Théorie Flashcards

1
Q

Quels sont les 4 niveaux de structure de sprotéines?

A

1 : aa en chaine peptidique

2 : Hélices alpha et feuillets B, liaison H, amide-carbonyle

3 : Structure 3D par intéractions non covalentes, Ponts disulfure

4 : Assemblage de plusieurs chaines peptidiques

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2
Q

Nommer les 6 agents dénaturants les protéines, les niveaux de structure qu’ils affectent et leur mode d’action

A

1 - Chaleur (2-3-4)
brise les liens H

2 - Acides + alcalis (3-4)
Affecte l’ionisation des caines latérale

3 - Alcools (2-3-4)

1) Destruction des liens H pour la création de nouveaux liens H-chaine latérale (OH)
2) Intéraction avec les liens hydrophobes

4 - Agents oxydants/réducteur

1) Oxydant : Formation de nouveaux ponts disulfure
2) Réducteur : Brise les ponts Di-S (DTT-mercaptoéthanol
3) Ions de métaux lourds : come réducteur (lien métal - S

5 - agents chaotropiques
Infiltration d’eau dans les régions hydrophobes

6 - Détergents
Détuit les intéractions hydrophobes, solubilise la protéine et donne une charge négative.

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3
Q

Différencier une protéine fibreuse d’une protéine globulaire

A

1 - Globulaire : Rapport axial <10 (généralement 3-4).
Chaîne peptidique repliées et enroulé compacte

2 - Fibreuse : Rapport axial >10
Chaine ou groupe de chaînes peptidiques enroulées en spirale/hélice relié par des liaisons H ou covalente.

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4
Q
Quel sont l'utilité de ces produits dans une extraction d'ADN? 
1 - EDTA
2 - SDS
3 - Solvant organique 
4 - ARNase
5 - Ethanol
A

1 - EDTA : Homogénéisation du tissus pour chelater les ions divalents et inhiber les DNAses

2 - SDS : Solubiliser les membranes et dénaturer les protéines

3 - Solvant organique : Purification des acides nucléiques

4 - ARNase : Dégrader l’ARN pour ne pas avoir de contamination

5 - Ethanol : Éliminer les substances de petit poids molécuaire

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5
Q

Quelles sont les étapes de l’extraction d’ADN de levure? (expliquer le pourquoi des étapes)

A

1) Vortex de l’échantillon de levure pour bien suspendre le culot
2 ) Centrifugation, ensuite on jette le surnageant pour seulement garder le culot
3 ) Ajouter un tampon de lyse et des billes de verres et ensuite mettre au vortex = Lyse des cellules
4 ) Centrifugation et isoler la phase aqueuse (qui contient les acides nucléiques)
5 ) Ajouter le solvant organique (phénol/clhoroforme) pour purifier les acides nucléiques et ensuite centrifuger
6) Isoler la phase aqueuse (qui contient les acides nucléiques)
7) Ajouter 1/20 du volume de cette phase de NaCl (neutralise les charge - et favorise l’aggregation des acides nucléiques)
8) Ajouter 2x de volume totale d’éthanol (éliminer les substances de petit pm)
9) Centrifuger et retirer le surgnageant (culot=adn)
10) répeter l’ajout d’éthanol et 9
11) Secher à l’air
12) Ajouter H20 pour utiliser en solution.

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6
Q

Nommer 2 influences de la lecture d’absorbance avec le spectrophotomètre

A

1) pH

2) Concentration de la solution (trop grande ou petite concentration pas précise)

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7
Q

À quoi sert le rapport A260/A280?

A
Déterminer la pureté de notre échantillon d'ADN 
1.8 = ADN pur
2 = ARN pur 
<1.8 = contamination par de sprotéines
>1.8 = contamination par ARN
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8
Q

Qu’est ce que la formule de Layne?

A

formule de quantification des protéines par spectrophotométrie :

mg/mL = 1.55A280 - 0.76A260

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9
Q

Décrire la méthode de bradford (forces, faiblesses, ce qu’elle permet de quantifier, sensibilité, interférence etc)

A
  • C’est la liaison du bleu de coomassie à des aa basiques ou aromatiques (8x + Arg).
  • Sensibilité : 10-200microg/mL
  • Détruit l’échantillon
  • Interférents : Tampons très basiques, SDS, Triton X-100
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10
Q

Décrire la méthode de quantification des protéines spectrophotométrique (forces, faiblesses, ce qu’elle permet de quantifier, sensibilité, interférence etc)

A
  • On quantifie les aa aromatiques (surtout trp/tyr) à 280nm
  • On utilise la formule de Layne ( 1.55A280 - 0.75A260)
  • Interférence : acides nucléiques, purnes, pyrimidines
  • sensibilité : 50-100 microg/mL
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11
Q

Dans quel phase se retrouvent les lipides si on les place dans un mélange de solvant organique et d’eau?

A

Le solvant organique

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12
Q

Quels sont les effets d’une trop grande température ou d’une trop grande concentration d’échantillon sur une CCM?

A

T : Séparation + rapide mais - bonne

Concentration : - Bonne séparation

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13
Q

Nommer les 3 révélateurs utilisés en ccm que nous avons vu dans le cadre du cours (et ce qu’ils révèlent)

A

Bleu de molybdène : bleu = Phosphore
Ninhydrine : mauve = aa + amines
Rhodamine : Fluorescence à 245nm = lipide

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14
Q

Quand on effectue un tamissage moléculaire, quel substance sort en premier?
1 - petit PM
2 - Grand pM

A

2 - Grand PM

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15
Q

Définir le coefficient de distribution en chromatographie

A

Fraction de la phase stationnaire ou diffuse une molécule donnée
Kd = (Ve-Vo)/Vs

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16
Q

Définir le Kav

A

Fraction du volume de gel stationnaire ou diffuse une molécule donnée
Kav = (Ve-Vo)/ (Vt-Vo)

17
Q

Comment détermine-t-on le Vt pour une colonne de chromatogrpahie?

A

Vt= pi(r à la 2) h

Oppsie jai pas lgout de gosser pour faire des beaux signes

18
Q

Décrire les 5 ests biochimiques qui permettent l’identification des sucres

A

1 - Benedict
Le sucre réduit un sel de cuivre = Cu2O brun-rouge
+ (réducteur) = précipité rouge ou vert
- (non-réducteur) = aucun changement

2 - Barfoed
Encore une réaction de sel de cuivre mais les monosaccharide réagissent plus vite que les polysaccharides
+ (monosaccharide) = rouge brique insoluble

3 - Bial
Réaction avec de l’orcinol dans du HCL concentré
+ ( pentose) = bleu-vert
- (hexose) = brun

4 - Seliwanoff
Réaction HCL + acide de résorcinol
+ ( cétose ) = rouge ( pentose cétone ) = vert
- ( aldose) = aucun changement

5 - Iode
réaction avec KI
+ ( glycogène) = brun (amidon) = bleu
- (pas un polysaccharide) = Jaune clair