Techniques de prélèvement Flashcards
Prélèvements sanguins
Sur des cadavres, viser les cavités cardiaques ou les veines de très gros diamètre
• Tube sec (rouge)
Absence d’anticoagulants
Centrifuger & Décanter
Obtention de sérum
Examens sérologiques (infection bactérienne, virologique)
• Tube EDTA (mauve)
Inhibiteur
Au labo en 24h maximum
Examens hématologiques (globules rouges, globules blancs)
• Tube Héparinate Lithium (vert)
Anticoagulant
Au labo en 24h maximum
Examens biochimiques (problème dans la cascade chimique de coagulation)
Bactériologie & Virologie
• Utilisation d’un matériel stérile
Effectuer les prélèvements avant l’ouverture du système digestif
Matériel stérile
- nouvelle lame (ou désinfection alcool+flamme / chauffage direct)
- seringues ou écouvillons stériles
• Prélèvements
Organes entiers ou Fragments volumineux (4 cm^3)
Tube digestif –> anse intestinale ligaturée
• Conservation des prélèvements
Contenant stérile –> pas de contamination
Maintenir les prélèvements à une température autour de 4ºC
Aucun fixateur –> les bactéries doivent rester vivantes (culture)
Pas de congélation –> entraîne la mort de certaines bactéries
Délais d’envoi au laboratoire: 12-24 h en été ; 24-48h en hiver
Histologie
• Prélèvements
Matériel adapté pour ne pas abîmer les prélèvements
- couteau affûté ou lame de scalpel (pas de ciseaux–> écrasent)
- Pince à mors plat
Effectués le plus tôt possible après la mort
Tranches fines (1 cm épaisseur maxi.) –> fixateur pénètre le tissu
Tranche incluant portion saine + portion atteinte de l’organe visé
Effectuer des prélèvements multiples
• Conservation des prélèvements
Contenant étanche (maintien fixateur)
Pas de congélation –> entraîne l’altération de certains tissus
Ajouter le fixateur le plus vite possible
Fixateur –> Formol 10% (= Formaldéhyde à ~40% –> diluer à 1/10)
Liquide de Bouin (= Formol + Ac. acétique + Ac. picrique) 24H max.
Quantité: 10 volumes de fixateur pour 1 volume de tissu prélevé
Laboratoire d’anatomie pathologique vétérinaire
Parasitologie
• Hématologie
Goutte de sang étalée sur une lame microscope –> paludisme, etc.
• Coprologie
Prélèvements dans plusieurs fractions du tube digestif
Prélèvement en grande quantité
Conservation selon les parasites recherchés
- Maintenir les prélèvements à une température autour de 4ºC
- Fixer 2 g. de fecès dans Formol 10% ou Éthanol 70%
• Dermatologie
Ectoparasites
Phanères, Squames
Cérumen
• Conservation:
- AFA= Alcool 70% + Formol + Acide acétique
- Alcool 70% + Glycérine
- Température ~ 4°C
Toxicologie
• Prélèvements
Dépend directement du toxique & date de contamination suspectés
Ingestion récente de toxique suspectée
Contenu stomacal: - 8h après ingestion pour monogatriques -
- 48h après ingestion pour polygatriques
Intoxication non récente
Foie, Reins organes de transformation et élimination de déchets
Lard (selon le toxique suspecté)
Encéphale si intoxication nerveuse
• Conservation des prélèvements
Contenant plastique ET aluminium pour chaque moitié de prélèvement
(certains toxiques interfèrent avec l’une ou l’autre de ces matières)
Congélation
Aucun fixateur