Les Methodes Flashcards

0
Q

Objectif du marquage ?

A

Rend un élément d’intérêt détectable

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1
Q

Définition d’un anticorps

Définition anticorps polyclonaux:

Définition anticorps monoclonaux

A

Protéine avec un domaine constant et un variable qui se lie de façon spécifique à une région particulière
=épitope

Mélange d’AC reconnaissant plusieurs épitope d’un même antigène

Reconnaissant un seul épitope de l’antigène

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2
Q
Le western blot ? Principe 
Étape 
1) electrophorese
2)transfert sur mbr
3)incubation
4)lavage
5)révélation
A

Méthode de détection de protéine d’intérêt, séparé par electrophorese à l’aide d’un anticorps marqué

1) SDS page (SDS charge négativement le tout et romp les liaisons non covalante )
Puis migration de la cathode (-) ces l’anode (+)

2) transfert du gel sur membrane (cathode anode)
3) on ajoute les anticorps (si marqué détection directe)
4) élimine les anticorps en excès
5) anticorps marqué qui révèle les premier anticorps (indirecte)

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3
Q

Immunohistochimie ou immunocytochimie ou immunofluorescence
BUT ?

Étape

1) préparation
2) immunodetection

Qu’est ce qui ressort en blanc sur une immunohistochimie ?

A

Ou la protéine d’intérêt et localisé dans un tissu ?

1) préparation rend accessible la protéine (perméabilise la cellule ou réalisation d’une coupe de tissu)
2) détection avec anticorps directe l’anticorps qui détecte et marqué ou indirect un second anticorps (marqué) détecte le premier

Uniquement ce qui est marqué!

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4
Q

Immunoprecipitation BUT ?

Co-immunoprecipition BUT?
Étape 
1)
2)
3)

4) WB pour la co-immunoprecipitation
Intérêt ?

A

Extraire une protéine d’intérêt.

Mettre en évidence une interaction.

1) ajout d’AC -> création d’un complexe AC-AG
2) rend le complexe insoluble grâce à des protéine G
3) centrofugation pour récupérer le complexe

4) WB afin de détecter les interaction

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5
Q

Que met en évidence le DAPI ?

A

L’ADN

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6
Q

Sonde et hybridation: Principe ?

A

Reconnais un acide nucléique cible (complémentaire) Grace a une séquence marqué

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7
Q

Culture cellulaire principe ?

3 types:

1) culture organotypique
Avantage
Inconvénient

2) culture de cellule dissocié
Étape a) b) c) d) e)
Avantage:
Inconvénient

3) culture de ligné cellulaire
Avantage
Inconvénient

A

Maintient en vis des cellule hors de l’organisme

1) conserve l’architecture
durée de vie faible

2) étape
a) dissociation des cellules grace a la trypsine !
b) culture primaire (développement dans une boîte)
c) multiplication
d) repiquage ( encore trypsine )
e) repiquage successif ‼️toujours culture secondaire

Beaucoup de cellule
Durée de vie limite, perte architecture et modification possible

3) cellule rendu immortel
Cultivable indéfiniment
Propriété différente des cellules de base

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8
Q

Condition de culture ?
Température ?
Nutriment ?

A

37c

Sel minéraux nutriment glucose acide aminés et DES FACTEURS DE CROISSANCE

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9
Q

Cytometrie de flux
But

Exemple avec la quantité ? Permet de ?
Avec différent fluorochrome ?

A

Détecte et quantifie la fluorescence de cellule ou détecte différent fluorochrome

Déterminer dans qu’elle cycle cellulaire ce trouve une certaine quantité de cellule

Qu’elle cellule exprime qu’elle protéine en fonction du fluorochrome fixé sur chaque AC

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10
Q

PCR et RTPCR
But

Comment ce procéde l’amplification ?

Permet également de ?

A

PCR: amplifie une séquence d’intérêt
RTPCR transcription inverse puis amplification

Dénaturation du double brin, hybridation d’une amorce puis élongation Grace à une ADN polymerase

Une fois la séquence d’intérêt multiplie ça mise en évidence et plus facile ou juste si il y a amplification c’est que l’amorce c’est fixé donc présence de la séquence d’intérêt !

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11
Q

La microscopie

Résolution
-optique + qu’elle procédé ?
Électronique + qu’elle procédé ?

A
  • 100 a 500 nm. Les photons

- 0,2 a 2nm les électrons

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12
Q

Préparation d’un échantillon pour le microscope optique

9 étapes

A

1) fixation stabilisé la cellule
2) rinçage (excès de stabilisateur)
3) déshydratation
4) inclusion ( solidifie l’échantillon)
5) microtomisation (coupe fine)
6) réhydratation
7) coloration
8) déshydratation
9) montage

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13
Q

Préparation microscope électronique

9 étapes :

A

1) prélèvement
2) marquage (éventuelle)
3) fixation
4) post fixation
5) déshydratation
6) inclusion
7) ultramicrotomisation
8) augmente le contraste
9) observation

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14
Q

Le pulse chasse

Pulse =

Chasse =

Que peut t’on observé si on met dans le mileu de l’ATP radioactive ?

A

Pulse = le marquage d’élément d’intérêt au moment de leur synthèse

Chasse= on observe à différent temps la position des élément marqué
Exemple avec le REG

-une phosphorylation

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15
Q

Patch clamp permet de ?

A

Étudier les potentiel membranaire

16
Q

Les protéines de fusion

Permet de ?

A

Permet de repérer ou d’extraire aisément une protéine d’intérêt

Notamment en tant qu’etiquette

17
Q

Le fret :

Permet de ?

Exemple d’application

A

Mettre en évidence l’interaction de deux protéines

Exemple une protéine ( X )liée à une protéine fluorescente ( jaune par exemple)
On fais deux même sur la protéine ( Y liée à une protéine rouge ) dont on veut déterminer l’interaction avec la première.
On excite la première protéine fluorescente : - si on obtient du jaune uniquement pas d’interaction trop éloigné
- si on obtient si rouge ça veut dire que l’excitation c’est transmise donc que les protéines sont liée
-la seconde

18
Q

Centrifugation ou fractionnement cellulaire

A

Permet de séparer les différentes fractions subcellulaire

19
Q

Comment démarrer l’exercice ?

Client décortiquer chaque énoncé ?

A

1) thème
2) objectif
3) protocole

1) méthode d’analyse ?
2) objectif
3) bilan

20
Q

Qu’elle est la fonction du triton X 100

A

1) perméabilise les membranes, se qui peut servir pour une immunohistochimie !

21
Q

Concernant les microscopes optique,

Qu’elle sont les microscopes permettant de détecter la fluorescence ?

Qu’elle microscope (optique permet de voir des relief ?

A

1) le microscope confocale et le microscope à épifluorescence
2) microscope à contraste d’interférence ou de nomarski

22
Q

Qu’elle est l’avantage de travailler in vitro quand a la prédiction de la nature des interaction ?

A

On sais ce que l’on met dedans, on peux donc dire si l’interaction est directe

23
Q

Qu’elle est l’effet des mi-ARN ou si-ARN ?

Qu’elle effet cela a sur la protéine ?

A

Rend l’ARN visée inutilisable

On ne peux prévoir, si elle est stable la quantité de protéine peux rester identique, en revanche si elle est instable elle peux chuter donc pas d’information utilisable sur la quantité de protéine