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Cytologie (STAGE) > Guide d'étude APC techniques > Flashcards

Guide d'étude APC techniques Flashcards

1
Q

Quels sont les critères de conformité d’une requête?

A
  • Nom et prénom complets du patient LISIBLES
  • RAMQ (si non dispo sexe et DDN)
  • Nom et prénom du prescripteur LISIBLES
  • # de permis du prescripteur
  • Analyses demandées
  • Coordonnées pour la transmission des résultats
  • Nom et prénom du préleveur LISIBLES
  • Localisation du préleveur
  • Type de prélèvement et/ou site anatomique (lettre qui précède lorsque plusieurs spécimen)
  • Date et heure du prélèvement
  • Renseignements cliniques
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Q

Quels sont les critères de conformité d’un échantillon?

A
  • Nom et prénom complets du patient LISIBLES
  • 2e identifiant (RAMQ, DDN et sexe)
  • Si >1 échantillon : identification (site anatomique ou lettre correspondante)
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Q

Quelle est la marche à suivre lors du constat d’une non-conformité?

A
  1. Compléter le formulaire de non-conformité
  2. Faxer le formulaire et la requête au préleveur
  3. Identifier la non-conformité sur la requête
  4. Les informations manquantes doivent être reçues dans un délai de 48h (sauf exception)
  5. Ajouter un rapport le complémentaire en lien avec la non-conformité rencontrée et les correctifs apportés
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4
Q

Quelles sont les exceptions au délai de 48h pour apporter les correctifs à une non-conformité

A
  1. Cytologie gynécologique non-urgente : 7 jours
  2. Urine (spécimen non-d’exception) : 7 jours
  3. Expectoration (spécimen non-d’exception) : 7 jours
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Q

Que se passe-t-il si un correctif n’est pas apporté dans le délai prescrit pour :

une cytologie gynécologique non-urgente, urine et expectoration

A

Échantillon jeté

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6
Q

Dans quel contexte un échantillon de cytologie gynécologique sera d’emblée rejeté?

A

LAme reçue non-identifiée

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7
Q

Quels sont les types de cytopréparation

A
  1. Milieu liquide
  2. Frottis direct (conventionnel)
  3. Cytocentrifugation / Cytospin
  4. Bloc cellulaire
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8
Q

Quels sont les fixateurs utilisés en cytologie?

A
  • Alcool
  • Polyéthylène glycol (PEG)
  • Cytospray
  • CytoLyt (agents commerciaux constitués d’un mélange de fixateurs)
  • Formaline
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9
Q

Dans quel contexte la formaline est-elle utilisée comme fixateur en cytologie?

A

Préparation de blocs cellulaires

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10
Q

Nommer des colorations de base pour la cytologie

A
  1. Papanicolaou
  2. Diff Quick
  3. H&E
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11
Q

Quels sont les colorants utilisés dans la coloration de Papanicolaou

A
  • Hématoxyline de Harris
  • Orange G (OG-6)
  • Eosin Azure (EA-50)
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12
Q

Quels sont les résultats d’une coloration Papanicolaou adéquate

A

Noyau : bleu foncé, détails de chromatine visibles
Cytoplasme des cellules superficielle : rose
Cytoplasme des cellules profondes : turquoise
Transparence cytoplasmique

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13
Q

Vrai ou Faux

La coloration Papanicolaou permet une bonne évaluation des détails nucléaires seulement

A

FAUX

Bonne évaluation des détails cytoplasmiques et nucléaires

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14
Q

Nommez des causes de coloration trop foncée du noyau au Papanicolaou

A
  • Frottis gardé trop longtemps dans l’hématoxyline de Harris
  • Concentration d’acide hydrochlorique trop faible
  • Pas assez de trempage dans l’acide hydrocholorique
  • Frottis trop sanguin ou trop protéiné
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15
Q

Nommez des solutions à une coloration trop foncée du noyau au Papanicolaou

A

-Diminuer le temps dans l’hématoxyline de Harris (analytique)
- Maintenir une bonne concentration de l’acide hydrochlorique (analytique)
- Bien différencier
- Tenter d’améliorer la qualité du prélèvement/frottis (pré-analytique)

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16
Q

Nommez des causes de coloration trop pâle du noyau au Papanicolaou

A
  • Hématoxyline trop diluée
  • Pas assez de bleuissement (bluing)
  • Acide hydrochlorique trop concentrée
  • Trop de trempages dans l’acide hydrochlorique
  • Frottis seché avant la fixation
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17
Q

Nommez des solutions à une coloration trop pâle du noyau au Papanicolaou

A
  • Assurer une bonne dilution de l’hématoxyline ou changer de solution (analytique)
  • Donner plus de temps pour le bleuissement (bluying)
  • Maintenir une bonne concentration de l’acide hydrochlorique (analytique)
  • Faire moins de trempage dans l’acide (analytique)
  • Fixer le frottis en temps opportun (pré-analytique / analytique)
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18
Q

Nommez des causes de mauvaise coloration cytoplasmique au Papanicolaou

A
  • Frottis seché avant la fixation
  • Lames laissée trop longtemps dans l’alcool
  • pH de l’Eosine Azure non-optimal
  • Lame laissée trop longtemps dans l’hématoxyline
19
Q

Nommez des solutions à une mauvaise coloration cytoplasmique au Papanicolaou

A
  • Fixer le frottis en temps opportum (pré-analytique / analytique)
  • Contrôler le temps de fixation dans l’alcool (analytique)
  • Maintenir le pH de la solution d’éosine azure (analytique)
  • Contrôler le temps de coloration dans l’hématoxyline (analytique)
20
Q

Dans quel contexte la coloration Diff Quick est-elle effectuée

A

Frottis seché

21
Q

Quels sont les colorants commerciaux utilisés dans le Diff Quick

A
  • Solution #1 (fixateur de méthanol transparent)
  • Solution #2 (rose : Eosine Y)
  • Solution #3 (bleue : Bleu de méthylène et Azure A)
22
Q

Quels sont les résultats attendus d’une coloration au Diff Quick

A

Cytoplasme bein délimité et bleu
Noyaux bleu plus soutenu que le cytoplasme et chromatine visible

23
Q

Quel est le type de coloration dont fait partie le Diff Quick

Nommez d’autres coloration du même type

A

Coloration de type Romanowski

  • Wright-Giemsa
  • May Grunwald Giemsa (MGG)
24
Q

Quelle est l’utilité de la coloration Diff Quick

A

Évaluation des détails cytoplasmiques et des éléments extra-cellulaires

25
Q

Nommez 5 principales différences entre la coloration de Papanicolaou et le Diff Quick

A
26
Q

Quels sont les colorants utilisés dans le H&E?

A
  • Hématoxyline de Harris
  • Éosine
27
Q

Nommez des colorations spéciales pouvant être utilisées en cytologie non-gynécologique

A
  • Bleu de Turnbull / Prusse : hémosidérophages
  • Grocott : micro-organismes fungiques
  • Ziehl : mycobactéries
  • Huile rouge : lipophages (ÉTAT FRAIS)
28
Q

Nommez deux techniques d’hémolyse

A
  1. Acide acétique glacial ou Carnoy (y plonger le frottis avant la coloration ad éclaircissement de la lame)
  2. Fixateur commerciaux avec agent hémolytique (i.e. CytoLyt)
29
Q

Quelles sont les étapes de préparation d’une cytologie en milieu liquide

Avec la méthode ThinPrep

A
  1. Vial avec l’échantillon sur un support, un cylindre avec filtre est inséré dans le vial
  2. Mélange de l’échantillon pour disperser les cellules
  3. Un aspirateur entrappe les cellules sur le filtre du cylindre
  4. Le cylindre est inversé à 180º et le filtre est appuyé sur la lame
  5. La lame est immédiatement fixée dans un bain d’alcool
30
Q

Quelles sont les étapes de préparation d’une cytologie en milieu liquide

Avec la méthode SurePath

A
  1. Échantillon passé au vortex
  2. Amas cellulaires désagrégés à la seringue
  3. Spécimen placé dans un tube et sédimentation par centrifugation et gradient de densité
  4. Une pastille est obtenue, mise en suspension et resédimentée
  5. Tube transféré dans l’instrument PrepStain où le fluide est robotiquement transféré dans un cylindre
  6. Les cellules se déposent par gravité sur une lame
  7. Colorations séquencielles robotisées
31
Q

Quelles sont les étapes de préparation par centrifugation CytoSpin

A
  1. Transférer le spécimen dans un tube
  2. Centrifuger et décanter le surnageant
  3. Remettre le culot en suspension
  4. Procéder à la centrifugation sur la lame
  5. Fixer et colorer les lames au Papanicolaou
  6. Procéder au montage des lames
32
Q

Quelles sont les étapes de préparation d’un frottis direct

Exemple : liquide d’épanchement

A
  1. Transférer le spécimen dans un tube conique
  2. Centrifuger et décanter le surnageant
  3. Ajouter le fixateur PEG (ratio 1:1)
  4. Déposer une goutte sur une lame par pipette
  5. Étaler par superposition d’une 2e lame, suivi du retrait par glissement parallèle (= 2 lames)
  6. Fixer les lames au fixateur cytologique
  7. Hémolyser
  8. Colorer les lames au papanicolaou
  9. Procéder au montage des lames
33
Q

Nommer des méthodes de prépration de blocs cellulaires

Non-exhaustif

A
  1. Sédiment traditionnel
  2. Agar/gélatine (méthode du CHUQ)
  3. Plasma-thrombin
  4. Colodion Bag
  5. Cellient®
  6. Thermo Scientific Shandon Cytoblock™
34
Q

Quelles sont les étapes de la préparation d’un bloc cellulaire

Selon la méthode par sédiment

A
  1. Transférer le spécimen dans un tube
  2. Centrifuger et décanter le surnageant
  3. Si non-cohésif, ajouter du formol et recentrifuger
  4. Laisser le culot reposer 30-60 min
  5. Retirer le culot du tube et déposer sur du papier histologique
  6. Replier le papier et placer dans une cassette
  7. Faire circuler la cassette dans le laboratoire de patho
  8. Coloration H&E dans le laboratoire de pathologie
35
Q

Quelles sont les étapes de la préparation d’un bloc cellulaire

Selon la méthode d’Agar

A
  1. Transférer le spécimen dans un ou plusieurs tube conique
  2. Centrifuger et décanter le surnageant
  3. Mettre tous les spécimen dans le même tube et ajouter le formol
  4. Centrifuger de nouveau et décanter
  5. Mettre le matériel en suspension et ajouter l’Agar (1:1)
  6. Agiter
  7. Mettre le tube au congélateur 1-2 min ou au frigo 5 min
  8. Démouler et couper en 2
  9. Mettre en cassette et faire circuler
  10. Coloration H&E au laboratoire de pathologie
36
Q

Quelles sont les étapes de coloration d’un frottis en ROSE (Rapid On Site Examination)

A
  1. Déposer une goutte du matériel prélevé sur une lame
  2. Frottis direct conventionnel par superposition d’une 2e lame avec glissement rapide
  3. Frottis fixé à l’alcool
  4. Frottis hémolysé PRN dans l’acide acétique glacial (6-8 trempages)
  5. Frottis coloré avec la coloration rapide Diff Quick
    • Solution #1 Rose (5-6 plongeons)
    • Solution #2 Bleue (5-6- plongeons)
    • Égoutter
    • Lame montée à l’eau (temporaire)
  6. Frottis transporté au laboratoire de cytologie pour être coloré de façon permanente au Papanicolaou
37
Q

Quels sont les critères pour un prélèvement représentatif de ganglion lymphatique en ROSE

A
  • Agrégats lymphoïdes de cellularité modérée (>40 lymphocytes par champs à 400X)
  • Petits lymphocytes isolés diffusément présents (>100 lymphocytes par champs à 100X)
  • Fragments de centres germinatifs
  • Présence d’inflammation granulomateuse
38
Q

Nommez des exemples de prélèvements non-diagnostique ou insatisfaisant en ROSE pour un ganglion lymphatique

A
  • Sang seulement
  • Matériel obscurcis
  • Contamination bronchique abondante
  • Matériel nécrotique seulement
  • Hypocellularité
39
Q

Quelles sont les étapes de la préparation d’un frottis lors d’assistance aux ponctions

(i.e. thyroïde)

A
  1. Avoir une seringue 10 ml et tirer le piston à mi-course
  2. Après le prélèvement du clinicien, coupler l’aiguille du prélèvement avec la seringue
  3. Positionner la seringue avec l’aiguille à angle de 45º vis-à-vis la lame
  4. Mettre une petite goutte de matériel sur la lame
  5. Étaler à l’aide d’une lame selon la technique one-step (= 1 seule lame)
  6. Mettre rapidement le frottis dans un coplin d’alcool
  7. Hémolyser le frottis PRN dans l’acide acétique glacial (6-8 trempages)
  8. Coloration au Papanicolaou
  9. Monter les lames
40
Q

Combien de tubes sont produits pour les LBA

A
  • 1 tube pour la morphologie
  • 1 tube pour les colorations spéciales
41
Q

Quelles sont les règles de manipulation des spécimens pulmonaires

A
  • Travailelr sous l’enceinte de sécurité biologique
  • Toujours porter des gants
42
Q

Quelles sont les étapes de prépartion d’un frottis pour morphologie d’un LBA

A
  1. Centrifuger et décanter le surnageant
  2. Mélanger (ajouter NaCl si trop épais)
  3. Identifier 2 lames au nom du patient
  4. Déposer une goutte sur le 1/3 inférieur d’une lame et étaler par superposition parallèle (= 2 lames)
  5. Fixer au cytospray et laisser sécher
  6. Hémolyser PRN
  7. Colorer au Papanicolaou
  8. Monter les lames
43
Q

Quelles sont les étapes de préparation d’un frottis pour colorations spéciales d’un LBA

A
  1. Centrifuger et décanter le surnageant
  2. Confection de frottis direct ou Cytospin en qté nécessaire pour le nombre de colorations nécessaires
  3. Effectuer les colorations spéciales (laboratoire de cytologie ou de pathologie)
44
Q

Quelle est l’étape clé de la production d’une lame à l’huile rouge

A

NE PAS FIXER le spécimen

Cytologie (STAGE) (2 decks)

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