EXAMEN FINAL Flashcards

1
Q

Niveles de condensación del ADN

A

ADN, Nucleosoma, cromatina, fibra de cromatina, cromosoma

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2
Q

Historia de la biologia molecualr

A

Transformación de bacteriana (1928)
Factor transformante (1944)
Reglas de Chargaff 1950)
Rosalind Franklin (1951)
Bacteriófago T2 (1952)
Watson y Crick (1953)

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3
Q

en que consiste el experimento de 1928 “transformación bacteriana?

A

uno de los experimentos que inicio la investigación sobre la molécula encargada de almacenar la información genética.
para esto Griffith trabajó con dos cepas de bacteria Streptococcus pneumoniae una virulenta S (que presentaba una capsula protectora lisa) y otra no virulenta (carecia de capa protectora, esta era rugosa) R
Para este experimento griffith inyectó hoy a un ratón con la cepa s, después de un tiempo el ratón no presentó ningún tipo de síntoma i/o efectos de la bacteria.
Para la segunda etapa griffith tomó una muestra de la bacteria lisa y la inyectó en los ratones. Hoy al poco tiempo los ratones empezaron a morir
en la tercera etapa GRIFFITH tomó la bacteria lisa y la inhibió exponiéndola a temperaturas muy altas. estas bacterias l inhibidas fueron inyectadas en otro ratón el cual no presentó síntomas de enfermedad.
para la última etapa griffith tomó la cepa no virulenta S y la cepa virulenta inhibida l y aplicó ambas a un mismo ratón, pasado un tiempo este rato murió.
Este experimento demostró que las bacterias eran capaces de transferir su información genética mediante un proceso llamado transformación. De alguna forma las bacterias inhibidass por calor hp lograron pasar su capacidad virulenta a aquellas bacterias que no presentaban esta.

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4
Q

Factor transformante (1944) El experimento de Avery, McLeod y McCarty

A

ayudó a confirmar la naturaleza del material genético y a establecer el ADN como la molécula responsable de la herencia en los seres vivos.
En ese momento, se sabía que la información genética se transmitía de una generación a otra, pero no se conocía la naturaleza exacta de esa información.
El objetivo del experimento fue determinar si el ácido desoxirribonucleico (ADN) o las proteínas eran el componente clave del material genético. Para ello, utilizaron una bacteria llamada Streptococcus pneumoniae, que puede causar enfermedades en los seres humanos
Para este experimento se tomaron las bacterias virulentas inhibidas por calor y se l les agregó 2 enzimas diferentes, a la primera se le agregó una enzima proteasa hoy y a la segunda una enzima de dexosiribonucleasa.
Hp posteriormente se las mezclo a ambas con la cepa de bacteria no virulenta. Y nuevamente se las inyectó en ratones.
Los resultados obtenidos demostraron que, hola sepa y mi vida a la cual se mezcló con desoxirribonucleasa no infectaron al ratón hoy por lo tanto este no murió. Mientras que la cepa virulenta y mi vida mezclada con proteasas sí lograron infectar y matar al individuo.
Esto demostró que; las cepas que presentaban el ADN intacto (aquellas mezcladas con proteasa) aún mantuvieron su código genético por lo tanto pudieron pasarlo de una generación a otra.
Hp pero aquellas que fueron mezcladas con dexosiribonucleasa, hh idealizaron completamente el ADN rompiendo la molécula de esta forma no se pudo traspasar a la información genética

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4
Q

Factor transformante (1944) El experimento de Avery, McLeod y McCarty

A

ayudó a confirmar la naturaleza del material genético y a establecer el ADN como la molécula responsable de la herencia en los seres vivos.
En ese momento, se sabía que la información genética se transmitía de una generación a otra, pero no se conocía la naturaleza exacta de esa información.
El objetivo del experimento fue determinar si el ácido desoxirribonucleico (ADN) o las proteínas eran el componente clave del material genético. Para ello, utilizaron una bacteria llamada Streptococcus pneumoniae, que puede causar enfermedades en los seres humanos
Para este experimento se tomaron las bacterias virulentas inhibidas por calor y se l les agregó 2 enzimas diferentes, a la primera se le agregó una enzima proteasa hoy y a la segunda una enzima de dexosiribonucleasa.
Hp posteriormente se las mezclo a ambas con la cepa de bacteria no virulenta. Y nuevamente se las inyectó en ratones.
Los resultados obtenidos demostraron que, hola sepa y mi vida a la cual se mezcló con desoxirribonucleasa no infectaron al ratón hoy por lo tanto este no murió. Mientras que la cepa virulenta y mi vida mezclada con proteasas sí lograron infectar y matar al individuo.
Esto demostró que; las cepas que presentaban el ADN intacto (aquellas mezcladas con proteasa) aún mantuvieron su código genético por lo tanto pudieron pasarlo de una generación a otra.
Hp pero aquellas que fueron mezcladas con dexosiribonucleasa, hh idealizaron completamente el ADN rompiendo la molécula de esta forma no se pudo traspasar a la información genética

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5
Q

Reglas de Chargaff 1950)

A

Al principio se pensaba que los ácidos nucleicos eran la repetición monótona de un
tetranucleótido, de forma que no tenían variabilidad suficiente para ser la molécula biológica que
almacenara la información. Sin embargo, Chargaff (1950) demostró que las proporciones de las
bases nitrogenadas eran diferentes en los distintos organismos, aunque seguían algunas reglas.
La proporción de Adenina (A) es igual a la de
Timina (T). A = T . La relación entre Adenina y
Timina es igual a la unidad (A/T = 1).
La proporción de Guanina (G) es igual a la de
Citosina (C). G= C. La relación entre Guanina y
Citosina es igual a la unidad ( G/C=1).
La proporción de bases púricas (A+G) es igual
a la de las bases pirimidínicas (T+C). (A+G) =
(T + C). La relación entre (A+G) y (T+C) es
igual a la unidad (A+G)/(T+C)=1.
Estas reglas de Chargaff se cumplen en los organismos cuyo material hereditario es ADN de
doble hélice

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6
Q

Rosalind Franklin (1951)

A

realizó experimentos en los que aplicaba rayos x a muestras de fibras de ADN. Estas fibras de ADN se encontraban en forma de filamentos altamente ordenados. Al medir y analizar los patrones de difracción resultantes de los rayos X dispersados por las fibras de ADN, Franklin pudo deducir información valiosa sobre la estructura molecular del ADN. mostraba un patrón de difracción de rayos X en forma de una mancha en forma de “X”. Esta imagen proporcionó pistas cruciales sobre la estructura helicoidal y la simetría del ADN.

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7
Q

Watson y Crick (1953)

A

propusieron la estructura de doble hélice del ADN. Su modelo reveló cómo las bases nitrogenadas adenina (A) se emparejaban con timina (T) y citosina (C) con guanina (G), proporcionando la base para la replicación del ADN (complementariedad de bases).

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8
Q

Dogma central

A

Enuncia que la síntesis de proteínas recorre un proceso lineal desde la replicación de ADN (donde cada hebra de ADN original sirve como plantilla para la síntesis de una hebra complementaria), la transcripción de la nueva hebra de ADN a ARN mensajero y como este ARN (al unirse las subunidades ribosomales) es traducido en aminoácidos que forman cadenas polipeptídicas.

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9
Q

Sitios E,A,P

A

El sitio A: El sitio A es el sitio en el ribosoma donde se une el aminoacil-ARNt (ARN de transferencia). El ARNt es una molécula adaptadora que lleva un aminoácido específico y se une al codón correspondiente en el ARNm. Durante la síntesis de proteínas, un ARNt con el aminoácido adecuado se une al sitio A del ribosoma, formando una asociación entre el codón del ARNm y el anticodón del ARNt.
Sitio P (Sitio peptidil): El sitio P es el sitio en el ribosoma donde se forma el enlace peptídico entre los aminoácidos. Después de que el ARNt se une al sitio A y se establece la asociación de codón-anticodón, el péptido en crecimiento se transfiere del ARNt en el sitio P al aminoácido en el ARNt en el sitio A. Esto resulta en la elongación de la cadena polipeptídica en crecimiento.
El sitio E (Exit) es el sitio de salida o de salida de la molécula de ARN de transferencia (ARNt) después de que se ha liberado su aminoácido en la cadena polipeptídica en crecimiento. Una vez que se ha formado un enlace peptídico entre el aminoácido en el sitio P y el aminoácido en el sitio A, el ribosoma se desplaza a lo largo del ARNm, lo que lleva a la liberación del ARNt en el sitio E.
Después de liberarse del sitio E, el ARNt vacío se puede recargar con un nuevo aminoácido en el citoplasma y luego volver a entrar en el ciclo de síntesis de proteínas uniéndose al ribosoma en el sitio A.

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10
Q

Complejos de replicación, transcripción y traducción

A

REPLICACIÓN: Sucede en el núcleo. Las helicasas abren el ADN en un punto llamado origen de replicación que forma la burbuja de replicación que se va abriendo de manera bidireccional. Las topoisomerasas van liberando la tensión que se forma en las horquillas de replicación, que son los extremos de la burbuja o mejor dicho la dirección en la que la burbuja se abre.
Las proteínas SSB estabilizan las hebras abiertas. Las primasas producen primers, pequeñas secuencias de ADN que brindan el extremo 3 prima oxidrilo libre que necesitan las ADN polimerasas para sintetizar la cadena complementaria de la hebra molde. Hay una cadena conductora o líder que se sintetiza de manera continua en la dirección de la apertura de la horquilla y una cadena rezagada que se sintetiza de manera discontinua en fragmentos de Okazaki, en dirección opuesta a la apertura de la horquilla.
Las ADN polimerasa leen la hebra molde en sentido 3 a 5 prima, pero le agregan nucleótidos complementarios a esta hebra, es decir sintetizan su hebra complementaria, en sentido 5 a 3 prima. La ADN polimerasa beta cambia los nucleótidos de ARN en los primers por ADN. Finalmente, las ligasas unen las hebras nuevamente.
Tomamos cuenta que la cadena de ADN que contiene el gen que queremos para sintetizar la proteína se denomina cadena molde y la secuencia complementaria a ella es la cadena codificante ¿Por qué?
TRANSCRIPCIÓN: Con la ayuda de factores de transcripción, las ARN polimerasas encuentran la secuencia promotora (zona rica en adenina y timina, por su bajo número de puentes de hidrógeno, es más fácil abrir la cadena) en la hebra complementaria resultante de la replicación (Esta será nuestra nueva hebra molde) y empiezan a agregar nucleótidos complementarios, es decir sintetiza una hebra complementaria a nuestra nueva hebra molde, PERO esta es idéntica a la cadena codificante de la replicación, solo que en vez de Timina se coloca Uracilo.
La ARN polimerasa encuentra la secuencia terminal con ayuda de factores de terminación, el pero el ARN mensajero es inmaduro. Para que este madure, ocurre el corte y empalme en un loop de intrones (regiones no codificantes ricas en adenina que es fácil de ser expulsada por nucleatizacion, la citosina y uracilo atraen a la adenina central para formar bucle por su doble enlace, que, por cuestión de carga, lo jala) y se dejan solo los exones (regiones codificantes para la síntesis de proteína deseada).

Finalmente, se colocan el capuchón 5 prima (metilguanosil) evita nucleasas que pueden degradar el ARN y atrae ribosomas (facilita su unión) y la cola poli-A 3’ (100-300 adeninas) también para evitar la degradación por dnasas para armar un ARN maduro que sale por un poro nuclear.
TRADUCCIÓN : Las subunidades del ribosoma (compuestas por ARN ribosómico y otras proteínas) se añaden al ARN mensajero. La subunidad menor se encuentra con el promotor y busca el codón AUG. Un codón es una secuencia de tres nucleótidos consecutivos en una molécula de ARN mensajero (ARNm) que se traduce en un aminoácido específico. La subunidad mayor presenta tres sitios:
Sitio A (Sitio de aminoácido): El sitio A es el sitio en el ribosoma donde se une el aminoacil-ARNt (ARN de transferencia). El ARNt es una molécula adaptadora que lleva un aminoácido específico y se une al codón correspondiente en el ARNm. Durante la síntesis de proteínas, un ARNt con el aminoácido adecuado se une al sitio A del ribosoma, formando una asociación entre el codón del ARNm y el anticodón del ARNt.
Sitio P (Sitio peptidil): El sitio P es el sitio en el ribosoma donde se forma el enlace peptídico entre los aminoácidos. Después de que el ARNt se une al sitio A y se establece la asociación de codón-anticodón, el péptido en crecimiento se transfiere del ARNt en el sitio P al aminoácido en el ARNt en el sitio A. Esto resulta en la elongación de la cadena polipeptídica en crecimiento.
El sitio E (Exit) es el sitio de salida o de salida de la molécula de ARN de transferencia (ARNt) después de que se ha liberado su aminoácido en la cadena polipeptídica en crecimiento. Una vez que se ha formado un enlace peptídico entre el aminoácido en el sitio P y el aminoácido en el sitio A, el ribosoma se desplaza a lo largo del ARNm, lo que lleva a la liberación del ARNt en el sitio E.
Después de liberarse del sitio E, el ARNt vacío se puede recargar con un nuevo aminoácido en el citoplasma y luego volver a entrar en el ciclo de síntesis de proteínas uniéndose al ribosoma en el sitio A.

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11
Q

Regulación de la expresión génica

A

La regulación de la expresión génica en eucariotas a través de la epigenética es un proceso clave que controla qué genes se activan o desactivan en las células sin cambiar la secuencia del ADN. La epigenética se refiere a cambios heredables y reversibles en la actividad de los genes que no implican cambios en la secuencia de ADN subyacente.
En los eucariotas, la estructura del ADN está asociada con proteínas llamadas histonas, formando una estructura conocida como cromatina. La forma en que el ADN está enrollado alrededor de las histonas puede afectar la accesibilidad de los factores de transcripción y la maquinaria de transcripción a los sitios promotores de los genes. La modificación de las histonas mediante adición o eliminación de grupos químicos, como metilación, acetilación, fosforilación, entre otros, puede alterar la estructura de la cromatina y, por lo tanto, influir en la expresión génica.
La metilación del ADN es una de las modificaciones epigenéticas más estudiadas. La adición de grupos metilo (-CH3) a ciertas regiones del ADN generalmente se asocia con la represión de la expresión génica. Los grupos metilo pueden atraer proteínas que se unen a ellos y reclutan complejos represores que bloquean la transcripción de genes. Por otro lado, la desmetilación del ADN puede permitir la expresión génica.

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12
Q

operon ARA GFP; explicar el experimento con E.coli

A
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13
Q

operon ARA GFP; explicar el experimento con E.coli

A
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14
Q

electroforesis

A

La electroforesis es una técnica de separación y análisis utilizada en biología molecular y bioquímica para separar moléculas cargadas eléctricamente, como ADN, ARN y proteínas, en función de su tamaño y carga. La técnica aprovecha la migración de estas moléculas en un medio acuoso bajo la influencia de un campo eléctrico.
El proceso de electroforesis se lleva a cabo en un gel, que puede ser de agarosa o poliacrilamida, y se realiza en una cámara o caja de electroforesis. El gel forma una matriz porosa que proporciona una resistencia al flujo de las moléculas cargadas, permitiendo su separación.
El gel se coloca en la caja de electroforesis y se forma una red de electrodos en los extremos del gel. Se aplica un campo eléctrico a través del gel mediante la conexión de los electrodos a una fuente de alimentación. El extremo con carga negativa se llama cátodo, y el extremo con carga positiva se llama ánodo.
Las muestras que contienen las moléculas a separar se cargan en un pozo o ranura en el gel cerca del ánodo. A medida que se aplica el campo eléctrico, las moléculas cargadas se desplazan hacia el electrodo opuesto. La velocidad de migración de las moléculas depende de su carga neta y tamaño.
Las moléculas más grandes se desplazan más lentamente a través del gel, ya que encuentran más resistencia debido a la estructura porosa de la matriz. Por otro lado, las moléculas más pequeñas pueden moverse más rápidamente a través del gel y alcanzar el ánodo antes que las moléculas más grandes.
Una vez completada la electroforesis, el gel se retira de la caja y se puede teñir o marcar para visualizar las moléculas separadas. Se fija, Azul de coomasie y solución desteñidora.

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15
Q

PCR

A

Reacción en cadena de la polimerasa. Esta técnica amplifica (hace copias de) segmentos específicos de ADN de manera cíclica, obteniendo grandes cantidades de ADN a partir de una pequeña muestra inicial. Se usa una Taq polimerasa (enzima termoestable) ya que se trabaja con gradientes de temperatura. Sus pasos son:
* Desnaturalización o melting: Se da entre 92-95 grados Celsius. A esta temperatura se separan hebras de ADN porque se desligan los puentes de Hidrogeno entre las cadenas, sin llegar al punto de ebullición.
* Hibridación o annealing: Se da entre 40-60 grados Celsius. Con las cadenas separadas, se baja la temperatura lo suficiente para que los primers (de 18-25 pares de bases de tamaño, max. 30) diseñados para unirse a una secuencia especifica de las hebras
* Extensión: La temperatura optima a la que se da es a 72 grados Celsius, para que la Taq polimerasa se una a los primers y empiece a añadir por complementariedad los nucleótidos libres a la hebra de ADN abierta, hasta donde termina la secuencia especifica a amplificar. Luego, el ciclo se repite.
Dato: Los ciclos se repiten entre 20-45. Tras 20 ciclos 1 millon de copias y tras 30, 1000 millones. Se recomienda 30-35.

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16
Q

SDS-Page

A

La electroforesis en geles de poliacrilamida es uno de los métodos más utilizados para la purificación, análisis y caracterización de proteínas. La técnica permite separar moléculas cargadas y explota diferencias en movilidad cuando se les somete a la acción de un campo eléctrico.
En este procedimiento se incluyen agentes desnaturalizantes de proteínas (SDS), estos agentes se encargan se solubilizar las proteínas y rompiendo las interacciones hidrofobias de estas, desnaturalizándolas, también se unen a la proteína desnaturalizada para otórgale una carga negativa . Cuando esto ocurre la proteína queda en forma de bastoncillos con una serie de moléculas de SDS cargadas negativamente a lo largo de la cadena polipeptídica ocasionando que el complejo SDS-proteína presente una relación carga/masa constante facilitando la separación.
Suelen utilizarse otros agentes como el mercaptoetanol (reduce los puentes disulfuros)

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17
Q

Western Blot

A

es una técnica analítica que determina, cuantifica e identifica una proteína especifica.
El método implica el uso de electroforesis en gel para separar las proteínas de la muestra. Las proteínas separadas se transfieren del gel a la superficie de una membrana. Debido a que el anticuerpo está marcado con una molécula que podremos visualizar, podemos preguntarnos si la proteína de interés se expresa en esta muestra y tener una idea de la concentración, así como la composición y el tamaño es la proteína.

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18
Q

Plásmidos, cosmidos y bacteriófagos

A

Plásmidos: Los plásmidos son pequeñas moléculas de ADN circular que se encuentran en el citoplasma de las bacterias. Son independientes del cromosoma bacteriano y pueden replicarse y transmitirse de manera autónoma dentro de la célula bacteriana. Los plásmidos pueden contener genes que confieren ventajas selectivas a las bacterias, como resistencia a antibióticos, capacidad para metabolizar ciertos compuestos o para producir toxinas. Además, los plásmidos pueden transferirse de una bacteria a otra a través de un proceso llamado conjugación, lo que les permite diseminar los genes que portan a través de una población bacteriana.
Cosmídos: Los cosmídos son moléculas híbridas que combinan características de los plásmidos y los fagos. Son similares a los plásmidos en términos de estructura y función, ya que también son moléculas de ADN circular que pueden replicarse y transmitirse autónomamente en las bacterias. Sin embargo, los cosmídos también contienen secuencias de ADN que los hacen compatibles con la maquinaria de ensamblaje de los fagos, lo que les permite empacar y transferir su ADN a través de la infección de bacterias por bacteriófagos.
Bacteriófagos: Los bacteriófagos, también conocidos como fagos, son virus que infectan bacterias. Los fagos consisten en una cápside proteica que envuelve su material genético, que puede ser ADN o ARN. Los fagos se unen a receptores específicos en la superficie de las bacterias y luego inyectan su material genético en el interior de la célula bacteriana. Una vez dentro, el material genético del fago se replica utilizando los recursos de la bacteria huésped y se ensamblan nuevas partículas de fago. Estas partículas pueden ser liberadas por lisis celular, que resulta en la muerte de la bacteria, o por un proceso llamado liberación lenta, que permite la liberación gradual de los fagos sin destruir la célula bacteriana. Los bacteriófagos desempeñan un papel importante en la transferencia horizontal de genes entre bacterias, ya que pueden llevar fragmentos de ADN bacteriano de una célula a otra durante el proceso de infección.

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19
Q

Primers caracteristicas

A

Su temperatura de annealing debe ser de 50-60 grados Celsius, con una diferencia entre primers de 1 a 5 grados Celsius.
Deben tener solo una secuencia a la que se puedan unir en el ADN molde.
Debe ser de entre 18-25 pb de tamaño. (máximo 30)
Porcentaje de CG entre 40-60% para mayor estabilidad del primer por su triple enlace y alta temperatura para adherirse y evitar que se una en lugares no específicos.
Se debe evitar tener 3 repeticiones consecutivas de una base.
Evitar que los extremos 5’ y 3’ de cada primer sean complementarios para evitar dímeros de primer

20
Q

¿Cómo elijo la secuencia Blanco o a amplificar?

A

Se deben comparar distintas secuencias del genoma de interés sacadas de una base de datos. Luego, con otras herramientas como BioEdit, podemos alinear las secuencias y encontrar una secuencia consenso, que nos mostrara donde hay mayor similitud. Se debe encontrar una región conservada compartida entre las secuencias. Esta región es idéntica en todas las secuencias comparadas, probablemente porque codifica una proteína importante, no tiene mutaciones. De esta región conservada se elige la secuencia blanco (100-200pb según el uso que le demos). Esto debido a que los primers se diseñan para un segmento especifico, que no debe cambiar, o no se podrán unir al ADN molde.

21
Q

¿Para qué sirve un BLAST? y una secuencia consenso?

A

En el caso de la PCR, nos ayuda a comparar secuencias de ADN, encontrando similitudes entre una base de datos de secuencias conocidas. Luego, con otras herramientas como BioEdit, podemos encontrar una secuencia consenso, que son varias secuenciaciones de un mismo segmento alineadas por el programa, que nos mostrara donde hay mayor similitud. Aquí podemos identificar las zonas más conservadas, donde podremos sacar una secuencia blanco. Finalmente, podemos volver al BLAST ya que tiene un programa para diseñar primers al ingresar la secuencia blanco y los parámetros de diseño.

22
Q

¿Qué es una secuencia conservada y que es una zona hipervariable?

A

Secuencia conservada: Región del genoma donde la secuencia de nucleótidos se mantiene constante entre las diferentes secuencias comparadas. Esto indica que esa región del ADN no ha cambiado a lo largo de la evolución y es fundamental para el funcionamiento o la estructura del gen o la proteína codificada por ese gen.
Una zona hipervariable se refiere a una región del genoma donde la secuencia de nucleótidos varía significativamente entre las diferentes secuencias. Estas regiones suelen presentar una alta tasa de mutación y variabilidad genética.

23
Q

Que es fasta

A

FASTA es un formato comúnmente utilizado en bioinformática para representar secuencias de ADN, ARN o proteínas. Un archivo FASTA contiene una secuencia de letras que representan los nucleótidos (A, C, G, T, U) o aminoácidos (representados por una letra de código) de una cadena biológica. Cada secuencia se representa en una línea que comienza con el símbolo “>” seguido de una descripción opcional de la secuencia.

24
Q

Ejemplos de programas bioinformáticos que aprendí a usar.

A

PCR, BLAST nos ayuda a comparar secuencias de ADN, encontrando similitudes entre una base de datos de secuencias conocidas.
BioEdit, podemos encontrar una secuencia consenso, que son varias secuenciaciones de un mismo segmento alineadas por el programa, que nos mostrara donde hay mayor similitud. Aquí podemos identificar las zonas más conservadas, donde podremos sacar una secuencia blanco
BLAST ya que tiene un programa para diseñar primers al ingresar la secuencia blanco y los parámetros de diseño.
NCBI Primer-BLAST: Proporciona un diseño de primers basado en la secuencia de interés y utiliza BLAST para evaluar la especificidad de los primers diseñados.
PRIMER 3: Permite especificar diversas condiciones de amplificación y características deseadas de los primers.
Después de identificar la secuencia de ADN que queremos cortar, a través de programas de bioinformática, analizamos los sitios de reconocimiento de enzimas de restricción que puede haber en la secuencia.
LabTools, evaluamos que enzimas se unen a dichos sitios. Podemos elegir una según la frecuencia de cortes que realiza (el segmento debe tener una longitud optima, no muy corta ni larga). La enzima elegida debe realizar cortes cohesivos (en diagonal), no romos. Esto es para asegurar su adhesión al vector.

25
Q

Fundamentos de la extracción de ADN

A

La obtención de ADN a partir de materiales biológicos requiere la homogeneización de los tejidos, en su caso, el lisado de las células y la inactivación de las nucleasas celulares que podrían digerir el ADN. Esto asegura que la cantidad de ADN intacto obtenido sea la máxima. La homogeneización y la lisis celular deben ser lo suficientemente fuertes para romper el tejido, la pared y las membranas celulares, pero ser suave para preservar el ADN. Los procesos más comunes son:
* Disrupción mecánica, por ejemplo, molienda, ruptura hipotónica o congelacióndescongelación.
* Tratamiento químico, por ejemplo, la lisis con detergentes o agentes caotrópicos.
* Digestión enzimática, con enzimas hidrolíticas para romper la pared celular, como son lisozima, mutanolisina, zimolasa, liticasa o proteinasa K.
La ruptura celular y la inactivación de las nucleasas intracelulares deben ser simultáneas. Se puede utilizar una solución con detergentes para solubilizar las membranas celulares y sales caotrópicas fuertes para inactivar las nucleasas. El ADN y otros componentes celulares como lípidos, azúcares y proteínas, se disuelven en la solución de lisis. El ADN tiene carga negativa debido a los grupos fosfato de su estructura, y esta carga eléctrica es lo que hace soluble a esta molécula
Extracción y purificación del ADN Uno de los métodos más comunes combina la separación de biomoléculas de acuerdo con su polaridad mediante extracción orgánica extracción y la precipitación de biomoléculas mediante la adición de alcoholes:
* Extracción con solventes para eliminar contaminantes. Un ejemplo es la combinación de fenol y cloroformo para eliminar proteínas y lípidos.
* Precipitación de los ácidos nucleicos con isopropanol o etanol, dado que el ADN es insoluble en altas concentraciones de sal y alcohol. precipitado forma unas finas hebras blancas, mientras que el resto de las sustancias permanecen disueltas (Herráez, 2012).

26
Q

¿Qué efecto tienen la concentración de la enzima taq, los dntps y el adn molde y las temperaturas en el termociclador?

A

Concentración de la enzima Taq: La Taq polimerasa es una enzima termoestable ampliamente utilizada en la PCR. Una concentración óptima de la enzima es necesaria para una amplificación eficiente del ADN. Si la concentración de Taq es demasiado baja, la eficiencia de amplificación puede disminuir, lo que resulta en una menor cantidad de producto amplificado. Por otro lado, si la concentración es demasiado alta, puede ocurrir la formación de productos no específicos.
Concentración de dNTPs: Los dNTPs son los bloques de construcción del ADN y se requieren en la PCR para la síntesis del nuevo ADN. Una concentración adecuada de dNTPs es esencial para una amplificación eficiente. Si la concentración de dNTPs es baja, la velocidad de síntesis del ADN se reduce, lo que puede afectar la eficiencia de la amplificación. Por otro lado, una concentración excesiva de dNTPs puede llevar a la formación de productos no específicos.
Concentración de ADN molde: La cantidad de ADN molde utilizado en la PCR puede influir en la eficiencia de amplificación. Si la concentración de ADN molde es baja, la amplificación puede ser menos eficiente debido a una menor cantidad de moléculas disponibles para actuar como plantillas. Por otro lado, una concentración excesiva de ADN molde puede resultar en la amplificación de productos no deseados o en la inhibición de la reacción. La concentración óptima de ADN molde puede variar dependiendo de la muestra y el objetivo de la PCR.
a. Desnaturalización: Esta etapa se realiza a temperaturas elevadas (alrededor de 94-98 °C) y permite la separación de las dos hebras del ADN molde.
b. Anillamiento o apareamiento de cebadores: Se realiza a temperaturas más bajas (alrededor de 50-65 °C) y permite que los cebadores se unan a las secuencias complementarias en el ADN molde.
c. Extensión o síntesis de ADN: Se realiza a temperaturas moderadas (alrededor de 68-72 °C) y permite que la Taq polimerasa sintetice una nueva hebra de ADN complementaria a partir de los cebadores.

27
Q

Enzimas de restricción, que son, tipos, como las utilizo?

A

Son enzimas aisladas de bacterias que reconocen y cortan moléculas de ADN por secuencias de nucleótidos específicas. Ej: Haelll (de Haemophilus aegyptis), EcoRI (Escherichia coli, cepa RY13), BamHI (Bacillus amyloliquefaciens, cepa H).
Tipo 1: Una sola enzima (con 3 subunidades) tiene actividad de restricción (corta) y modificación (metila). Al reconocer la secuencia específica de DNA corta al azar en sitios distintos al sitio de reconocimiento, ya sea río arriba o río abajo. El corte deja extremos cohesivos. Necesitan de ATP para moverse en el DNA, desde el lugar de reconocimiento hasta el sitio de corte (unas 1000 pares de bases aprox.), además de SAM (S-adenosil-metionina) y Mg++ como cofactores.
Tipo 2: Solo tienen actividad de restricción. Otras enzimas llevan a cabo la metilación. El corte es efectuado en el sitio de reconocimiento, o bien, cerca de él, por lo que el corte es resistente y predecible. Por esta característica es que son muy utilizadas para clonamiento de genes, ya que al cortar en sitios específicos se pueden recuperar secuencias conocidas. Sólo requieren Mg++ como cofactor, no necesitan de ATP.
Tipo 3: Se utiliza una enzima oligomérica que realiza todas las actividades enzimáticas. Tienen función de restricción y modificación. Cortan de 25 a 27 pares de bases lejos del sitio de reconocimiento, dejando extremos cohesivos. Requieren dos secuencias de reconocimiento en orientación opuesta en la misma cadena de DNA. Necesitan ATP, Mg++ y SAM (S-adenosil-metionina) como cofactores.
Hay otros sistemas de restricción descubiertos actualmente, como el sistema tipo 4 de E. coli (Eco 571) que consta de una sola enzima que corta únicamente DNA metilado en una secuencia específica, y que ademas metila.

28
Q

ADN recombinante

A

es la tecnología que utiliza enzimas para cortar y unir la secuencia de ADN de interés. el ADNr es una molécula de ADN con la inserción de genes no pertenecientes al mismo, sin embargo esos genes le proporcionan alguna mejora al organismo, mayormente se otorga este mejoramiento para resistencia a ciertos antibióticos o para la síntesis de ciertos compuesto de interés

29
Q

Descifrar PROTEINA a partir de adn molde, transcripción y traducir con ayuda de la tabla de tripletes

A

Me dan una hebra 5 a 3 y yo la transcribo desde 3 (final para adelante), hago las t, u. pero pongo 5 al principio. Busco aug y de ahí empiezo a traducir por triplete (codones) los aminoácidos con ayuda de la tabla hasta encontrar codon stop.

30
Q

Como se el PM de una proteína en un gel de poliacrilamida

A

El marcador de peso molecular se compone de una mezcla de moléculas de diferentes tamaños conocidos, que se utilizan como puntos de referencia en la determinación del tamaño de las moléculas desconocidas de la muestra en cuestión. Al correr tanto el marcador de peso molecular como la muestra en un gel o a través de una columna cromatográfica, se pueden comparar las posiciones de las bandas o picos en relación con los marcadores de peso molecular conocidos y, así, estimar el tamaño de las moléculas en la muestra.

31
Q

Como se evalúa la integridad, calidad y cantidad de ADN de una extracción?

A
  1. Como se evalúa la integridad, calidad y cantidad de ADN de una extracción?
    La integridad del ADN se refiere a la medida en que el material genético ha sido preservado y no ha sido degradado o fragmentado durante la extracción, manipulación y almacenamiento. Las características más importantes para evaluar la integridad del ADN son:
    * La calidad del ADN en términos de su longitud y la presencia de fragmentos rotos o dañados.
    * La pureza del ADN o la ausencia de contaminantes y otros materiales extraños en la muestra de ADN.
    * Un valor A260/280 < 1.6 indica una posible contaminación por compuestos aromáticos como fenoles y proteínas.
    * Un valor A260/280 > 2 podría deberse a la presencia de ARN en la muestra.
    Un ADN de alta integridad tiene una longitud intacta y no tiene roturas ni daños en su estructura, es decir, no se observan manchas a lo largo de la columna que fue sembrada. A su vez, obtiene una relación entre las absorbancias medidas a longitudes de onda 260 y 280 nm, entre los valores de 1.8 (a veces desde 1.6, si no se necesita el ADN para técnicas posteriores como PCR) y 2.
    Por otro lado, un ADN de baja integridad presenta “manchones” a lo largo de la columna que fue sembrada, evidenciando rompimiento en su estructura. Además, obtiene una relación entre las absorbancias medidas a longitudes de onda 260 y 280 nm, menor a 1.6 o mayor a 2.
    Electroforesis en gel de agarosa: Es una técnica ampliamente utilizada para evaluar la integridad del ADN. El ADN se separa por tamaño en un gel de agarosa y se visualiza mediante la aplicación de una corriente eléctrica. Si el ADN está intacto, se observará como una banda continua en el gel. La presencia de fragmentos de ADN de diferentes tamaños o una banda difusa puede indicar una degradación del ADN.
    Espectrofotometría: Se utiliza para determinar la concentración de ADN en una muestra y evaluar su calidad. La absorbancia de la muestra se mide a diferentes longitudes de onda para determinar la concentración de ADN. Además, se calculan las relaciones de absorbancia a diferentes longitudes de onda (como la relación A260/A280) para evaluar la pureza del ADN. Un valor cercano a 1.8 generalmente indica una buena calidad de ADN.
    PCR cuantitativa (qPCR): La qPCR se utiliza para determinar la cantidad de ADN presente en una muestra. Esta técnica amplifica específicamente una región del ADN y utiliza sondas fluorescentes para detectar la cantidad de ADN amplificado. La cantidad de ADN se puede determinar comparando los resultados con una curva estándar de ADN conocido.
32
Q

que significa las siglas PCR

A

reacción en cadena de polimerasa

33
Q

que realiza la técnica de PCR

A

es una técnica enzimática invitro que amplifica y replicar exponencialmente un segmento de ADN de interés.
La PCR implica el uso de fragmentos cortos de ADN sintético, denominados cebadores, para seleccionar un segmento del genoma que se amplificará. La técnica requiere ciclos de calentamiento y enfriamiento para desnaturalizar la doble hélice de ADN y permitir la unión de los cebadores a las secuencias complementarias. Luego, mediante la actividad de una enzima de Taq polimerasa, se completa la replicación de la secuencia de ADN seleccionada a partir de los cebadores.

34
Q

describe los pasos de la PCR

A

Desnaturalización: es el primer paso para dar inicio a la pCR. se debe aumentar la temperatura para permitir el rompimiento de las de los puentes de hidrogeno en las cadenas de ADN. mas que todo el proceso consiste en desnaturalizar la cadena de ADN.
Hibridacion: para llevar a cabo la amplificación es necesario definir con exactitud el segmento blanco donde se iniciara el proceso de replicación, es quí donde entran los primers quienes se unen por puentes de hidorgeno a la cadena molde. segmentos de nucletotdos coplementarios a punto de inicio de la replicación, su objetivo es facilitar la union de la Taq polimerasa para inicar la replicación.
durante este proceso la temperatura baja drasticamente a 55 o 60 °C NO MAS!!
la razón por la cual se mantiene esta temperatura es para impedir que los primer se unan a otros segmentos de ADN o se unan entre ellos mismos (formación de dimeros)
Extension o elongación: Una vez los pirmer esten unidos al segmento blanco definido, es momento de subir las temperatura nuevamente para que la ADN polimerasa haga su trabajo.
La temperatura sube debido a que la Taq polimerasa requiere altas temperaturas (70-72) para iniciar el proceso de replicación.
dentro de este proceso hay la participación de cofactores, Mg que se encargan de ionizar los extremos OH de los primer para que logren unirse con el grupo fosfato de cada nucleótido

35
Q

¿Qué reactivos se necesitan para una PCR? y como sabe que concentración usar en mi mezcla reacción

A

para realizar una PCR se necesitan:
Taq polimerasa
Buffer tris HCl
MgCl2
Primer
dNTPs
Cadena molde
Agua
La concentración de cada reactivo recomendada depende de diferentes factores, incluyendo el tipo de muestra, el equipo utilizado y las características de los cebadores utilizados. Las condiciones óptimas óptimas para la amplificación del ADN y la recomendación de las concentraciones se pueden encontrar en la literatura científica o en los protocolos suministrados por el fabricante de los reactivos utilizados.
Mayormente se toman en cuenta la concentración y volumen que vienen de fabrica para poder llevarla a la concentración necesaria para una cantidad X de volumen (nosotros definimos) o al reves, la cantidad de volumen para tener una concentración X

36
Q

¿Cómo o en base a que se define la temperatura de annealing?

A

la temperatura de annealing se define como la temperatura a la cual los cebadores se unen específicamente a la secuencia del ADN molde que se desea amplificar.
para definir la temperatura correcta para cada ebador se basan en:
1. la longitud del cebador, por ende la cantidad de nucleotidos
2. la concentración de G y C presentes en el cebador; a yor cantidad de estas bases, mayor es la temperatura, esto debido a los puentes triples de hidrogeno formados entre La base y su complemento

37
Q

como elijo la secuencia blanco a aplificar ?

A

para seleccionar unas secuencia
1) primero debemos realizar una recopilación y estudio bibliográfico, esto con el fin de definir el gen que deseamos replicar, por ejemplo, si deseo amplificar un gen capaz de sintetizar una proteína de interés, necsito aislar ese segemtno del gen de la bacteria y/u organimos que se encuentra. aquí entran las preguntas ¿de donde proviene? ¿ porque se eligió? ¿ que caracterisircas presenta el organimos y el gen?
2) cuando se definio el segemnto de interes se debe confirma que dicho segmento es una sevuencia conservada, esto para disminuir la propabilidad de que este segmento mute al ser injertado en otro organimo.
3) se debe tratar que esta secuencia sea única en el gen utilizado, para evitar inconvenientes al momento de anneling.
4) del segmento seleccionado, debemos definir la secuencia blanco (secuecnia que se enceutra dentro del segmento )
5) la secuencia blanca seleccionada debe no ser demasiado largo
6) NO debe contener un alto porcentaje de citocinas y guaninas
7) se debe revisar que las arquillas no formen dimeros
8) debemos realizar otra busqueda bibliografica para analizar la especificidad de los praimer a la secuencia blanco. este procedimeinto se puede realizar con el NCBI-PRIMER-BLAST o el primer 3 plus. aquie veresmos si hay algun primer especifico para este segmento, en caso no haya un primer realmente especifico se recomienda elegir otro segmentó blanco.

38
Q

como se diseña y selecciona los primers

A
39
Q

Para que sirve un BLAST? y una secuencia conceso

A

Basic Local Alignment Search Tool, es un algoritmo informático de alineamientos de secuencias génicas. Se utiliza principalmente para comparar sequências de ADN o proteínas com base de datos buscar sequencias similares anteriormente registradas.
una secuencia consenso.
Secuencia teórica de nucleótidos o aminoácidos en la cual cada nucleótido o aminoácido es él que se presenta más frecuentemente en ese sitio en las diferentes secuencias que ocurren en la naturaleza.

40
Q

Mencione programas para diseñar primer y programas para hacer alineamientos.

A

Para diseñar primers usamos: Primer-Blast, In-SilicoPCR, Primer 3 plus
Para hacer alineamientos : BLAST, T-Coffe (incluido en bio-edit)

41
Q

¿De que depende la concentración de agarosa de un gel? como selecciono el voltaje de corrida? para que sirve el marcador de peso molecular?

A

la concentración de agarosa depende del tamaño del ADN a amplificar, por lo cual, si son fragmentos grandes, la cocnetración debe ser baja y si son framentos pequeños la cocnetración debe ser alta.
A nivel molecular, el gel es una matriz de moléculas de agarosa que se mantienen unidas por puentes de hidrógeno y que forman pequeños poros. a mayor concentración de agarosa, mayor cantidad de puentes se forman y los espacio intramoleculares son de menor área.
el voltaje de corrida se elige en base a la longitud del gel y a la concentración del agarosa
El marcador de peso molecular se utiliza para determinar el tamaño de los fragmentos de ADN en el gel

42
Q

Que carga tiene el ADN? por que? a que polo de la cuba electroforética migrará?

A

el ADN presenta una carga negativa, esto es debido a la presencia del dosforo en su fosfato, durante la electroforesis, el ADN migrará al polo positio

43
Q

Que es una secuencia conservada y que es una zona hipervariable.

A

Una secuencia conservada en genética es una secuencia de ADN que se mantiene relativamente constante en su estructura y secuencia entre diferentes especies o individuos
Por otro lado, una zona hipervariable es una región de ADN en la que puede haber muchas variaciones diferentes en la secuencia de ADN entre diferentes individuos o especies, debido a una menor importancia funcional o una selección natural menos restrictiva

44
Q

A que no referimos como ADN recombinante? Como se realiza?

A

Como su nombre indica, el ADN recombinante es aquel que presenta 2 genes de individuos diferentes ( el gen introducido y el del hospedante) Esta técnica de ingeniería genética permite la creación de moléculas de ADN artificiales que contienen características genéticas específicas de diferentes organismos o especies.
Para realizar un ADN recombinante:
1) Identificar y obtener un gen de interés: Para obtener este fragmento se utilizan enzimas de restricción para poder cortar en puntos específicos tanto en el ADN como en los plásmidos .

2) Colocar el gen dentro de una bacteria: con la ayuda de plásmidos, al tener extremos que coinciden, la inserción del ADN de interés no serpa complicada. Con ayude de la enzima ligasa, se forma un ADN hibrido.
Cuando el plásmido con ADN hibrido este listo, lo único que queda es introducirlo a la célula hospedera, para realizar esto se debe exponer a la célula a algún shock (eléctrico, térmico,etc.) con el fin de permeabilizar la membrana celular permitiendo que el plásmido se incorpore a la célula y se integre en su aADN
3) Cultivar muchas bacterias: la única forma de comprobar si nuestro plásmido fue introducido con éxito es cultivar las células de ADN recombinante en medios específicos determinados por los tipos de genes que presentaba el plásmido
4) As bacterias traducen y trascriben el gen: es necesario colocar un antibiótico e el medio (solo si el plásmido presentaba un gen de resistencia) y otro componente (dependiendo de nuetro plásmido). Si la bacteria introdujo correctamente el plásmido, esta se duplicará con el gen del plásmido incluido otorgándole resistencia a las células, mientras que aquellas que no introdujeron al plásmido morirán debido a la presencia del antibiótico.
Mientras mas tiempo pase, las bacterias con el ADN recombinante permanecerán sore el medio, cuando s desee activar el operón donde incluya el gen de ADn de interés (de un inicio), se puede extraer un poco de estas células y realizar una nueva siembra en las mismas condiciones, pero agregando al medio el inductor que se encargue de activar este proceso .
5) Purificación de las proteínas

45
Q
  1. Que son las enzimas de restricción? describa su funcionamiento y ejemplos de enzima conocidas
A

Las enzimas de restricción son enzimas que reconocen y cortan las moléculas de ADN por secuencias nucleótidos específicas o blancos. Estos sitios de corte pueden ser simétricos o asimétricos, y la mayoría de las enzimas de restricción hacen cortes escalonados o en zigzag, creando extremos cohesivos o extremos romos en los fragmentos de ADN resultantes. Los extremos cohesivos son regiones de ADN de un solo filamento con una base única o un pequeño número de bases que se complementan con el fragmento de ADN que contiene una secuencia complementaria, mientras que los extremos romos son fragmentos de ADN que tienen bordes planos o planos
un ejemplo de enzimas de restriccion son EcoRI; esta es capaz de reconocer la secuencia de 6 nucleotidos y forma extremos cohesivos de 5´en la hebra suerios y 3´ en la hebra inferior.

46
Q

¿Qué utilidad tiene la transformación bacteriana, como se realiza?

A

La transformación bacteriana es una herramienta importante en la ingeniería genética y la biotecnología porque permite la inserción controlada de DNA exógeno en las células bacterianas. Al introducir genes específicos en las células bacterianas, es posible producir proteínas recombinantes y estudiar su función o utilizarlas para producir compuestos de interés industrial o terapéutico.
Para realizar la trasformación se debe llevar a cabo los siguientes pasos
1. Preparación de las células receptoras: las células bacterianas se tratan con solución de calcio para hacerlas “competentes”, es decir, capaces de absorber ADN extraño.
2. Incubación con ADN exógeno: se agrega el ADN extraño (por ejemplo, un plásmido modificado genéticamente) a las células bacterianas competentes, se mezcla y se incuba.
3. Choque térmico: se somete la mezcla a una rápida variación de temperatura para hacer que las células receptoras sean más permeables y absorban más fácilmente el ADN exógeno.
4. Recuperación y selección: después del choque térmico, las células bacterianas se incuban a una temperatura óptima para permitir la expresión del gen del plásmido. Luego se aplican técnicas de selección (por ejemplo, con antibióticos) para identificar y aislar las células que han incorporado el ADN extraño.

47
Q

explique la regulación génica de la práctica con el plásmido pGLO

A