Intra Flashcards

1
Q
  • section bactériophage Myoviridae Ex: phage T4
A

ADN bicaténaire linéaire. Morpho binaire

TÊTE PLEINE donc permutations du génome. et dégradation du génome bactérien. (protection via hydroxyméthylcytosine)

  1. Génome viral exprimé via ARN pol cellulaire
  2. Seulement promoteur pour protéines virales précoces reconnu
  3. DONT…ADN polymérase + protéines interagissant avec ARN pol bactérienne = changement de spécificité
  4. Reconnaissance promoteur pour protéines gènes tardifs = protéines structurales.
  5. Génome viral synthétisé sous forme de concatémères reliés (pour éviter perte génome car linéaire) = amorces 3’ pour permettre activité ADN pol 3’ vers 5’ (polarité obligatoire 5’-3’). = derniers perdues.
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2
Q
  • section bactériophage Podoviridae (ex: Phage T7)
A

ADN bicaténaire linéaire -morpho binaire Similaire au T4.

Deux différences :
Phase tardive : génome viral transcrit par une ARN polymérase spécifique au virus

-Mécanisme d’encapsidation du génome viral : pas de permutation de génome ; les extrémités du génome au sein du concatémère sont reconnues et clivées pour donner le génome viral intact qui présente quand même extrémités répétitives cohésives.

On veut exemplaire complet seulement du génome

DONC pas tête pleine

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3
Q
  • section bactériophage Bactériophage Mu
A

ADN bicaténaire linéaire flanqué de séquences dADN bactérien

suite a injection = recircularisation et cycle débute via…transcription du génome viral et…

intégration au hasard dans le génome bactérien grâce à transposase transcrite par génome viral :

  1. transposase coupe ADN de l’hôte (asymétrique = extrémités monocaténaires de 5’ ncl
  2. Coupe ADN viral sur un brin aux deux points de jonction avec ADN bactérien.
  3. Ligature et colmatage (via enzymes bactériens)
  • puis réplication des transposons un peu partout dans le génome bactérien.
  • Génome viral transcrit quand intégré = protéines virales, encapsidation du génome.
  • Variante du mécanisme à tête pleine. Enzyme virale coupe (50-150 nucléotides gauche et à droite du génome viral (portion ADN bactérienne).

Lytique= réplication rapide via transposition sur ++ sites génome viral puis encapsidation.

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4
Q
  • section bactériophage Siphoviridae (ex: bactériophage lambda)
A

ADN bicaténaire linéaire/ morpho binaire

extrémités terminales monocaténaires et complémentaires une à lautre Extrémités cohésives de 12 ncts permettent la circularisation de l’ADN viral après la pénétration dans la cellule

  • Ligase bactérienne responsable de la formation de liens covalents (fermeture du cercle)
  • bulle de réplication (enzymes bactériennes font la réplication à un endroit précis (genre doriC)/ deux fourches de réplication (modèle classique)/ transcription aussi par machinerie cellulaire = synthèse protéines virales pour passer au seconde mode de réplication…
  • modèle cercle roulant = #lytique forme longs concatémères reconnus par protéines virales (terminase) et clivés au site formant extrémités cohésives après encapsidation
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5
Q
  • section bactériophage Inoviridae (phages filamenteux comme M13 et Fd)
A

capside hélicoïdale

-ADN monocaténaire (+) et infection par pili

ADN copié par enzymes cellulaires, ARN pol (primase) amorce = ADN bicaténaire (forme réplicative)

Protéines virales: forme réplicative de se répliquer CERCLE ROULANT (donne brin positif)

puis ensuite protéines virales aident pour faire plusieurs virions.

accumulation de protéines virale reconnaissant ADN monocaténaire - = fin forme réplicative et permet assemblage et sortie (pas de lyse cellulaire)
du brin +

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6
Q
  • section bactériophage Leviviridae (phages à génome bactérien)
A

capside cubique
pili de conjugaison
ARN unique lu directement par ribosomes pour protéines phages.

plusieurs sites de fixation sur génome viral = différentes protéines.

STRUCTURES SECONDAIRES (SS) ADPOTÉE PAR ARN pour régulation niveau synthèse de différentes protéines virales. (donc pas de régulation transcriptionnelle) plus traductionnelle

1 . SS à extrémité 3’ prévient synthèse de protéines de maturation (et site d’initiation AUG et site de fixation au ribosome masqué. Site pour réplicase aussi masqué

  1. Site d’initiation synthèse des protéines de capside OK
  2. fur et à mesure de la traduction: SS se modifie et permet initiation de la synthèse de la réplicase au site AUG
  3. réplicase ARN dépendante ARN permet synthèse du brin -
    (antigénome) qui sera copié pour faire ++ génome virale (+).
  4. Début synthèse brin +, structure en 5’ ne peut être adoté (donc traduction là) = initiation au troisième site = synthèse protéines de maturation (protéines tardive) pour assemblage de la capside.

réplicase= ARN dep d’ARN

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7
Q
  • section bactériophage Cystoviridae (Phage à génome ARN bicaténaire)
A

capside cubique
enveloppe lipidique ex: phi6.

Fusion et capside entre dans bactérie

segments ARN bicaténaire

ARN bicaténaire transcrit par enzymes virales (qui étaient dans capside) (Transcriptase virale)

brin + déplacés pour faire ARNm (+) et nouveau brin reste lié au brin - (génome viral)

ARNm = traduits par protéines virales
ou reconnus par certaines protéines virales = encapsidation d’un exemplaire de chacun des segments (gènes).

brin complémentaire synthétisé (enzymes virales) pour nouveau génomes viraux.

ARN pol dans virions produit

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8
Q
  • Picornaviridae
A

ARN monocaténaire linéaire +
Cubique, non, polyomyélite et Hépatite A (orofécales) et rhinovirus (rhume commun)

PREMIÈRE STRATÉGIE (pour les virus à génome ARN de polarité +)

  1. Génome directement lu par les ribosomes cellulaires après décapsidation
  2. Traduction = longue polyprotéine/ Clivage protéolytique/ génération de plusieurs protéines (mécanisme autocatalytique (protéases virales)
  3. Ces protéines = (copie génome viral = brin complémentaire - )
  4. Copie brin - pour donner + à nouveau.
  5. Encapsidation par protéines de structure de la capside virale = nouveaux virions relâchés par lyse

Demande: ARN pol virale (ARN pol dep ARN).

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9
Q

Caliciviridae

A

ARN monocaténaire linéaire +

cubique non. Apparenté à picornaviridae. Virus de Norwalk, chat (respiratoire)

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10
Q
  • Togaviridae
A

ARN monocaténaire linéaire +, cubique oui, rubéole, avortement

  1. Similaire à Picornaviridae
  2. mais lors de la traduction , seulement protéines précoces faites
  3. Ce qui permet synthèse brin -
  4. brin - transcrit pour faire 2 types d’ARN
    - des nouveaux génomes viraux (phase tardive)
    - via seconde séquence de reconnaissance de la polymérase virale : plus courte 3’ -terminale= synthèse protéique codon initiale plus interne que le premier = PROTÉINES STRUCTURALES tardives (permet encapsidation)

pk? Car Picornaviridae (monocistronique) mais ici:fonctionnellement monocistronique mais structurellement dicistronique (plusieurs cadres de lecture en fonction des AUG)

Avantage car protéines parfois toxique (on veut pas limiter temps de survie des cellules)

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11
Q

Flaviviridae

A

ARN monocaténaire linéaire +

cubique oui, Hépatite C(sang), la fièvre jaune, dengue, virus du nil occidental, Zika.

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12
Q
  • Coronaviridae
A

ARN monocaténaire +
cubique oui, infections respiratoires (rhumes), SRAS, syndrome respiratoire du Moyen-Orient.

Stratégie similaire à Togaviridae (deux ARN/1ARNm et 1 ARN + génomique) MAIS
-plusieurs cadres de lecture pour générer toute une gamme de molécules ARNsubgénomiques de polarité + via antigénome -.

implication de la polyméase qui allonge une séquence ARN leader (séquence de tête) pouvant s’attacher à différentes régions du génome par complémentarité de séquence. (synthétisé au début du cycle)

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13
Q
  • Orthomyxoviridae
A

taux évolution grande (à cause de segments et THG avec virus co-infectant)

ARN monocaténaire linéaire - et segmenté , hélicoïdale oui, Grippe (contact indirect; propagation via animaux= diversité virale)

  1. Transcription du génome viral (-) par une ARN pol viral dans la capside.
  2. ARNm (+) synthèse de différentes protéines virales. + copie complète du génome viral (-)
  3. ARN(+) pour génome viral ensuite copié (donc donne -/antigénome) puis encapsidées par protéines structurales du virus = nouveaux virions matures.
  4. Pendant encapsidation: ARNpol virale nouvellement synthétisée encapsidée pour poursuivre cycle
    * Aussi: implique reconnaissance de séquences (étiquettes) sur chacun des segments pour les différencier individuellement.
  • différence: nature segmentée du génome : chaque segment (grippe 8) copié séparément et code ARNm distinct.
  • Aussi: utilisation de fonctions nucléaires : leur ARNpol pour synthèse d’ARNm + ne peut amorcer directement synthèse : utilisation d’amorces de courts segments d’ARNm cellulaires avec coife en 5’ et quelques ncd de plus. Donc doit aller dans noyau

DONC utilisation d’épissage d’ARNm

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14
Q
  • Paramyxoviridae
A

ARN monocaténaire linéaire -
hélicoïdale oui, similaire à grippe, Rougeole, oreillons (introduction colonisation Amérique), chien.

  1. Transcription du génome viral (-) par une ARN pol viral dans la capside.
  2. ARNm (+) synthèse de différentes protéines virales. + copie complète du génome viral (-)
  3. ARN(+) pour génome viral ensuite copié (donc donne -/antigénome) puis encapsidées par protéines structurales du virus = nouveaux virions matures.
  4. Pendant encapsidation: ARNpol virale nouvellement synthétisée encapsidée pour poursuivre cycle

différence avec orthomyxoviridae: génome pas segmenté et pas d’amorce utilisé donc évolution lente.

*Aussi synthèse de fragments plus courts : produites via plusieurs points d’initiation interne présents sur l’ARN (-).
pour donner série ARNm pour plusieurs protéines.

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15
Q

Rhabdoviridae ARN mono -

A

ARN monocaténaire linéaire -

Hélicoïdale oui, virus de la rage.

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16
Q

Filoviridae ARN mono -

A

ARN monocaténaire linéaire -

hélicoïdale oui, Ebola,

17
Q
  • Bunyaviridae
A

ARN monocaténaire linéaire -
cubique oui, hantavirus (Sin nombre), multisystémiques et mortelles.

  1. Transcription du génome viral (-) par une ARN pol viral dans la capside.
  2. ARNm (+) synthèse de différentes protéines virales. + copie complète du génome viral (-)
  3. ARN(+) pour génome viral ensuite copié (donc donne -/antigénome) puis encapsidées par protéines structurales du virus = nouveaux virions matures.
  4. Pendant encapsidation: ARNpol virale nouvellement synthétisée encapsidée pour poursuivre cycle

*Utilisation de courts fragments d’ARN comme amorce MAIS se réplique juste au niveau du cytoplasme et ont une enzyme pouvant découper ARNm cellulaire pour produire amorce extrémité 5’

18
Q

** Arenaviridae AMBISENSE

A

ARN monocaténaire linéaire, ambisense
cubique oui

Portion du génome polarité + et l’autre complémentaire (antigénome (-))

  • Portion négative: transcrite par enzyme virale présente dans capside (via site de fixation à l’intérieur du génome pour synthèse protéiques virale)
  • Permet de copier génome viral à nouveau (donne le contraire du génome virale (au lieu de - et + on a + et -) qui sera copier pour faire le génome et aussi avoir l’autre partie d’ARNm (+). pour faire d’autres protéines virales
  • génome jamais directement traduit.

Voir diapo 134 des notes de cours

19
Q

*** Reoviridae (LEMAY)

A

ARN bicaténaire linéaire segmenté
cubique non, rotavirus (diarrhée), mouton. Double capside et dégradation de la première amène à entrée dans cytoplasme du virion (avec capside unique). Utilise transcriptase viral.

décrire prototype Orthoreovirus (dans la famille de réoviridae)

  1. Génome composé de segments d’ARN bicaténaire transcrit directement par enzymes virales dans la capside
  2. Les brins + produits relâchés par ouvertures présente aux sommets de la capside
  3. Libération des exemplaires de segments + = ARNm
  4. Cet ARN traduit en protéines MAIS aussi encapsidé par ces protéines = structure intermédiaire ou il y aura synthèse brin (-) complémentaire pour chaque segment d’ARN +
    * *Mécanisme de reconnaissance très précis (car toujours 1 segment de chaque segment d’ARN+)
    * Implique reconnaissance de séquence ou structures secondaires sur chaque ARN
  5. capside externe ajouté = virus mature relâché pendant lyse
    * ** 1 segment=1gène=plusieurs protéines car 2 cadres de lectures lors de la traduction
    * **RÉPLICATION CONSERVATIVE: d’un acide nucléique bicaténaire (génome original pas touché)
    * **Polymérases virales reconnaissent des séquences présentes sur brins + et -. AUSSI implique des séquences conservées à chacune des extrémités sur les segments.

ex: possède séquence GCUA à extrémité 5’ de tous les segments

20
Q

*** Retroviridae (FINZI)

A

ARN monocaténaire linéaire phase ADN
cubique oui , VIH, HTLV-1 (leucémie).

ADN pol dépendante d’ARN / utilise bcp enzymes celluaires / génome viral = même polarité que l’ARNm, ne peut être infectieux sans présence de l’enzyme viral associé/ génome viral pas directement lu par ribosome

  1. transcription inverse du génome
  2. puisque ADN pol (demande amorce fourni par ARNt, molécule cellulaire encapsidée au sein du virion et complémentaire à courte région du génome viral)
  3. Synthèse copie ADN du génome viral, puis copie de la copie pour faire ADN bicaténaire. (donc aussi activité ADN pol ADN dep)
  4. Migration au noyau pour s’intégrer dans génome cellulaire (parfois demande destruction de la membrane plasmique donc pendant mitose/ pas le cas des lentivirus comme VIH) (similaire à transposon car au hasard) via enzyme viral = l’intégrase (aussi dans virion initialement) #provirus
  5. Après intégration = Transcription par ARN pol II cellulaire. (génome viral possède à son extrémité séquences nucléotidiques promotrices et activatrices).
  6. Synthèse d’une molécule d’ARN idientique au génome viral initial (portion toutefois avec épissage) pour avoir plusieurs espèces d’ARNm = production de toutes les protéines virales structurales et non structurales (grâce à machinerie cellulaire qui reconnait séquences adéquates sur génome viral).
  7. Ensuite génome encapsidé grâce à présence de séquences spécifiques guidant le processus.
  8. Virions assemblés et bourgeonnement pour libération de nouvelles particules virales infectieuses avec la transcriptase inverse, l’intégrase, l’amorce d’ARNt et génome.
21
Q
  • Parvoviridae
A

ADN monocaténaire linéaire
cubique non

Réplication dans noyau

Incapacité des ADN pol de commencer directement polymérisation (ADN mono linéaire)
AMORCES 5’ = problème pour les enlever

  1. ils ont séquence terminale permettant formation d’une structure en épingle (par complémentarité et repliement sur elle-même) = permet amorçage
  2. enzyme virale spécifique permet de couper à la base de la structure en épingle= dépliement puis synthèse d’in intermédiaire de réplication bicaténaire.
  3. Intermédiaire bicaténaire pour synthèse ADN monocaténaire pour être encapsidé)
  • Certains encapisdent un seul des deux brins d’ADN
  • D’autres encapsident les deux brins dans des capsides séparés.

***Structure en épingle terminale peut être soit FLIP ou FLOP (en alternance) (car ces structures sont situées en dehors des séquences codant des protéines = pas de conséquences sur fonctions génome)

22
Q
  • Papovaviridae
A

ADN bicaténaire circulaire
promoteur précoce (1) sens inverse du promoteur tardif (1)
donc 2 promoteurs

similaire à phage T4

cubique non

  1. Transport dans noyau
  2. Partie du génome viral transcrit à partir d’un promoteur reconnu par l’ARN pol II cellulaire.
  3. Production d’ARNm avec coiffe et queue poly A par machinerie cellulaire.
  4. traduits dans cytoplasme
  5. épissage alternatif permettant production ++ protéines avec 1 ARNm précurseur. machinerie cellulaire.
  6. Protéines produites amenées dans noyau (signal de localisation nucléaire) Protéines précoces (donc ARNm et promoteurs utilisés ici aussi précoces) non structurales
    - permettent la réplication du génome et transcription de gènes tardifs.
  7. réplication par ADN pol cellulaire (reconnait ADN viral seulement si protéines précoces) (origine de réplication sur ADN viral circulaire)
    * Protéines précoces bloquent aussi activité de protéines ceullaires impliquées dans contrôle de la multiplication cellulaire (Rb, p53).
  8. Ainsi activation mécanismes de réplication d’ADN.
  9. Protéines précoces permettent reconnaissance de promoteurs tardifs
  10. Transcription des ARNm tardifs (ARN pol cellulaire) codant pour protéines tardives = de structure permettant l’encapsidation des génomes synthétisés
23
Q
  • Papillomaviridae
A

ADN bicaténaire circulaire circulaire, cubique non, Verrues communes ou génitales (développement cancer)
promoteur précoce (1) sens inverse du promoteur tardif (1)
donc 2 promoteurs

similaire à phage T4

  1. Transport dans noyau
  2. Partie du génome viral transcrit à partir d’un promoteur reconnu par l’ARN pol II cellulaire.
  3. Production d’ARNm avec coiffe et queue poly A par machinerie cellulaire.
  4. traduits dans cytoplasme
  5. épissage alternatif permettant production ++ protéines avec 1 ARNm précurseur. machinerie cellulaire.
  6. Protéines produites amenées dans noyau (signal de localisation nucléaire) Protéines précoces (donc ARNm et promoteurs utilisés ici aussi précoces) non structurales
    - permettent la réplication du génome et transcription de gènes tardifs.
  7. réplication par ADN pol cellulaire (reconnait ADN viral seulement si protéines précoces) (origine de réplication sur ADN viral circulaire)
    * Protéines précoces bloquent aussi activité de protéines ceullaires impliquées dans contrôle de la multiplication cellulaire (Rb, p53).
  8. Ainsi activation mécanismes de réplication d’ADN.
  9. Protéines précoces permettent reconnaissance de promoteurs tardifs
  10. Transcription des ARNm tardifs (ARN pol cellulaire) codant pour protéines tardives = de structure permettant l’encapsidation des génomes synthétisés
24
Q

Adenoviridae

A

ADN bicaténaire linéaire
cubique non, respiratoire et intestinale variable, conjonctivites.

très similaire aux Papovaviridae et Papillomaviridae MAIS

  • taille beaucoup plus grande
  • nombre d’ARNm différents (épissage alternatif plus élevé et plus complexe)

Principes généraux les mêmes MAIS pas même réplication de l’ADN génomique (car linéaire)

  • Donc ADN polymérase viral (protéines précoce du premier promoteur (précoce))
  • Seconde protéine différente: protéine TERMINALE pour amorce de la synthèse (s’attache a un nucléotide (dCTP/ désoxycitidine tri phosphate) de manière covalente via 5’ (au P) et laisse extrémité 3’ libre pour polymération (permettre polarité obligatoire 5’-3’)
  • *Ainsi reconnait extrémité génome viral et permet fixation à polymérase

-Synthèse du génome viral semi-conservative

(pour acide nucléique et pour protéine virale)

25
Q
  • Herpesviridae
A

ADN bicaténaire linéaire
cubique oui, herpes génitale/labiale, mononucléose, varicelle #zona, roséole, sarcome de Kaposi (sidéen).

Similaire à tous les virus à génome ADN et à réplication nucléaire (mais ++ complexe)

  • génome viral ADN bicaténaire linéaire se circularise au noyau des cellules = réplication
  • Cycle de multiplication à plusieurs phases (précoces, précoces, tardives)
  • Virus peut établir latence
  • phase finale de réplication du génome fait appel à mécanisme de cercle roulant #similaire#PhageLambda

DONC formation de concatémères qui serviront à encapsidation du génome viral

26
Q
  • Hepadnaviridae
A

ADN bicaténaire (circulaire?), cubique oui, Hépatite B (sang) et sexuel

besoin de la transcriptase inverse virale.

ressemble à rétrovirus sous forme ADN.

  1. compléter l’ADN pour générer une molécule circulaire complète (fermé de manière covalente) Enzymes cellulaires (?)
  2. Pas d’intégration mais transcrit dans le noyau via enzymes cellulaires.
  3. Parmi ARNm : 1 ARN représentant copie complète du génome viral (matrice à la transcriptase inverse virale pour reformer le nouveau génome)
  4. Synthèse du brin négatif (inverse à polarité ARNm)
  5. Synthèse du brin + en copiant brin négatif
  6. Arrêt synthèse ADN lors de l’encapsidation ou après encapisdation quand virus sort de la cellule (et plus accès au nucléotides) donc aléatoire dans le temps explique la longueur variable du brin + au sein des capside (car c’est le brin synthétisé en dernier)
27
Q
  • Poxviridae
A

ADN bicaténaire linéaire
cubique oui, variole et virus de la vaccine (vache), myxomatose (lapins Australie)

Les plus complexes et se mutliplie exclusivement dans le cytoplasme DONC EXCEPTION DANS VIRUS à ADN

  • Possède toutes les enzymes nécessaires à la synthèse et transcription viral (car ne peut pas profiter de la machinerie cellulaire dans le noyau)
  • structure du génome pose aussi problème concernant sa réplication complète (ADN bicaténaire LINÉAIRE)
  • Formation de structures en épingle permettant l’initiation et synthèse complète de l’ADN viral.
  • *Structure de cet ADN particulière = linéaire mais extrémités liées de manière covalente

(diapo 153)

28
Q

synthèse de l’ADN viral bicaténaire à partir de l’ARN complexe (dans le cas des rétrovirus) car permettre conservation des extrémités d’ARN. Comment?

A
  1. ARN viral possède séquence R répétée aux deux extrémités (ARNt déjà fixé à une des séquences homologues de l’ARN viral (#séquence de fixation de l’amorce) = transcriptase inverse copie la courte séquence entre ce site de fixation et l’Extrémité 5’ de l’ARN.
  2. l’ARN viral hybridé à sa copie d’ADN dégradé (transcriptase activité RNaseH =extrémité R de l’ADN peut donc s’hybrider à séquence R de l’ARN de L’AUTRE EXTRÉMITÉ
  3. Permet à la transcriptase de poursuivre copie de l’ARN en ADN puis dégrader le brin ARN de l’hybride ainsi généré.
  4. Petite séquence ARN résistante à la dégradation (car suite de purines) = sert transitoirement d’amorce pour poursuivre synthèse ADN dans l’autre direction et sur l’autre brin. (ensuite dégradé/ aussi ARnt hybridé à l’ADN)
  5. Courte séquence d’ADN correspondant à séquence de fixation de l’amorce transitoire présente à extrémité 3’ et peut se fixe à la séquence homologue à 5’ de l’autre brins.
  6. On complète la synthèse de l’ADN

Transcriptase inverse : ADNpol dep d’ARN et ADN et aussi activité RNaseH #rappel R loop)

**Permet d’ajouter en 5’ une séquence auparavant unique à 3’ (U3)
**Idem séquence 3’ retrouvé à 5’ (U5)
= résultat final = présence séquence répété LTR au deux extrémité de l’ADN et permet la transcription de l’ARN de R à R (promoteur situé sur U3 de 5’ sans perte génomique)

vrm wtf check les diapo ahah
(140)

29
Q

GÉNÉTIQUE INVERSE virus à génome ARN de polarité +

utilisation de plasmides

A
  1. Copie ADN complète du génome viral
  2. Permet d’avoir copie ARN complet (en clonant l’ADN sous le contrôle du promoteur T7
  3. Puis transcription in vitro
  4. ARN produit infectieux dans les cellules = permettant virus portant mutation à l’étude.
    * Possible de synthétiser chimiquement l’ensemble du génome et introduction dans plasmide = production du virus via info disponible dans banque de données
30
Q

GÉNÉTIQUE INVERSE virus à génome ARN bicaténaire

utilisation de plasmides

A

Complexe
mais simple ex: réovirus
nature segmentée du génome et nécessité d’avoir protéines virales compliquent la situation
-utilisation transcription à partir promoteur T7 avec intorduction simultanée dans cellules d’un exemplaire de chacun des gènes viraux OK (virus infectieux) pour les 10 gènes (segments)

31
Q

GÉNÉTIQUE INVERSE virus à génome ARN de polarité -

utilisation de plasmides

A
  • Moins utilisé car génome pas directement infectieux.
  • technique de purification et d’introduction d’ADN dans les cellules de mammifères en culture facilite
  • *SIMILAIRE TECHNIQUES ARN BICATÉNAIRE mais parfois utilisent différentes polymérases.

*Parfois protéines précoces directement exprimées afin de permettre initiation du cycle de réplication alors que les 8 segments d’ARN génomique = directement produit (SYSTÈME À 12 PLASMIDES)

*D’autres systèmes: transcription dans les deux sens (ARNm transcrits par pol II et les ARN génomiques de polarité - produit par transcription avec ARN pol I.
(diapo 167)

32
Q

GÉNÉTIQUE INVERSE rétrovirus (utilisation de plasmides)

A

Largement utilisé

  • Introduire mutations dans clone ADN viral ensuite directement introduit dans cellule.
  • clone proviral= l’ADN viral flanqué de séquences cellulaires
  • transcription par l’ARN pol cellulaire permet de reformer le génome viral ARN et produire toutes les protéines virales nécessaire à la formation du virus
33
Q

GÉNÉTIQUE INVERSE virus à ADN (utilisation de plasmides)

A

Plus simple
-Clone d’ADN peut être muté et réintroduit dans la cellule pour permettre transcription, réplication et formation de nouveaux virus. ex: SV40

Dans le cas des plus gros virus (Adenoviridae, Poxviridae et Herpesviridae) : plus compliqué (car difficile d’obtenir clone d’ADN génomique viral complet dans un plasmide)

  1. On peut cloner seulement une partie du génome viral d’intérpet et y produire mutations souhaitées.
  2. ADN muté introduit dans cellules qui seront infectées avec virus correspondant
  3. Recombinaison homologue : intégration gène mutant dans WT

Inconvénients: mélange virus mutants et sauvages : doivent être séparés (ce qui s’effectue en produisant plages de lyse par infection d’une monocouche cellulaire approprié)

  • Plage alors isolées et virus présents dans celles-ci utilisés pour infecter à nouveau des cellules (stocks de virus mutants)
  • Nouveaux vecteurs bactériens permettent de cloner de très gros fragments d’ADN (BAC dérivé chromosome) pour étape de recombinaison directement chez bactérie (facilite la vie)