Maturation des ARNm Flashcards

Auteur: Miriam Loulou Réviseur: Diana

1
Q

Qu’est ce qui explique que les ARNm doivent être maturés chez les eucaryotes et non les procaryotes?

A

Eucaryotes: info génétique morcelée (exons-introns). Pré-ARnm doit être maturé.

Procaryotes: info des gènes est continue (juste exons)

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2
Q

Où se passe la transcription et la traduction chez les procaryotes?

A

dans le cytoplasme

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3
Q

Où se passe la transcription, la maturation et la traduction chez les eucaryotes?

A

Transcription et maturation: Noyau

Traduction: Cytoplasme

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4
Q

En quoi est ce que le devenir des ARN primaires des procaryotes et eucaryotes est différent?

A

Procaryotes: plusieurs protéines peuvent être codés par un ARNm polycistronique (opéron)

Eucaryotes: 1 ARNm après épissage = 1 Protéine (mais plusieurs isoformes possibles si épissage alternatif)

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5
Q

Quelles sont les 3 étapes de la maturation des pré-ARNm chez les eucaryotes?

A
  1. Addition de la coiffe au bout 5’
  2. Épissage des introns
  3. Polyadénylation (ajout de A au bout 3’)
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6
Q

Vrai ou Faux.

La maturation chez les eucaryotes ne débutent qu’à la fin de la transcription.

A

Faux.

Transcription et maturation se font de façon simultanée dans le noyau

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7
Q

Quel est un autre rôle de l’ARN polymérase autre que son rôle dans la transcription?

A

Il recrute des protéines impliquées dans la maturation de l’ARN via sa queue hyperphosphorylée

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8
Q

En quoi consiste l’addition de la coiffe en 5’ et à quel moment arrive-t-elle?

A

Addition de coiffe 7-méthyl guanosine à l’extrémité 5’ du pré-ARNm quand il atteint 25 nucléotidques

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9
Q

Quelle caractéristique explique la résistance de l’ARN qu’ajoute la coiffe en 5’?

A

Liaison 5’ vers 5’ inhabituelle au début de l’ARN le rend plus résistent aux nucléases qui digèrent de 5’ vers 3’

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10
Q

Quelles sont les fonctions de la coiffe 5’?

A
  1. Stabilité (protection contre exonucléases)
  2. Facilite export de l’ARNm vers le cytoplasme
  3. Stimule la traduction par les ribosomes (ils reconnaissent la coiffe)
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11
Q

Comment débute la polyadénylation de l’ARN?

A

Facteurs de clivage (CPSF et CstF) portés par queue phosphorylée de l’ARN polymérase sont transférés sur la séquence AUAAA (signal de clivage et addition de queue polyA)

Recrutement la Poly-A polymérase (PAP) à l’extrémité 3’ de l’ARN

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12
Q

Quelle est le rôle de la PAP (Poly-A polymérase)?

A
  1. Clivage de l’ARN (environ 15 nucléotides après la séquence AUAAA)
  2. Ajout de queue Poly-A (environ 200-250 A)
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13
Q

Qu’est ce qui assure la stabilité de la queue de Poly-A?

A

Recrutement de protéines qui vont la lier

PABP: poly A binding proteins

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14
Q

Quelles sont les fonctions/rôles de la séquence PolyA en 3’?

A
  1. Augmenter la stabilité de l’ARN en protégeant l’extrémité 3’ même s’il y a dégradation progressive de la queue dans le cytoplasme
  2. Facilite son exportation vers le cytoplasme
  3. Favorise la traduction en identifiant les molécules de ARNm matures prêtes à être traduites
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15
Q

Vrai ou Faux.

Les exons contiennent des séquences non-codantes.

A

Vrai.

Les premiers et derniers exons (debut et fin) ont des régions non-codantes dites 5’ UTR et 3’UTR

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16
Q

Qu’est ce que l’épissage?

A

Processus par lequel des introns sont excisés du pré-ARNm et les exons reliés entre eux pour donner l’ARNm mature

17
Q

Qu’est ce qui identifie les jonctions 5’ et 3’ des introns et par quoi ces identifiants sont-ils reconnus?

A

Identifiées pas des séquences spécifiques

Reconnues par des petites ribonucléoprotéines nucléaires (snRNP) qui assistent la coupure de l’ARN aux jonctions intro-exon et relient les exons

18
Q

Quelles sont les séquences identifiant le début et la fin d’un intron?

A

Début : GURAGU ( R=purine)

Fin : YYYYYYYYYYNCAG ( Y=pyrimidine N=nucléotide)

19
Q

Quelles séquences identifient le début et la fin d’un exon?

A

Début: G

Fin: AG

20
Q

Comment appelle-t-on les séquences de passage entre un exon et un intron?

A

Site donneur: passage de l’exon à l’intron

Site receveur: passage de l’intron à l’exon

21
Q

Qu’est ce que le point de branchement d’un intron et l’importance de celui-ci?

A

Séquence CTRAYY (R=purine Y=pyrimidine) environ 30 nucléotides avant le début d’un exon

A est essentiel à l’épissage

22
Q

Quelles sont les 3 étapes de l’épissage?

A
  1. A (adénine) du point de branchement de l’intron attaque le G en 5’ de l’intron (G de GURAGU) au point d’épissage et coupe le squelette sucre-phosphate
  2. Formation du Lasso: formation d’un lien covalent entre extrémité 5’ de l’intron et au 2’ OH du ribose de A
  3. Liaison des exons: extrémité 3’ OH libre de l’exon 1 réagit avec 5’ de l’exon 2 (cela libère le Lasso qui sera dégradé)
23
Q

Comment les snRNP catalysent-ils l’épissage (3 étapes) ?

A
  1. U1 snRNP qui a ARN complémentaire aux séquences d’ARN se lie à la jonction exon1. U2 snRNP se lie par complémentarité au site de branchement d’un intron.
  2. Recrutement des snRNP U4/U6 et U5. U5 snRNP force l’association de U1 et U2 amenant le A du site de branchement (position favorable pour la formation du Lasso)
  3. Relâchement de U1 et U4. S’ensuit les étapes de l’épissage.
24
Q

Comment est-ce que les exons ont contribué à l’évolution?

A

via le exon shuffling

25
Q

À quoi peut mener un problème dans l’épissage?

A

des pathologies

26
Q

Qu’est ce qui explique la diversité des protéines chez l’humain?

A

épissage alternatif

27
Q
  1. Qu’est ce que l’épissage alternatif et que permet-il?
  2. Quelle proportion des gènes codent pour des pré-ARNm qui subissent un épissage alternatif?
A

1. Élimination ou inclusion de certains exons produisant différents ARNm permettant aux eucaryotes d’augmenter le potentiel de codage de leur génome

  1. 60%
28
Q

Quels sont les mécanismes possibles d’épissage alternatif (6)?

A
  1. Exon cassette : 1 exon inclut ou pas
  2. Exons mutuellement exclusifs: si 1 est inclut dans la séquence, l’autre ne le sera pas
  3. Rétention d’intron
  4. Alternative 5’ or 3’ splice sites
  5. Promoteurs alternatifs
  6. Alternative splicing and polyadenylation
29
Q

Comment est-ce que la α-tropomyosine est un bon exemple de l’épissage alternatif?

A

Épissage alternatif permet d’avoir différents isoformes dans différentes cellules ce qui lui permet ses différentes fonctions soit,

dans les cellules musculaires: régulation des interactions entre l’actine et la mysosine

dans les cellules non-musculaires: rôle dans régulation du cytosquelette

30
Q

Qu’est ce qui explique que certains introns peuvent se comporter comme des exons optionnels (et donc être inclus dans ARNm) ?

A

Régulation négative de l’épissage : répresseur de l’épissage = mène à l’INCLUSION des introns

(alors que régulation positive: activateur de l’épissage = mène à l’exclusion des introns )

31
Q

Quelle est la condition que doivent respecter les ARNm des eucaryotes pour sortir du noyau?

A

avoir maturé correctement

32
Q

Qu’est ce qui signale que l’ARNm a subi une maturation correcte et est prête à l’exportation?

A

un ensemble de protéines incluant:

  • PABP (protéine de liaison à la poly A)
  • Protéine de liaison à la coiffe
  • EJC (exon junction complex) qui se dépose après l’excision des introns
33
Q

Quelle est l’étape principale de la régulation des gènes eucaryotes?

A

transcription