TP bactéries Flashcards

1
Q
Milieu EMB (Eosine Bleu de Méthylène)
Objectif :
A

Identification des coliformes chez les entérobactéries.

Le principe repose sur la capacité des bactéries de cette famille à utiliser ou non le lactose comme source carbonée.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
2
Q
Milieu EMB (Eosine Bleu de Méthylène)
Principe :
A

utilisation d’un milieu différentiel légèrement sélectif

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
3
Q
Milieu EMB (Eosine Bleu de Méthylène)
Identification :
A

Colonies translucides : Lac -
Colonies violettes : Lac +
Colonies en dos de scarabée : Lac +

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
4
Q

Milieu de Kliger - Hajna

Principe:

A

Milieu différentiel contenant:

  • Peptone (20 g/L)
  • Lactose (10 g/L)
  • Glucose (1 g/L)
  • Rouge de phénol (indicateur coloré de pH)
  • Thiosulfate de sodium
  • Citrate de fer
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
5
Q

Milieu de Kliger - Hajna

Objectif:

A

Ce milieu permet la lecture de l’utilisation (par fermentation et/ou voie oxydative) du glucose, du lactose, avec production de gaz dont l’hydrogène H2 et le CO2.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
6
Q

Milieu de Kliger - Hajna
1 . Culot anaérobie = fermentation

  1. Pente aérobie = respiration
  2. H2S & CO2
A
  • Rouge orangée (pas d’acidification) : Glu -
  • Jaune (acidification) : Glu +
  • Rouge : (alcalinisation de la pente) Lac -
  • Jaune : (forte acidification) Lac +
  • Production d’H2S si précipité noir
  • Production de CO2 si décollement de la gélose.
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
7
Q

Ensemencement test ONPG

principe

A

Test utilisé si une entérobactérie a donné une réponse Lactose- lors du test sur milieu de Kligler. En effet, l’incapacité d’une bactérie à métaboliser le lactose peut être dû soit à l’absence d’une β-galactosidase fonctionnelle, soit de lactose perméase (la non fonctionnalité des 2 autres enzymes impliquées dans l’opéron lactose.)
–>Recherche de l’activité β-galactosidase

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
8
Q

Ensemencement test ONPG

Identification

A

La 𝛽 - Galactosidase permet de transformer l’ONPG en Galactose et en ONG (Prtho-NitroPhénol) qui à la capacité d’émettre dans le jaune.

Milieu jaune: ONPG + ; possède la 𝛽 - Galactosidase active => non assimilation du lactose due à absance de lactose perméase fonctionnel

Milieu incolore : ONPG - ; abs 𝛽 - Galactosidasede => non assimilation du lactose due à absance de 𝛽 - Galactosidase perméase fonctionnel ou aussi de absance de lactose perméase fonctionnel

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
9
Q

Ensemencement test ONPG

Protocole (ensemencement)

A
  • Prélèvement de qlq colonies d’un milieu lactosé (Kligler)
  • Réaliser une suspension bactérienne
  • Ajouter un demi disque ONPG
  • Incuber à 37°C
How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
10
Q

Milieu à la phénylalanine (APP)

A

identification des bactéries possédant une phénylalanine désaminase.
La phénylalanine est sous l’action de la phénylalanine désaminase (PDA) transformée en APP, celui-ci lorsqu’il est associé au fer absorbe et émise dans le vert.
En présence de fer, l’APP prend donc rapidement une teinte verte, cela est signe de la présence de phénylalanine désaminase. La bactérie est alors notée PDA + .

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
11
Q

Milieu « Eau peptonée sans Indole » (EPS)

Objectif

A

Identification des bactéries possédant une tryptophanase Cette enzyme permet la production d’Indole à partir de tryptophane.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
12
Q

Milieu « Eau peptonée sans Indole » (EPS)

Protocole et identification

A

Dans une culture liquide, ajouter quelques goutes de réactif de Kovacs :
• Si un anneau rouge apparait, cela caractérise la présence d’Indole et donc de tryptophanase -> Indole + .
• Sinon, absence de tryptophanase, -> Indole -

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
13
Q

Milieu Urée - Indole

Objectif

A

Identification des bactéries possédant une uréase (possibilité de rechercher aussi une tryptophanase)

alcalinisation du milieu, celui-ci virera alors d’une
couleur orangé vers un rose fuchsia, la bactérie est dans ce cas Uréase + .

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
14
Q

Milieu Urée - Indole

Protocole

A

Contient 20g d’urée et 3g de tryptophane/L ainsi qu’un indicateur coloré pour observer le changement de pH : du rouge de phénol.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
15
Q

gélose viande-foie

A

Type respiratoire, Mettre en culture à 37°C pendant 24h en prenant soin de laisser le bouchon légèrement dévissé pour favoriser la réoxygénation graduée de la gélose.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
16
Q

Recherche de l’oxydase

Principe

A

l’identification des bactéries à GRAM -
Test colorimétrique basé sur la capacité de la bactérie à oxyder la forme incolore de dérivées N-méthylés du paraphénylène diamine, en leur forme oxydée de couleur bleu - rouge - violacée.

17
Q

Recherche de l’oxydase

Protocole

A

On dépose une colonies sur le disque Ox ou sur une bandelette, lecture directe :

  • Tache bleu foncé à rouge violacé : Oxydase +/OX +.
  • bandelette/le disque reste quasi incolore : Oxydase -
18
Q

Recherche de la catalase :

Principe

A

discriminer les bactéries à GRAM +
Sous l’action de la catalase, le peroxyde d’hydrogène H2O2 toxique produit pendant la respiration
est éliminé, libérant de l’eau de et de l’oxygène.

19
Q

Recherche de la catalase :

Protocole

A

Sur une lame propre, on dépose une goutte d’eau oxygénée à 10 volumes et on y ajoute une quantité de culture bactérienne.
Si une effervescence se produit instantanément, la bactérie possède la catalase, elle est notée Catalase +.

20
Q

Antibiogramme

Principe

A

s’︎applique à une souche pure, il permet d︎’identifier plusieurs résistances et d’︎évaluer le niveau de sensibilité.
L’efficacité d’une molécule est appréciée par mesure de l’inhibition de croissance et de sa CMI : concentration minimale inhibitrice.

21
Q

Antibiogramme protocole

A

Pour cela, on applique sur la gélose différents disques diffusant un antibiotique.
On mesure ensuite les diamètres d’inhibition et on les rapporte sur le tableau de lecture. Cela permet de déterminer si la souche est sensible (S), résistante (R) ou présente une sensibilité intermédiaire (I).

22
Q

Coloration de Gram

A

La coloration de Gram permet d’apporter des informations sur la composition de la paroi bactérienne mais aussi sur le mode de regroupement des cellules.

23
Q

Coloration de Gram

Mélange contenu dans le flacon « cristal violet »

A

Cristal violet, Eau distillée, Bicarbonate de sodium, Eau distillée

24
Q

Coloration de Gram

Mélange contenu dans le flacon « lugol »

A

Iode, Iodure de potassium, Eau distillée

25
Q

Coloration de Gram

Protocol

A
  1. Fixation
  2. Couvrir la préparation fixée avec quelques gouttes de réactif « cristal violet »
  3. Laver rapidement à l’eau distillée
  4. Couvrir avec quelques gouttes de « lugol ».
  5. Laver rapidement à l’eau distillée 6. Laver à l’alcool à 95°. 7. Laver rapidement à l’eau distillée.
  6. Recolorer avec la solution de « safranine » pendant 1 minute. (Gram - Rose / Gram + violet)
26
Q

Test au KOH

But

A

alternative à la coloration de GRAM est de confirmer rapidement si une bactérie est à Gram positif ou à Gram négatif sans passer par les étapes de coloration et sans utiliser de microscope.

27
Q

Test au KOH

Protocole

A

Déposer une petite goutte d’une solution de KOH 3 % sur une lame de microscope.
A l’aide d’une pipette Pasteur boutonnée, y ajouter une colonie isolée prélevée sur gélose.
Quelques secondes plus tard, soulever légèrement la pipette : si un filament se forme entre la pipette et la lame, la colonie isolée est alors très probablement constituée de bactéries Gram -.