Técnicas citológicas e histológicas Flashcards

1
Q

Etapas para microscopia óptica

A
  • Obtención de la muestra
  • Fijación
  • Corte
  • Coloración y montaje
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Q

Técnicas especiales para observar células vivas

A
  • Exteriorización y transiluminación de órganos
  • Cámaras transparentes
  • Cultivo de células
  • Micromanipulación y microcirugía
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3
Q

Técnicas especiales para aislar estructuras celulares

A
  • Centrifugación
  • Centrifugación isopícnica
  • Centrifugación zonal
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4
Q

Coloración vital y supravital

A

1- Introducir colorante en el organismo vivo

2- Extraer células de un organismo y colorearlas

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5
Q

1 Obtención de muestra

A
  • Fresca

- Espesor no mayor a 1cm

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6
Q

2 Fijación

A

Impide la autolisis y crecimiento bacteriano

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7
Q

Fijadores más usados

A
  • Formol al 10%
  • Alcohol absoluto
  • Bouin
  • Zenker
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8
Q

Mordientes

A

Sustancias que contienen algunos fijadores que permiten la coloración posterior

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9
Q

3 Corte

A

Láminas de 5 a 10 um de espesor c/micrótomos

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10
Q

Inclusión en parafina:pasos

A
  • Deshidratación
  • Aclaramiento
  • Inclusión en parafina
  • Confección de los bloques
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11
Q

Deshidratación

A

Gradualmente, con alcohol 50 95 100%

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12
Q

Aclaramiento

A

En benzol, xilol, toluol solventes del alcohol y de la parafina.
El aclarante desplaza el alcohol

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13
Q

Inclusión en parafina

A

Se pone la muestras en recipientes con parafina (58°) que se introduce en el tejido y reemplaza al aclarante

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14
Q

Confección de los bloques

A

La pieza se coloca en un molde rectangular con parafina liquida y se deja solidificar para luego cortar

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15
Q

4 Coloración

A

Cortes adheridos al portaobjetos con albúmina son coloreados según necesidades de observación

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16
Q

Coloración hematoxilina-eosina

A
  • Desparafinado de cortes (xilol)
  • Hidratación gradual
  • Coloración H (tiñe núcleos)
  • Lavado en agua (ex. colorante) viraje
  • Coloración E (tiñe citoplasma)
  • Deshidratación gradual
  • Aclarado en xilol
  • Montaje con bálsamo de canadá
17
Q

Obtención de muestra M/E

A

No deben transcurrir más de 4 min

18
Q

Fijación M/E

A

Tetraoxido de osmio y glutaraldehído

Cubos no mayores a 1-2 mm

19
Q

Corte M/E

A

Espesor 20-100 nm c/ultramicrótonos

Inclusión con plástico (epón - araldita)

20
Q

Coloración M/E

A

Tratamiento del corte con vapores o soluciones de metales pesados (acetato de uranilo hidrox de plomo)

21
Q

Exteriorización y transilumunación de órganos

A

Sacar órganos provistos de pedículo vascular que permita coloración

22
Q

Cámaras transparentes

A

Observar células vivas y tejidos provistos de su irrigación sanguínea

23
Q

Cultivo de células

A

Estudio de procesos vitales.

Desarrollar y lograr reproducción de células c/m contraste de fase

24
Q

Micromanipulación y microcirugía

A

Micromanipuladores reducen la amplitud de los movimientos, Se puede hacer microdisección

25
Q

Centrifugación

A

Separación de componentes estructurales y ultraestructurales de células

26
Q

¿En qué consiste la centrifugación?

A

Fraccionar las células -> émbolo dentro de tubo de vidrio-> rompe la membrana y libera el contenido -> centrifugaciones sucesivas +300 fuerza de gravedad

27
Q

Centrifugación isopícnica

A

Separa las partículas en un gradiente de densidades
Particulas de similar tamaño pero diferente densidadb(ac nuc)
-cloruro de cesio

28
Q

Centrifugación zonal

A

Las partículas se mueven a velocidades que dependen de la masa y sedimentan en diferentes zonas del gradiente