Principe micro

Question 1

Principe vf

Answer 1

déterminer dans quelle zones les bactéries ont poussé

Question 2

principe hugh et leifson

Answer 2

contient du bleu de bromothymol qui permet de mettre en évidence la production d acide lors de la fermentation du sucre présent

Question 3

PCA

Answer 3

Toute les bacteries poussent sur ce milieux pas selectif

Question 4

bea

Answer 4

Le BEA est un milieu gélosé utilisé pour la détection confirmatoire et le dénombrement des entérocoques intestinaux

l esculine avec fer qui fait precipite noir

Question 5

BCP

Answer 5

Milieu d identification non selectif
grace au lactose

Question 6

Cetrimide

Answer 6

Utilisé pour l’isolement et l’identification présomptive de Pseudomonas aeruginosa. Le cétrimide est un ammonium quaternaire qui inhibe la croissance de la plupart des autres espèces bactériennes. Pseudomonas aeruginosa colore ce milieu en bleu-vert par production de pyocyanine.

Question 7

Drigalsk

Answer 7

Milieu selectif d identification
isole les bacteries gram -
possede du lactose

Question 8

Chapman

Answer 8

est utilisé pour l’isolement des Staphylocoques pathogènes qui donnent des colonies jaunes par fermentation du mannitol et virage du rouge de phénol. Sa forte teneur en chlorure de sodium inhibe la croissance de la plupart des autres espèces.

Question 9

gelose muller hinton

Answer 9

est un milieu standardisé recommandé pour l’étude de la sensibilité aux antibiotiques des bactéries peu exigeantes

Question 10

millieu kliger

Answer 10

le principe du milieu repose sur son aptitude des enterobacteries a fermenter ou non le lactose, le glucose a produire du gaz et sulfure d hydrogene

Question 11

Milieu simmons

Answer 11

Repose sur l’aptitude de certains micro-organismes à pouvoir se développer avec le citrate comme seule source de carbone et d’énergie

Question 12

clark et lubs

Answer 12

Le milieu de Clark & Lubs permet de différencier les Enterobacteriaceae avec les réactions au rouge de
méthyle et de Voges-Proskauer. Le rouge de méthyle différencie le processus de fermentation, il est
jaune au-dessus d’un pH de 6,3 et rouge en dessous de 4,2. La production d’acetylméthylcarbinol se
révèle par l’apparition d’une coloration rouge en surface du milieu.

Question 13

LDC

Answer 13

Les enzymes ADH, LDC et ODC catalysent respectivement la décarboxylation de l’arginine, de la lysine et de l’ornithine présent dans le milieu.

Question 14

milieu tsc

Answer 14

Les microorganismes sulfito-réducteurs réduisent le sulfite de sodium en sulfure, provoquant avec le citrate ferrique
un précipité noir de sulfure de fer autour des colonies.
Pour effectuer le dénombrement spécifique des Clostridium perfringens, il est recommandé d’incuber le milieu à 37°C
et de procéder ensuite à la confirmation des colonies caractéristiques.
La flore contaminante est presque totalement inhibée par la D-cyclosérine qui diminue également la taille des halos
noirs se développant autour des colonies.

Question 15

Milieu slanetz et bartley

Answer 15

Milieu utiliser pour le dénombrement des entérocoque
L’azide de sodium permet d’inhiber la croissance des microorganismes à Gram négatif.
Le TTC (chlorure de 2,3,5-triphényltétrazolium) est un indicateur de la croissance bactérienne. Incolore à l’origine, il
est réduit en formazan insoluble à l’intérieur de la cellule. Cette réaction se manifeste par l’apparition de colonies de
couleur rouge à marron.

Question 16

milieu cn

Answer 16

La peptone pancréatique de gélatine et l’hydrolysat acide de caséine constituent les substrats nutritifs nécessaires à
la multiplication rapide des Pseudomonas.
La production de pyocyanine (pigment bleu, non fluorescent, soluble dans l’eau et le chloroforme) est stimulée en
présence de chlorure de magnésium et de sulfate de potassium.
Les levures contaminantes sont inhibées par le cétrimide.
L’acide nalidixique bloque la réplication de l’ADN des germes sensibles à cet agent antibactérien.
Les colonies présentant une pigmentation bleu-vert sont confirmées comme Pseudomonas aeruginosa.
Les autres types de colonie sont présumés Pseudomonas aeruginosa et doivent être confirmés.

Question 17

Milieu ttc

Answer 17

Les coliformes présentent des colonies de coloration jaune ou orangée, à l’intérieur d’un halo jaune visible sous la
membrane. Celui-ci est provoqué par l’acidification du lactose en présence de l’indicateur coloré, le bleu de
bromothymol.
Le Tergitol 7 inhibe la croissance des microorganismes à Gram positif, limite l’envahissement par les Proteus et
favorise la récupération des coliformes.
Le TTC (chlorure de 2,3,5 triphényltétrazolium) est présenté sous forme de supplément lyophilisé. Les bactéries
réduisant le TTC (incluant Proteus et Pseudomonas) présentent des colonies rouges, dû à la formation de formazan
insoluble.
Les germes qui ne fermentent pas le lactose présentent des colonies avec un fond de gélose bleu.

Question 18

milieu rapid ecoli

Answer 18

Le principe du milieu repose sur la mise en évidence simultanée de deux activités enzymatiques : la β-D-Glucuronidase (GLUC) et la β-D-Galactosidase (GAL). un substrat spécifique de la GAL qui entraîne la coloration bleue des colonies positives pour cette enzyme.

Question 19

Lactose broth

Answer 19

e Bouillon Lactosé est un milieu largement utilisé pour la recherche des coliformes. Il est
recommandée dans de nombreuses méthodes standardisées d’analyses des aliments, des laitages, de
l’eau et des produits pharmaceutiques.
L’utilisation d’inoculum supérieur à 1 ml implique l’emploi du Bouillon Lactosé double concentration (ou
plus) pour assurer le maintien d’un taux suffisant d’éléments nutritifs.

Question 20

milieu emb

Answer 20

La gélose EMB contient deux colorants, l’éosine et le bleu de méthylène qui inhibent la croissance de nombreux microorganismes Gram-positifs qui l’accompagnent. Ces colorants servent d’indicateurs différentiels en réponse à la fermentation des glucides.

Ezoic

Les bactéries gram-négatives fermentant le lactose acidifient le milieu et, dans des conditions acides, les colorants produisent un complexe violet foncé qui est généralement associé à un éclat métallique vert. Cet éclat vert métallique est un indicateur de la capacité vigoureuse de fermentation du lactose et/ou du saccharose typique des coliformes fécaux.
Une plus petite quantité de production d’acide, qui est le résultat d’une fermentation lente (par des organismes à fermentation lente du lactose), donne une coloration brun-rose de la croissance.
Les non-fermenteurs de lactose, tels que Shigella et Salmonella, forment des colonies transparentes, incolores ou ambrées qui se distinguent facilement des coliformes.
Le lactose et le saccharose sont les sources d’énergie en étant des glucides fermentescibles.

Le phosphate tamponne le milieu.

Question 21

Milieu blbvb

Answer 21

Le Bouillon Lactosé à la Bile à 2% au Vert Brillant (BLBVB) est recommandée pour la recherche des
coliformes dans l’eau, les aliments et les produits laitiers.

Question 22

Micro plaque mug

Answer 22

L’hydrolyse du MUG par E. coli produit de la 4-méthylumbelliférone, une substance fluorescente bleue, détectée à l’aide d’une lampe UV. Les puits fluorescents sont comptés pour chaque dilution, puis une analyse statistique permet de dénombrer les bactéries présentes. Le milieu de culture contient du peptone et de la salicine pour favoriser la récupération, tandis que le Triton X aide à disperser les microorganismes. L’incubation à 44 °C inhibe la croissance des contaminants. Ce protocole offre une détection sensible et spécifique d’E. coli dans l’eau, basée sur son activité enzymatique distinctive.

Question 23

VRBG

Answer 23

La présence simultanée de cristal violet et de sels biliaires assure l’inhibition des bactéries à Gram positif.
La dégradation du glucose en acide est révélée par le virage au rouge de l’indicateur de pH, le rouge neutre.

Question 24

VRBL

Answer 24

Le principe du milieu repose sur l’aptitude des coliformes à fermenter le lactose. Le milieu est rendu inhibiteur vis-à-vis des bactéries Gram positives et de certaines bactéries Gram négatives par la présence simultanée du cristal violet et des sels biliaires

Question 25

TBX

Answer 25

Le BCIG (acide 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-glucuronique) est un substrat chromogène. La plupart des souches
d’Escherichia coli possédant une β-D-glucuronidase agissent par clivage du BCIG, entraînant la coloration des
colonies en bleu à bleu vert selon le mécanisme réactionnel suivant :
Précipité bleu de dichloro-dibromo indigo
Il est important de noter que tous les Escherichia coli ne possèdent pas de β-D-glucuronidase et en particulier le
sérotype entérohémorragique O157 qui présente des colonies blanches.
Les sels biliaires inhibent la croissance des microorganismes à Gram positif et favorisent la récupération des
Escherichia coli. L’incubation réalisée à 44 °C et impérativement limitée à 24 heures permet d’inhiber la croissance de
la majorité des microorganismes contaminants.

Question 26

RVS

Answer 26

La forte concentration en chlorure de magnésium ainsi que la présence de vert malachite ralentissent la croissance
des germes autres que les salmonelles.
Les cultures de Salmonella Typhi et Paratyphi peuvent être ralenties par le vert malachite, qui est aussi inhibiteur
pour Shigella.

Question 27

mkttn

Answer 27

Les sels biliaires et le vert brillant inhibent principalement le développement des microorganismes à Gram-positif.
La production extemporanée de tétrathionate, résultant de l’action de la solution iodo-iodurée sur le thiosulfate de
sodium, provoque l’inhibition des coliformes et de la plupart des bactéries intestinales.
La novobiocine inhibe le développement des Proteus.
Le carbonate de calcium neutralise l’acide sulfurique qui est produit lorsque le tétrathionate est réduit. L’effet résultant
est de favoriser le maintien du pH.

Question 28

XLD

Answer 28

Le désoxycholate de sodium assure l’inhibition de la flore contaminante à Gram positif.
Le xylose est fermenté par presque tous les germes entéropathogènes, à l’exception des Shigella qui sont ainsi
différenciées des autres bactéries. Après avoir utilisé le xylose, les salmonelles décarboxylent la lysine (par
l’intermédiaire de leur lysine-décarboxylase) en cadavérine, ce qui provoque une augmentation de pH. En milieu
devenu alcalin, les colonies de salmonelles se présentent sous le même aspect que les shigelles.
Les colonies qui se développent sont de couleur rouge en présence de l’indicateur, le rouge de phénol.
L’addition de lactose et de saccharose au milieu permet aux coliformes qui décarboxylent la lysine de produire un
excès d’acidité faisant virer l’indicateur au jaune, ce qui favorise leur différenciation.
En milieu alcalin et par réduction du citrate ferrique ammoniacal, les germes pathogènes producteurs de sulfure
d’hydrogène se manifestent par un noircissement qui est dû à l’apparition de sulfure de fer au centre des colonies.
Les germes non pathogènes qui ne décarboxylent pas la lysine produisent une acidification résultant des
fermentations sucrées. L’abaissement de pH s’oppose au noircissement des colonies.

Question 29

HEKTOEN

Answer 29

La gélose Hektoen est un milieu sélectif différentiel des bactéries entéro-pathogènes, particulièrement de
Salmonella et de Shigella. La composition du milieu permet la différenciation des colonies fermentant
rapidement un des 3 sucres (virage du bleu au rouge-saumon) et/ou produisant de l’H2S (centre noir)

Question 30

BAIRD PARKER

Answer 30

La gélose Baird-Parker est recommandée pour la recherche et la numération des staphylocoques
coagulase positive. Son utilisation est recommandée par la pharmacopée européenne et américaine et
pour la recherche de Staphylococcus aureus dans les aliments (méthode AFNOR).

Question 31

GELOSE CPS

Answer 31

dentification directe en raison de substrats spécifiques tels que la bêta-glucuronidase (β-GUR), la bêta-galactosidase (β-GAL) et la béta-glucosidase (β-GLU)
Pas de test complémentaire nécessaire pour l’identification de E.coli
Identification des entérocoques spp.
Identification des proteus spp.
Orientation pour les autres pathogènes urinaires
Pour le groupe KESC, pour le Staphylococcus saprophyticus et le Streptococcus agalactiae.

Question 32

milieu mannitol mobilité nitrate

Answer 32

Le milieu Mannitol-Mobilité-Nitrate est utilisé pour l’identification présomptive des entérobactéries basée
sur la fermentation du mannitol, la mobilité et sur la réduction des nitrates en nitrites.

Question 33

UREE INDOLE

Answer 33

Un milieu urée indole est un milieu permettant l’identification de germes, particulièrement des entérobactéries, par la recherche d’une enzyme appelée uréase ce qui provoque une réaction acidifiant le milieu qui fait virer l’indicateur coloré.

Question 34

CATALASE

Answer 34

La catalase est une enzyme qui catalyse la dégradation du peroxyde d’hydrogène (H2O2), produit toxique du métabolisme aérobie de nombreuses bactéries, en H2O et 1/2 O2.