej aktywacji kinazy w warunkach bazowych.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
25
Jak gangliozyd GM3 wpływa na aktywność kinazową EGFR?
GM3 wiąże się bezpośrednio z ectodomeną EGFR w błonie, blokując ruchy konformacyjne wymagane do dimeru kinazowego. Powoduje to allosteryczne hamowanie autofosforylacji i ograniczenie sygnalizacji proliferacyjnej.
26
Czym różni się rekombinantny wariant EGFRvIII od pełnej formy EGFR i jakie ma to skutki?
EGFRvIII ma usuniętą część domeny zewnątrzkomórkowej (fragment „bra k”), co powoduje konstytutywną aktywność miejsca efektorowego niezależnie od liganda. Skutkuje to ciągłą fosforylacją i silnym pobudzeniem szlaków proliferacji i przeżycia.
27
W jakich nowotworach najczęściej występuje mutacja EGFRvIII i z jaką częstością?
Najwyższa częstość EGFRvIII jest w raku gruczołu krokowego (100%), rdzeniaku (86%), raku piersi wewnątrzprzewodowym (78%) i jajnika (75%); w glejakach u dzieci ~66%, raku żołądka ~61%, NSCLC ~16%.
28
Jak zmienia się liczba receptorów EGFR w komórkach nowotworowych w porównaniu ze zdrowymi?
Normalna komórka ma ok. 10⁵ receptorów EGFR; komórki rakowe mogą wyrażać ich nawet 200‑krotnie więcej, co nasila odbiór ligandów i ryzyko spontanicznej dimeryzacji.
29
Jakie grupy leków celują w EGFR i jakie mechanizmy działania stosują wybrane przykłady?
– Przeciwciała monoklonalne (…umab/…nab): blokują wiązanie liganda (cetuximab), uniemożliwiają dimeryzację (pertuzumab), wiążą HER2 (trastuzumab).– Małe inhibitory kinazy (…nib): blokują miejsce ATP w domenie kinazowej (erlotinib, gefitinib, lapatinib).– Inhibitory Hsp90 (17‑AAG): destabilizują EGFR, prowadząc do jego degradacji.
30
Jak rozpoznaje się w nomenklaturze leki celujące w receptory błonowe EGFR?
Przeciwciała monoklonalne kończą się zwykle na „‑nab” lub „‑zumab” (humanizowane), natomiast małe inhibitory kinaz kończą się na „‑nib”, co odzwierciedla ich zdolność przenikania przez dwuwarstwę lipidową.
31
W jaki sposób domena MBD (Membrane‑Binding Domain) EGFR uczestniczy w interakcjach z efektorami?
MBD stanowi dodatkowe miejsce bezpośredniego wiązania białek adaptorowych (np. Grb2) niezależne od fosfotyrozyn, co zwiększa różnorodność i efektywność rekrutacji sygnałowej.
32
Dlaczego mechanizmy sprzężeń zwrotnych w kaskadzie EGFR są kluczowe dla kontroli intensywności sygnału?
Dodatnie sprzężenia (amplifikacja) nasilają sygnał, ale ujemne sprzężenia (degradacja receptorów, aktywacja fosfataz takich jak PTEN, wewnętrzna internalizacja) zapobiegają nadmiernej i niekontrolowanej proliferacji, chroniąc komórkę przed transformacją nowotworową.
33
Co wyróżnia receptor insulinowy spośród innych receptorów kinazy tyrozynowej?
Jest to kowalencyjnie związany homodimer już w stanie nieaktywnym; dwie podjednostki łączą się na stałe na powierzchni komórki, co odróżnia go od typowych RTK, które dimeryzują dopiero po związaniu liganda.
34
Jak zmienia się konformacja receptoru insulinowego po przyłączeniu insuliny i jaki to ma skutek?
Ligand indukuje przejście z konformacji U („unbound”) do konformacji T („T‑shaped”), co zbliża domeny kinazowe i sprzyja ich autofosforylacji, inicjując sygnalizację.
35
Jaką rolę pełnią dodatkowe, słabo wiążące miejsca ligandowe w receptorze insulinowym?
Mogą wiązać insulinę niższym powinowactwem, co działa jak regulacja negatywna – redukują aktywność już aktywnego receptora, zapobiegając nadmiernej sygnalizacji.
36
W jaki sposób ograniczona ekspresja białka MPP1 zakłóca sygnalizację przez receptor insulinowy?
Niedobór MPP1 zaburza organizację tratw lipidowych, co ogranicza wymianę GDP→GTP białka H‑Ras i jego interakcję z Raf; w efekcie kaskada Raf→MEK→ERK jest słabiej aktywowana.
37
Jaka jest funkcja MPP1 w kontekście struktur błonowych i propagacji sygnału?
MPP1 stabilizuje mikrotrawki lipidowe (rafty), umożliwiając koncentrację receptorów i białek sygnałowych w tych mikrodomenach; dzięki temu sygnalizacja przez EGFR czy IR jest wydajna i precyzyjnie regulowana.
38
Jakie modyfikacje lipidowe umożliwiają kotwiczenie Ras w błonie komórkowej?
Na końcu C‑terminalnym Ras ma resztę farnezylową (15‑węglowy łańcuch) oraz palmitoilowe łańcuchy (1 u N‑Ras, 2 u H‑Ras). K‑Ras zamiast palmitoilowania posiada obszar zasadowy (poli-Lys).
39
Dlaczego obszar zasadowy w K‑Ras jest ważny dla jego lokalizacji i aktywności?
Poli‑lizynowy region oddziałuje elektrostatycznie z ujemnie naładowanymi fosfolipidami (np. fosfatydyloinozytolem) w błonie, co stabilizuje przyłączenie K‑Ras i wspomaga rekrutację efektorów.
40
W jaki sposób farnezylacja i palmitoilacja wpływają na różnice między izoformami Ras?
Farnezylacja jest niezbędna do początkowego osadzenia wewnątrzbłonowego; palmitoilacja dodatkowo wzmacnia osadzenie i może kierować isoformy (H‑ vs. N‑Ras) do odmiennych mikrodomen błonowych, modulując interakcje z efektorami.
41
Co to są receptory GPCR i jaka jest ich podstawowa topologia w błonie?
To receptory sprzężone z białkiem G (G‑protein Coupled Receptors) z jednym łańcuchem polipeptydowym, który siedmiokrotnie przechodzi przez błonę (7TM helis).
42
Jak są zorientowane końce łańcucha GPCR względem komórki?
Końcówka N‑terminus znajduje się na zewnątrz komórki, gdzie wiąże ligand; C‑terminus jest po wewnętrznej stronie, gdzie wiąże białko G i ulegają modyfikacjom (fosforylacja).
43
Ile pętli zewnątrzkomórkowych i wewnątrzkomórkowych tworzy GPCR i jaka jest ich funkcja?
GPCR tworzy trzy pętle zewnątrzkomórkowe (EL1–EL3), które uczestniczą w rozpoznawaniu ligandów, oraz trzy pętle wewnątrzkomórkowe (IL1–IL3), które przenoszą sygnał na białko G i ulegają regulacji przez kinazy.
44
Jaka jest rola helis transbłonowych w GPCR poza utrzymywaniem struktury?
Helisy TM układają się w specyficzną wiązkę tworząc miejsc wiązania ligandów małocząsteczkowych, a po przyłączeniu liganda zmieniają ułożenie względem siebie, inicjując konformacyjne zmiany umożliwiające interakcję z białkiem G po stronie cytoplazmatycznej.
45
Dlaczego modyfikacje lipidowe i stan dwuwarstwy błonowej są istotne dla działania GPCR i Ras?
Lipidy (cholesterol, sfingolipidy) i ich organizacja w raftach decydują o rozmieszczeniu i grupowaniu GPCR czy Ras; odpowiednie środowisko lipidowe wspiera stabilne interakcje z białkami sygnałowymi oraz zapewnia precyzyjną regulację aktywacji i wygaszania sygnału.
46
Jakie znaczenie ma dynamiczne przemieszczanie się GPCR pomiędzy mikrotrawami a pozostałą błoną w kontekście sygnalizacji?
Przesuwanie pomiędzy raftami a nie‑raftami reguluje dostępność receptorów do określonych efektorów i kinaz, wpływając na siłę i czas trwania sygnału; może też kierować receptory do internalizacji lub degradacji, co stanowi mechanizm negatywnej regulacji.
47
Na czym polega aktywacja klasycznego GPCR i jakie zmiany zachodzą w białku G?
Ligand wiąże GPCR → wymiana GDP na GTP w podjednostce Gα → Gα–GTP oddysocjowuje się od receptora i od podjednostki βγ → obie części aktywują efektory (np. cyklazę adenylanową) → sygnał trwa, dopóki Gα nie zhydrolizuje GTP do GDP, co jest wspomagane przez białka RGS.
48
Jakie modyfikacje lipidowe umożliwiają kotwiczenie podjednostek Gα i Gγ w błonie?
Gα jest palmitoilowana (jedna lub więcej reszt kwasu palmitynowego) natomiast Gγ jest izoprenylowana na końcu C‑terminus (np. farnezylacja lub geranylogeranylog) i dodatkowo często amidowana; umożliwia to stabilne osadzenie obydwu podjednostek w dwuwarstwie.
49
Co się dzieje po oddysocjowaniu liganda od GPCR?
Receptor może zostać poddany desensytyzacji (fosforylacja, β-arrestyna) lub internalizacji, natomiast uruchomiony sygnał przez G‑proteinę trwa autonomicznie do momentu hydrolizy GTP w Gα.
50
Jakie główne podklasy GPCR wyróżnia się ze względu na typ ligandów i mechanizm aktywacji helis TM?
– A (rhodopsin-like): aminy, nukleotydy, eikozanoidy (EL1–EL3 wiążą ligand).– B (secretin-like): peptydowe hormony (LH, FSH, TSH).– C (metabotropic glutamate/GABA): duże ligandy, wymagana dimerizacja.– D (proteazy/ PAR): aktywowane przez proteolizę N-końca.– E (glycoprotein hormones): wymagają oddzielnych łańcuchów.– F (Wnt/Frizzled): lipidy.
51
Co robią fosfolipazy A, a jakie produkty powstają w wyniku ich działania?
Fosfolipaza A1 i A2 odcina jeden z łańcuchów kwasów tłuszczowych z glicerofosfolipidu, tworząc lizofosfolipid i wolny kwas tłuszczowy (np. arachidonowy), który może być prekursorem eikozanoidów.
52
Jak działa fosfolipaza C (PLC) i jakie są jej główne domeny funkcjonalne?
PLC rozcina wiązanie estrowe między glicerolem a resztą fosforanową w PI(4,5)P₂ → powstaje DAG (lipofilna końcówka) i IP₃ (główka polarna). Ma domenę PH specyficznie wiążącą PI(4,5)P₂ (silniej IP₃ niż PI(4,5)P₂) oraz katalityczną C2/EF do hydrolizy.
53
Jaki jest efekt biologiczny DAG i IP₃, powstałych z PI(4,5)P₂ przez PLC?
IP₃ wiąże się z receptorem w ER → uwalnia Ca²⁺ do cytosolu → aktywacja kinaz zależnych od Ca²⁺. DAG pozostaje w błonie, aktywuje PKC, które fosforyluje białka docelowe.
54
Co wytwarza fosfolipaza D (PLD) i jaka jest specyfika jej aktywności?
PLD odcina główkę polarnej grupy (np. cholinową) od fosfatydylocholiny → powstaje fosfatydowy kwas (PA) i uwolniona cholina. PA może być przekształcany do DAG lub pełnić funkcję sygnałową samodzielnie.
55
Dlaczego rola lipidów i mikro‑domen („raftów”) jest kluczowa dla GPCR, Ras i RTK?
Rafty bogate w cholesterol i sfingolipidy koncentrują receptory, białka G, Ras i efektory w wydzielonych obszarach błony, zwiększając lokalną efektywność interakcji, precyzując sygnalizację i regulując internalizację oraz wygaszanie sygnału.
56
Jak można eksperymentalnie śledzić aktywację GPCR i jego oddziaływanie z G‑proteiną?
– FRET/BRET między etykietami na GPCR i Gα/βγ.– Pomiar wymiany nukleotydu przy użyciu fluorescentnych analogów GTP.– Assay cyklazy adenylanowej (cAMP) lub fosfolipaz (IP₃, DAG).– Mutacje blokujące modyfikacje lipidowe, obserwując zmianę lokalizacji i sygnalizacji.
57
Jakie domeny PKC odpowiadają za wiązanie jonów wapnia oraz diacyloglicerolu i jakie mają powinowactwo?
Domena C2 ma niskie powinowactwo do Ca²⁺ i umożliwia przyciągnięcie kinazy do błony, natomiast domena C1 silnie wiąże DAG, stabilizując PKC w dwuwarstwie lipidowej.
58
Co powoduje aktywację PKC po połączeniu z błoną?
Po związaniu Ca²⁺ z C2 i DAG z C1 uwalnia się autoinhibujący pseudosubstrat w N‑końcu, odsłaniając pętlę aktywacyjną, w której PDK1 fosforyluje PKC w motywie aktywacyjnym. Następnie PKC autophosphoryluje motyw hydrofobowy i turn‑motif, co stabilizuje jego aktywną konformację.
59
Jak PKC przekazuje sygnał dalej i jakie czynniki modulują jego dezaktywację?
Po aktywacji PKC in vivo wiąże DAG i Ca²⁺, co prowadzi do fosforylacji substratów („downstream signalling”). Dezaktywacja następuje przez fosfatazy usuwające reszty fosforanowe, a nieaktywny PKC jest stabilizowany przez białka opiekuńcze (np. Hsp70), które przygotowują go do ponownej fosforylacji i zakotwiczenia w cytoszkielecie.
60
Co to jest szlak PI3K–Akt i jakie pełni funkcje w komórce?
To kaskada, w której aktywowany receptor lub GPCR uruchamia PI3K, syntetyzując PI(3,4,5)P₃ z PI(4,5)P₂. PI(3,4,5)P₃ rekrutuje Akt do błony, gdzie jest fosforylowany, co prowadzi do wzrostu, proliferacji, migracji, angiogenezy i przeżycia komórki. Szlak jest wysoko konserwowany i występuje we wszystkich eukariotycznych komórkach.
61
Jak Akt (PKB) jest rekrutowany do błony i które jego reszty ulegają ekspozycji i fosforylacji?
Akt jest przyciągany do błony przez domenę PH, która specyficznie wiąże PI(3,4,5)P₃. To powoduje konformacyjne odsłonięcie Thr³⁰⁸ w domenie kinazowej i Ser⁴⁷³ w C‑końcu, które są fosforylowane przez PDK1 (Thr³⁰⁸) i mTORC2 (Ser⁴⁷³), w pełni aktywując kinazę.
62
Co się dzieje z Akt, gdy spada poziom PI(3,4,5)P₃ w błonie?
Przy obniżeniu PI(3,4,5)P₃ domena PH traci swoje ligandy, co prowadzi do defosforylacji Thr³⁰⁸ i Ser⁴⁷³ przez fosfatazy, a Akt wraca do konformacji nieaktywnej w cytosolu.
63
Czym są fosfatydyloinozytole (PI) i dlaczego występują w bardzo niskich stężeniach w komórce?
To lipidy sygnałowe z główką inozytolu i różnie fosforylowanymi grupami (PIP, PIP₂, PIP₃). Ich metabolizm jest ściśle skorelowany ze stanem fizjologicznym, a niskie stężenie wynika z tego, że są aktywnymi, krótkotrwałymi mediatorami przekazu sygnału.
64
Jaka jest typowa reszta kwasu tłuszczowego w pozycji sn‑2 fosfatydyloinozytolu?
W pozycji sn‑2 zwykle występuje reszta kwasu arachidonowego (20:4), co pozwala na dalszą syntezę eikozanoidów, natomiast w sn‑1 są nasycone łańcuchy, np. stearynian (18:0).
65
Jak różni się skład PI w zależności od tkanki lub organizmu?
Stosunek poszczególnych izomerów PI, PI(4)P, PI(4,5)P₂, PI(3,4,5)P₃ i długość łańcuchów kwasów tłuszczowych zmienia się w zależności od tkanki (np. mózg vs wątroba) oraz gatunku – odzwierciedla to specyficzne zapotrzebowanie na sygnalizację lipidową.
66
Jaką rolę pełni PTEN w regulacji poziomu PI(3,4,5)P₃?
PTEN to fosfataza usuwająca ładunek z PI(3,4,5)P₃, przekształcając je w PI(4,5)P₂. Negatywnie reguluje szlak PI3K–Akt, pełniąc funkcję supresora nowotworzenia przez ograniczenie nadmiernej aktywacji Akt.
67
Co charakteryzuje fosfatydyloinozytole jako lipidy sygnałowe pod względem ładunku i stężenia w komórce?
Są to silnie ujemnie naładowane cząsteczki (wypadkowy ładunek od –2 do –7), występujące w bardzo niskich stężeniach, ponieważ pełnią rolę krótkotrwałych mediatorów sygnałowych, a nie głównych składników błony.
68
Jakie domeny białkowe rozpoznają poszczególne fosfatydyloinozytole i czym się różnią pod względem specyficzności?
– PH: wiąże głównie PI(4,5)P₂ lub PI(3,4,5)P₃ bardzo specyficznie (kieszeń)– PX/FYVE: rozpoznają PI3P i PI3,5P₂ (Zn‑palec)– C1: wiąże DAG i fosforolestery– C2: niskie powinowactwo do Ca²⁺, wiąże zużyte produkty sygnału– PROPPIN/ENTH/ANTH: o średniej specyficzności, często wielofunkcyjne i wiążą różne PI lub inne lipidy błonowe.
69
W jakim stopniu oddziaływanie domen lipid‑wiązących zależy od charakteru ładunku, a w jakim od kształtu kieszeni białkowej?
Większość domen nie ogranicza się do prostego wiązania jonowego; dobrze zdefiniowane „kieszenie” w PH, PX czy FYVE nadają wysoką specyficzność geometrią i hydrofobowymi interakcjami. Miejsca powierzchniowe (np. ANTH, BAR) wiążą lipidy z niższą specyficznością, lecz umożliwiają rozpoznanie cech membrany.
70
Jak współdziałanie kilku domen w jednym białku zwiększa efektywność wiązania lipidów?
– Tandemowe/domtyczne: dimerizacja lub kolejność domen w tandemie tworzy wielopunktowe interakcje (wzmacnia powinowactwo)– Multidomenowość: jednoczesne rozpoznawanie różnych PI i białek prze­błonowych zwiększa selektywność– Multifunkcjonalność domen: np. PH może łączyć PI i białko, BAR rozpoznaje krzywiznę i lipidy.
71
W jaki sposób kontekst lipidowy (sąsiedztwo innych lipidów, jony, cholesterol) moduluje wiązanie PI przez białka?
– Ładunek wypadkowy PI zależy od sąsiedztwa np. PE zmienia pKa grup aminowych PA i wpływa na wiązanie– Jony chaotropowe eliminują wiązania wodorowe, obniżając afin­ity– Dwu‑ i wielowartościowe kationy (Ca²⁺, Mg²⁺) klastrowanie lipidów o ładunku niezerowym– Cholesterol zmienia konformację główek polar­nych glikolipidów, wpływając na ekspozycję i dostępność.
72
Co to są mikro­domeny lipidowe (rafty) i jaki mają wpływ na sygnałowanie PI i białek z domenami wiążącymi lipidy?
Rafty – wzbogacone w cholesterol i sfingolipidy regiony błony – koncentrują PI, kinazy i domeny PH/PX/FYVE, zwiększając lokalne stężenie ligandów i receptorów. Umożliwia to szybsze i bardziej precyzyjne przekazywanie sygnału oraz segregację receptorów do internalizacji lub degradacji.
73
Jak modulacja GM1 przez cholesterol wpływa na kapacytację plemników i interakcję z białkami osłony przejrzystej?
W plemnikach o wysokiej zawartości steroli GM1 jest „ukryty” i niemożliwy do rozpoznania przez białka lec­tyny. Podczas transportu do jajowodu spada cholesterol, co zmienia konformację główki GM1 i uwalnia ją ze SVS2. Ekspozycja GM1 umożliwia wiązanie do białek błony komórkowej komórki jajowej, co jest kluczowe dla przyłączenia do osłony przejrzystej.
74
Dlaczego fosfatydyloinozytole mogą mieć różne długości i stopnie nasycenia łańcuchów tłuszczowych, i jakie to ma znaczenie?
W pozycji sn‑1 zazwyczaj nasycone (np. stearynian), w sn‑2 – kwas arachidonowy (20:4) – prekursory eikozanoidów. Różnorodność długości i nasycenia wpływa na lepkość błony, selektywność oddziaływania z białkami i szybkość przekształcania w drugie przekaźniki.
75
Jak PTEN reguluje sygnałowanie przez PI(3,4,5)P₃ i dlaczego jest określany supresorem nowotworowym?
PTEN defosforyluje PI(3,4,5)P₃ do PI(4,5)P₂, ograniczając rekrutację Akt przez jego domenę PH i wyciszając ścieżkę PI3K–Akt. Dzięki temu hamuje proliferację i przeżycie komórek – mutacje lub utrata PTEN prowadzą do nadmiernej aktywacji Akt i sprzyjają transformacji nowotworowej.
76
Jak różne domeny PH mogą się różnić między białkami pod względem powinowactwa i specyficzności do PI(3,4,5)P₃?
Nawet te same typy domen (np. PH) w różnych białkach mają różne „kieszenie” o odmiennych resztach aminokwasowych, co zmienia oddziaływanie z fosforami inozytolu i resztami tłuszczowymi. Niektóre PH wymagają wzmocnienia dwuwymiarowego przez rafty, inne są wysoce specyficzne (> nanomolar), a jeszcze inne działają bardziej promis‑sively.
77
W jaki sposób można doświadczalnie badać wiązanie domen PH/PX/FYVE z PI w błonie?
– SPR (surface plasmon resonance) z naniesioną PI na liposomy– FRET między domeną powiązaną z fluoroforem a rodaminowanym PI– Pęcherzyki lipidowe z różnym składem lipidów i pomiar wiązania białka– Mutageneza reszt kluczowych dla interakcji i ocena zmian afin­ity przez ITC (kalorymetria izotermalna) lub cosedimentation assay z pęcherzykami.
78
Dlaczego siła wiązania domen lipidowych może być kooperatywna i jak to poprawia sygnałowanie?
Kooperatywne wiązanie (dimerizacja domen lub wielopodstawowe interakcje) prowadzi do ostrego progu pobudzenia: przy niskim stężeniu PI wiązanie jest słabe, ale po przekroczeniu progu następuje gwałtowne oligomeryzowanie białek na błonie, co wzmacnia sygnał i zapewnia wyraźną odpowiedź komórkową, zapobiegając „szumowi” przy niskiej aktywności kinaz.
79
Jak kontekst membranowy i zmiany lokalnego składu lipidów decydują o kierunku przekazywania sygnału i jego wygaśnięciu?
Lokalna konwersja PI(4,5)P₂ do DAG/IP₃ lub PI(3,4,5)P₃ oraz rekrutacja asymetrycznych kinaz/fosfataz tworzy strefy aktywacji. Następnie internalizacja receptorów lub fosfataz (PTEN, SHIP) w tych strefach wygasza lokalny sygnał. Zmiana chizo‑ and raftów, klastrowanie lipidów przez Ca²⁺/Mg²⁺ oraz modyfikacje główek lipidowych przez cholesterols i PE modulują zarówno propagację, jak i wygaszanie.