Techniques de prélèvement Flashcards

1
Q

Prélèvements sanguins

A

Sur des cadavres, viser les cavités cardiaques ou les veines de très gros diamètre
• Tube sec (rouge)
 Absence d’anticoagulants
 Centrifuger & Décanter
 Obtention de sérum
 Examens sérologiques (infection bactérienne, virologique)
• Tube EDTA (mauve)
 Inhibiteur
 Au labo en 24h maximum
 Examens hématologiques (globules rouges, globules blancs)
• Tube Héparinate Lithium (vert)
 Anticoagulant
 Au labo en 24h maximum
 Examens biochimiques (problème dans la cascade chimique de coagulation)

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2
Q

Bactériologie & Virologie

A

• Utilisation d’un matériel stérile
 Effectuer les prélèvements avant l’ouverture du système digestif
 Matériel stérile
- nouvelle lame (ou désinfection alcool+flamme / chauffage direct)
- seringues ou écouvillons stériles
• Prélèvements
 Organes entiers ou Fragments volumineux (4 cm^3)
 Tube digestif –> anse intestinale ligaturée
• Conservation des prélèvements
 Contenant stérile –> pas de contamination
 Maintenir les prélèvements à une température autour de 4ºC
 Aucun fixateur –> les bactéries doivent rester vivantes (culture)
 Pas de congélation –> entraîne la mort de certaines bactéries
 Délais d’envoi au laboratoire: 12-24 h en été ; 24-48h en hiver

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3
Q

Histologie

A

• Prélèvements
 Matériel adapté pour ne pas abîmer les prélèvements
- couteau affûté ou lame de scalpel (pas de ciseaux–> écrasent)
- Pince à mors plat
 Effectués le plus tôt possible après la mort
 Tranches fines (1 cm épaisseur maxi.) –> fixateur pénètre le tissu
 Tranche incluant portion saine + portion atteinte de l’organe visé
 Effectuer des prélèvements multiples
• Conservation des prélèvements
 Contenant étanche (maintien fixateur)
 Pas de congélation –> entraîne l’altération de certains tissus
 Ajouter le fixateur le plus vite possible
 Fixateur –> Formol 10% (= Formaldéhyde à ~40% –> diluer à 1/10)
 Liquide de Bouin (= Formol + Ac. acétique + Ac. picrique) 24H max.
 Quantité: 10 volumes de fixateur pour 1 volume de tissu prélevé
 Laboratoire d’anatomie pathologique vétérinaire

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4
Q

Parasitologie

A

• Hématologie
 Goutte de sang étalée sur une lame microscope –> paludisme, etc.
• Coprologie
 Prélèvements dans plusieurs fractions du tube digestif
 Prélèvement en grande quantité
 Conservation selon les parasites recherchés
- Maintenir les prélèvements à une température autour de 4ºC
- Fixer 2 g. de fecès dans Formol 10% ou Éthanol 70%
• Dermatologie
 Ectoparasites
 Phanères, Squames
 Cérumen
• Conservation:
- AFA= Alcool 70% + Formol + Acide acétique
- Alcool 70% + Glycérine
- Température ~ 4°C

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5
Q

Toxicologie

A

• Prélèvements
 Dépend directement du toxique & date de contamination suspectés
 Ingestion récente de toxique suspectée
 Contenu stomacal: - 8h après ingestion pour monogatriques -
- 48h après ingestion pour polygatriques
 Intoxication non récente
Foie, Reins  organes de transformation et élimination de déchets
Lard (selon le toxique suspecté)
Encéphale si intoxication nerveuse
• Conservation des prélèvements
 Contenant plastique ET aluminium pour chaque moitié de prélèvement
(certains toxiques interfèrent avec l’une ou l’autre de ces matières)
 Congélation
 Aucun fixateur

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