Mycologie Flashcards

1
Q

Saprophytes

A

Décomposeurs de: bois, carcasses

Ds environnement et sont source de contamination pour humain

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2
Q

Saprophyde dimorphes

A

Champignons qui ont dév. capacité infecter tissus humain en adoptant forme diff.
ex: Blastomyces dermatitidis, Coccidioides immitis, Histoplasma capsulatum

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3
Q

Saprophytes opportunistes

A

Champ. et levures qui peut causer infections superficielles ou profondes chez Pt affaiblis
ex:
Candida albicans: tout le monde petite quantité sur peau
Cryptococcus neoformans: excrements de pigeons, méningites chez immunocompromis
Aspergillus fumigatus: presque impossible enlever sur poumons
Mucorales

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4
Q

Parasites

A

Vivent au dépend de l’hôte vivant comme agents d’une mycose humaine ou animale
Champignons suivants:
- Ceux ds FN qui peuvent devenir pathogènes opportunistes, infection endogène (mess avec pH vaginal peut faire infection de C. albicans
- Parasites obligatoires ex: dermatophytes

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5
Q

Symbiose

A

Association bénéfique réciproque avec autre être vivant (ex: lichens = champ + algue)

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6
Q

Morpho de champignons

A

Partie du régne mycètes
Pluricel ou unicel
Pas de chlorophylle donc incapable photosynthèse
Hétérothrophes: dégrade composés org. pour énergie
Produisent spores diff. formes qui permettent ID
3 groupes:
1. Champignons macroscopiques

  1. Levures: unicell., reproduisent par bourgeonnement (blastoconidies), colonies crémeuses comme bactéries sur géloses
  2. Moisissures: pluricell., reproduisent par allongement des hyphes qui spécialisent et forment des organes de fructification qui émettent spores, colonies filamenteuses sur gélose
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7
Q

Hyphes

A

Hyphes dans thalles nommés selon fonction dans milieu
Hyphes végétatifs: couvrent surface nutritive en quête de nourriture
Rhizoides: sousterrains qui enfoncent dans milieu et forment pseudoracines
Hyphes aériens: portent organes de fructification qui produisent et libèrent spores

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8
Q

Thalles filamenteux sur gélose

A

Forment colonies:
diamètre variable
plus ou moins colorés
aspect: ouaté (bcp de hyphes aériens), plâtreux/granuleux/poudreux (grains de sucre en poudre, produit bcp de conidies), glabre (très peu hyphes aériens et conidies, surface lisse), excentrique et centrifuge (centre vers périphérie et explique lésions arrondies sur peau de Pt infectés par dermatophytes)

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9
Q

Provenance d’un thalle

A

De la germination d’une spore produite par thalle adulte de même espèce
Spore sur milieu nutritif –> spore produit tube ou se trouve cytoplasme et noyaux –> noyaux divisent –> parois cellulaires élaborent pour former filaments qui forment le thalle
Thalle mature produira spores qui seront propagées dans environnement pour trouver nouveau habitats

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10
Q

Reproduction

A

Production de spores qui sont issues de reproduction sexuée ou asexuée
sexuée: fécondation entre 2 gamètes, ces spores pas souvent obs. sur milieux de culture (rarement utilisé pour ID)
asexuée: tous champ. en croissance sur gélose et forme utilse pour ID.. ces spores sont nommés conidies

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11
Q

Différentes sortes de conidies

A
Aleurioconidies (AKA aleurispores)
Arthroconidies (AKA arthrospores)
Blastoconidies (AKA blastospores)
Chlamydoconidies (AKA chlamydospores)
Phialoconidies
Sporangiospores
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12
Q

Aleurioconidies

A

Spore terminale
- paroi, couleur, forme et dimension les rapprochent des conidies
Microaleuries et macroaleuries
Aleuries seulement dans cultures de dermatophytes
ex: Trichophyton, Microsporum, Epidermophyton

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13
Q

Arthroconidies

A

Spores fréquentes formées par fragmentation de hyphe segmenté
Paroi de chaque segment de hyphe épaissit légèrement et angles arrondissent
2 types:
1. simples: chaque cloisson forme arthroconidie ex: Geotrichum, Trichosporon
2. alternée: entre chaque arthroconidies il y a une cellule disjoctive ex: Coccidiodes immitis (très dangereux)

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14
Q

Blastoconidies

A

Structure produite par bourgeonnement
Cellules levuriformes donnent naissance à cellule fille (blastoconidie) par division cellulaire nommée bourgeonnement
Peuvent rester attacher les unes aux autres pour former filament appelé pseudohyphe (clamp)
Peuvent aussi former une hyphe (pas de clamp) ex: Candida

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15
Q

Chlamydoconidies

A

Élément de filament rond avec paroi épaisse et un cytoplasme dense chargé de matière de réserve (lipides)
Spores résiste conditions difficiles
Spores répandues chez plusieurs champ. microscopique
Retrouvé sur pseudomycélium de C. albicans ainsi que sur les hyphes des dermatophytes

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16
Q

Phialoconidies

A

Conidies organisées en chaîne et produites des phialides (structures spécialisée placée sur vésicule sur extrémité de hyphe)
Spores externes qui détachent facilement des hyphes qui les ont formés ex: Penicillium (sur pain), Aspergillus

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17
Q

Sporangiospores

A

Spores emprisonnées dans vésicule nommée sporange
Sporange situé à l’extrémité d’un hyphe specialisé nommé sporangiophore
Quand mature: sporange dilate et éclate sous effet de pression interne et libère sporangiospores ex: Rhizopus, Mucor, Zygomycota

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18
Q

Pathogénicité

A

300 espèces pathogènes
infection par champ. = mycose
3 niveaux:
1. Superficielles: cutanée (peau, poil, cheveux, ongle), muqueuse
2. Sous-cutanée ou sous muqueuse
3. Profonde: sang, urine, LCR, autres liquides bio

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19
Q

Mycoses cutanées

A

Pied athlète (T. rubrum)
Teigne (T. tonsurans, Candida)
Tous les sites: C. albicans
FN = Staph. coag neg, Strep viridans, levures, etc.

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20
Q

Muqueuses

A

Nez, bouche (C. albicans = muguet), vagin (C. albicans = monoliase), gorge
Plus fréquent = C. albicans (levure)
Doit distinguer de levures FN
2 indices pour faire différence:
1. # (agent pathogène en plus grand #)
2. GB (qui indique rnx inflam. –> hôte se défend)
Prélèvement avec écouvillon ou spatule abaisse-langue et faire état frais
ID avec symptômes et observation au microscope du spécimen (rare de faire culture)

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21
Q

Sous-cutanées

A

Entrée: blessures au niveau de la peau, spore ou fragment de hyphe pénètre
ex: Sporothrix schenckii associé au jardinage

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22
Q

Profondes

A

Entrée: inhalation de spore (conidie) qui envahit voies resp. inf. et déclenche infection pulmonaire
Most du temps pas de symptômes ou symptômes non spécifiques (toux)
Symptômes dans cas suivants:
1. immunocompromis (schroom dans tous organisme par sang)
2. immunocompétent suite a inhalation massive de spores (ex: démolitions)
ex: Blastomyces dermatidis, Candida, Aspergillus

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23
Q

Examen microscopique direct

A

Utilité:

  1. Donne rapport préliminaire rapide au médecin
  2. Detecte rapidement structures fongiques (hyphes, pseudohyphes, levures)
  3. Facilite interprétation de culture en comparant résultats avec culture
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24
Q

Colo: calcofluor

A

Méthode la plus utilisée
Fluorochrome non-spécifique avec affinité pour chitine dans paroi cellulaire de schrooms (fluo vert pomme)
Besoin microscope à fluorescence
Fibre coton captent colo et peuvent être confondues avec hyphes

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25
Colo: bleu de coton, lactophénol
``` Pour cheveux et leurs bulbes Colore hyphes (seront plus facilement observables) ```
26
Colo: fungifluor
Mise en évidence levures et mycoses dans spécimens respiratoires Fluorochrome non-spécifique affinité pour chitine dans paroi cellulaire de schrooms Fluo vert pomme aussi Besoin microscope fluo
27
Colo: PAS
Ac. périodique de Schiff Colore certains polysaccharides dans paroi cellulaire des schrooms Rose Méthode plus longue, mais permet colo permanente qui peut être conservée
28
Colo avec traitement au KOH
Pour ongles et squames cutanées KOH 10% pour squames cutanées KOH 30% (plus DMSO) pour ongles KOH dégrade débris de PR- et dissout ciment qui retient les cellules kératinisées ensembles Permet alors de repérer plus facilement hyphes et arthrospores (pas bcp alors bon de pouvoir les spotter)
29
Milieux de culture: Sabouraud glucosé ou Sabouraud dextrose
Routine Milieu de base pour ID schrooms Si dans bouche ajoute chloramphénicol pour inhiber FN Peut ajouter extrait de levures 0.5% pour stimuler croissance des dermatophytes pH 5.5 qui inhibe croissance quelques bactéries de FN
30
Milieux de culture: Sabouraud modifié
Plus utilisée que l'original Diminue glucose à 1% ce qui augmente pH à 7 (favorise croissance et sporulation des dermatophytes) Peut aussi éliminer glucose pour conserver les dermatophytes
31
Milieux de culture: Mycosel (BBL) ou Mycobiotic (Difco)
Même géloses, différentes compagnies Milieux sélectif Additionné de: RT **Cyclohexamide: antifongique pour inhiber certains schrooms de l'air et levures comme Cryptococcus neoformans Chloramphénicol: antiB qui inhibe croissance de bactéries
32
Milieux de culture: PCB
Patate carotte bile Milieu pauvre sans sucre Pour sporulation (chlamydospores) et mise en évidence de pseudohyphes par C. albicans Colonies développent meilleure colo (critère imp. pour ID moisissures) ou PDA (patate dextrose agar): qui permet d'observer morpho typique de schrooms
33
Milieux de culture: corn meal ou farine de maïs
Ou Oxgall qui a la même fonction Pour sporulation (production de chlamydospores) Peut être additionné de Tween 20
34
Durée d'incubation
1-4 jours pour levures 1-2 semaines pour moisissures à croissance rapide jusqu'a 6 semaines pour moisissures à croissance lente
35
ToC d'incubation
25-30 oC pour moisissure d'infections superficielles | 35 oC pour schrooms d'infections profondes
36
Atmosphère d'incubation
Aérobiose pour moisissures et certaines levures | Ana facultative: levures
37
Colonies levuriformes
Consistance crémeuse et croissance rapide (1-4 jours) comme colonies bactériennes Composées de levures de forme ovale et bourgeonnante qui ne produisent pas de vrai filament
38
Colonies filamenteuses ou thalliques
Texture laineuse à sèche Composées de cellules filamenteuses appelées hyphes Certaines hyphes recouvrent surfaces, d'autres sont aériens hyphes + organes de fructification = thalle
39
Schrooms dimorphes
Capacité de former colonies de type levuriforme à 35 oC et filamenteuse à 22 oC
40
ID
``` Souvent limitée au genre ID espèce pour: C. albicans Cryptococcus neoformans Levures des sites normalement stériles Dermatophytes Saprophytes dimorphes (facile puisque usually seulement une espèce dans le genre) Saprophytes opportunistes: quelques espèces d'Aspergillus (A. fumigatus, A. niger, A. terreus) ```
41
S&S : colonies levuriformes
Autour d'une flamme Attn aux dimorphes: Blastomyces dermatidis, Coccidioïdes immitis et Histoplasma capsulatum (pathogènes levuriformes à 35 oC et filamenteux à 25 oC)
42
S&S: colonies filamenteuses
Thalles filamenteux produisent bcp de spores qui se dispersent Inhalation peut causer infection Risque varie selon quantité inhalée et pouvoir pathogène
43
Mesures pour minimiser dispersion
``` Culture en vase clos Hotte flux laminaire de classe II Manip dans pièce fermée Pour états frais, bleu de lactophénol mieux que bleu coton puisque phénol diminue viabilité des moisissures Sceller prep avec vernis à ongle ```
44
Généralités sur levures
Organismes unicellulaires qui multiplient par bougeonnement Donne cellules fille (blastoconidies ou blastospores) Seuls 6 genres impliqués dans infections Étudie seulement 2: C. albicans Cryptococcus neoformans Les 2 font partie de la famille Cryptococcaceae
45
ID levures: examen microscopique du prélèvement et des colonies
1. Forme des cellules ronde: Cryptococcus neoformans ovale: C. albicans cylindrique: C. kefyr 2. Capsule: présente chez Cryptococcus neoformans 3. Hyphes ou pseudohyphes Pseudohyphes indique forme pathogène FN en on pas Hyphes des levures sont étroits et différencie des schrooms filamenteux par présence de bourgeons ou segments de pseudohyphes (position latérale ou terminale) 4. GB: indique rxn inflammatoire 5. Chlamydospore et arthroconidies 6. Tube germinatif: test de filamentation dans le sérum
46
Agglutinations
Mise en évidence d'Ag | Seulement pour Cryptococcus neoformans
47
Traitement des spécimens de levures
Peu exigeantes Se développent sur: gélose nutritive, sang de mouton, choco, Sabouraud, PCB (ou CM ou PDA), ChromAgar (différentielle qui contient chromogènes) Forment sur géloses colonies levuriformes qui ressemblent colonies bactériennes
48
ID levures: des colonies
1. Aspect macroscopique de la colonie: couleur: pas vrm de différences pour ID texture: mucoïde (capsule comme Cryptococcus), crémeuse (C. albicans) bordure: lisse, filamenteuse (après quelques jours d'incubation comme Trichosporon
49
ID levures: tests biochimiques
Assimilation des sucres: API20C Urée Voir p.28 des notes pour clé ID des levures
50
Genre Candida: caractéristiques communes
40 ish espèces nommées candidose (monoliase au niveau du vagin et muguet au niveau de la bouche) forme ovoïde une seule blastospore en position polaire bleu-violet colo gram produisent pseudohyphe et un vrai hyphe segmenté (quand concentration O2 diminue --> tissus humain et fissures dans géloses) capable de fermentation plus fréquemment recontrée dans spécimens cliniques (C. albicans)
51
C. albicans: habitat
``` Membranes muqueuses Tube digestif: bouche et gros intestin Syst. respiratoire Vagin: 5-50% femmes Pelure fruits et légumes ```
52
C. albicans: infections
Sourse usually endogène: Infection superficielles: cutanées et muqueuses Intertrigos: infections plis surface de la peau Infections ongles Muguet: surtout NN suite au passage dans le vagin de la mère Système resp.: pneumonie chez immunocompromis Vaginite: démangeaison intense, écoulement blanchâtre suite à antibiothérapie large spectre Infections profondes: septicémies, endocardites, UTI surtout chez immunocompromis
53
C. albicans: prélèvement
levures supportent bien dessication | diffère selon lieu d'infection
54
C. albicans: ID
1. Examen microscopique: État frais pour détecter hyphes, blastoconidies, pseudohyphes et la présense de GB 2. Culture: Après 1-3 jours colonies crémeuses, blanchâtre (ressemble Staph. épidermidis) surface lisse sur gélose sang et Sabouraud
55
C. albicans: tests morpho et biochimiques
Sur colonies suspectes faire: État frais: cellules ovoides à bourgeonnement unipolaire Test de filamentation dans sérum cheval Production de chlamydospores sur gélose Corn meal ou PCB: abd dans le cas de C. albicans (autre usually incapables) Assimilation de sucres: API 20C Trousse commerciales: mise en évidence des Z
56
Test de filamentation
Faible inoculum Incube 3h à 35 oC Pos pour C. albicans Résultat pos après 3h30-4h pour autre espèce de Candida Tube de germination (véritable hyphe) qui émerge de la levure Pas de pinching entre levure et filament
57
Genre Cryptococcus: caractéristiques communes
15 ish espèces, mais seulement Crypt. neoformans cause infections chez l'humain Forme arrondie Colore mal au gram Blastoconidies multiples en plusieurs points de leur surface Souvent entourées d'une capsule de mucopolysaccharides Produisent pas de pseudohyphes et vrai hyphe Aucune activité fermentative RT*** produisent toute une uréase
58
Crypt. neoformans: habitat
Sol | Tube digestif de pigeons: libère ces levures lorsque fèces sèchent, poussière transportée par le vent et inhalée
59
Crypt. neoformans: infections
Exogène 1. atteinte pulmonaire immunocompétents: petite dose infectieuse ---> sans symptômes souvent, guérisson spontanée grosses doses (démolisseurs de sites avec bcp de pigeons) ---> toux, fièvre et douleur thoracique immunocompromis: suite à une atteinte pulmonaire, levure peut propager par voie sanguine au SNC 2. atteinte du SNC méningite
60
Crypt. neoformans: prélèvement
Type: expecto, LCR
61
Crypt. neoformans: ID
Centrifugation du LCR et tests à partir: 1. surnageant: detection Ag capsulaire avec techniques agglutination avec Ac connus 2. culot: état frais et colo encre de Chine (ou higrosine) pour mettre en évidence cellules rondes avec capsule présentant ou non des blastoconidies
62
Crypt. neoformans: culture
Milieux: gélose sang et Sabouraud Crypt. neoformans sensible à cycloheximide au milieu Mycosel (pas de colonies produites sur ce milieu) 35 oC en aérobiose Autres Cryptococcus incapable de développer à 35 oC (préfèrent 22 oC) Colonies blanchâtres, crémeuses, lisses et muqueuses après 2-10 jours sur gélose Sabouraud ou sang
63
Crypt. neoformans: tests morpho et biochimiques
Sur colonies suspectes: 1. état frais: pour voir cellules rondes à bourgeonnement multiple 2. Colo encre de Chine: mise en évidence capsule 3. RT*** hydrolyse urée: positive pour toutes espèces de Cryptococcus Assimilation des sucres: API 20C Croissance 35 oC Sur gélose Corn meal + tween 20: levure ne produit pas d'hyphes ni de pseudohyphes RT*** Cryptococcus neoformans est inhibé par cycloheximide (critère d'ID)
64
Dermatophytes: caractéristiques communes
Groupe de schrooms qui: 1. attaquent kératine alors peut développer dans: couche de l'épiderme, cheveux, poils, ongles 2. cultivent facilement sur milieux artificiels, mais croissance plus lente que bactéries 3. produisent microaleuries et macroaleuries: forme diffère d'une espèce à l'autre (permet de différencier) 4. sensibles à griséofulvine (antifongique utilisé pour traitement des dermatophytes)
65
Dermatophytes: genres
Microsporum: 16 espèces Trichophyton: 21 espèces Epidermophyton: 2 espèces (E. floccosum seul qui cause infections chez l'homme)
66
Dermatophyte: pouvoir pathogène
Quand spore introduit dans microlésion dans peau ou dans plis cutanés: germe et produit hyphes Filaments libèrent Z kératinolytiques: hyphes fraye un passage dans kératine Une fois implanté: croissance excentrique Rxn de l'organisme: rxn inflammatoire pour s'en débarasser Peau présente lésions plus ou moins arrondies rouge et se desquamant Causent: teignes du pieds, ongles, corps, barbe, cuir chevelu ou suppuratives (avec pus)
67
Dermatophyte: prélèvement
Cheveux ou poils: arracher avec pinces stérile pour conserver bulbe pileux, prélever plusieurs en périphérie de la lésion Ongles: gratter débris avec lame stérile Squames cutanées: racler peau avec lame stérile bistouri Pus dans cas de lésions suppuratives: écouvillon stérile Prélèvements déposés dans boite Petri ou enveloppe de papier bleu
68
Dermatophytes: ID
Selon: 1. type d'infection 2. structures ID dans spécimen lors de l'examen direct
69
Type d'infection
Atteinte du cheveux, ongle, peau Source humains: - anthropophile: lésions peu inflammatoires difficiles à éliminer et très contagieuses ex: Epidermophyton floccosum Source animale: - zoophiles: lésions très inflamm. chez humain, facilement éliminés suite au traitement ex: Microsporum canis (infection chez le chat et humain se contamine par contact)
70
Structure ID dans spécimen
ID avec EF: déposer débris entre lame et lamelle avec goutte de KOH et colo pour mettre en évidence hyphes et arthroconidies ---> permet de caractériser type d'infection quand spéciment de cheveux (ou poil) Quand toutes les structures du Dermatophyte sont à l'interieur du cheveux: - type endothrix: cheveux totalement rempli d'arthroconidies (cheveux fragile et casse facilement) - type favique: pas totalement rempli d'hyphes et arthroconidies (cheveux plus solide) Quand les structures sont à l'interieur (hyphes, arthroconidies) et à l'extérieur (microconidies) du cheveu: grosseur et disposition des conidies à l'extérieur permet distinguer 3 variantes: 1. type mégasporé: grosses spores 2. type microïde: petites spores et peu nombreuses (une seule couche autour du cheveu) 3. type microsporique: petites spores, très nombreuses et forment une gaine compacte autour du cheveu (plusieurs couches) ex: M. canis
71
Dermatophytes: culture
Milieux: Ceux énumérés pour autres + milieu spécialement conçu pour recherche de dermatophyte: DTM (dermatophyte test medium) DTM = milieu Sabouraud teneur réduite en glucose additionné de: 1. cyclohexamide: inhiber croissance des moisissures courantes et quelques levures 2. gentamicine et chlortétracycline: inhiber croissance des B-, B+ et C+
72
Dermatophytes: incubation
22-25 oC aérobiose Observer périodiquement pour apparition de colonies Conserver 6-8 semaines avant de dire négatif
73
Dermatophytes: ID
Selon critères suivantes: 1. Temps de croissance pour former colonie adulte avec spores 2. aspect macro de colonie: texture, élévation, couleur, forme 3. aspect micro: - présence, abondance et forme des microaleuries et macroaleuries - forme des hyphes 4. tests biochimiques dans lab référence
74
3 catégories de croissance
1. rapide: 5-10 jours 2. moyenne: 10-15 jours 3. lente: 2-6 semaines
75
Aspect macro: texture
Laineuse, ouatée: colonie qui produit bcp de hyphes aériens Poudreux: semblable à du sucre ou farine due à l'abondance des aleuries produites à la surface Glabre: colonie qui possède peu d'hyphes aériens et peu de conidies et dont surface apparaît plutôt lisse
76
Aspect macro: topographie (élévation)
Plane Surélevée Cérébriforme: ondulé comme cerveau Avec stries radiales: comme étoile
77
Aspect macro: couleur
Surface de gélose Revers de gélose Mentionner si on observe un pigment diffusible dans la gélose
78
Aspect micro
Forme des microaleuries et macroaleuries
79
Microaleuries
Microsporum: généralement peu nombreuses Trichophyton: nombreuses sauf chez T. violaceum et T. schoenleinii Epidermophyton: absentes
80
Macroaleuries
Microsporum: nombreuses, grosses, forme de fuseau avec extrémités pointues avec paroi épaisse et verruqueuse sauf chez M. audouinii Trichophyton: grosse en forme de cylindre aux extrémités arrondies à paoi mince et lisse, absentes chez T. verrucosum et T. schoenleinii Epidermophyton: grosse en forme de massue aspect trapu, paroi lisse et épaisse en bouquet ou régime de bananes
81
Forme des hyphes
Segmentés et peuvent avoir morpho pour ID
82
Forme hyphes: en raquette
Renflement à une extrémité d'un segment
83
Forme hyphes: pectiné
Renflements ressemblant dents de peignes sur une de leur face
84
Forme hyphes: bois de cerf
Produit des ramifications dans la portion terminale
85
Forme hyphes: spiralé ou vrilles
Extrémité distale des filaments s'enroulent en spirale comme un ressort Vrilles abd dans cultures de Trichophyton mentagrophytes Quelques-unes dans cultures de Trichophyton tonsurans
86
Forme hyphes: chandelier favique
Filament ramifie en plusieurs enbranchements dont l'extrémité de chacune présente une tête de clou de girofle Forme caractéristique chez Trichophyton schoenleinii
87
Forme hyphes: présence d'arthroconidies
Segments des hyphes qui se transforment en conidies de même diamètre que l'hyphe qui leur a donné naissance
88
Forme hyphes: présence de chlamydospore
Segment de l'hyphe qui s'arrondit et dont la paroi s'épaissit Ces spores peuvent être produites isolément (Microsporum audouinii) ou en chaîne (Trichophyton verrucossum)
89
Tests biochimiques ou croissance sur gélose
Pour différencier 2 espèces différentes de dermatophytes Utile de faire tests supplémentaires si présentent plusieurs caractéristiques semblables Cas de Trichophyton mentagrophytes et Trichophyton rubrum Faire hydrolyse de l'urée et la culture sur milieu PCB ou CM
90
Principales espèces de dermatophytes
``` Microsporum canis Trichophyton mentagrophytes Trichophyton rubrum Trichophyton tonsurans (principal dermatophyte dans cas de teigne du cuir chevelu) Trichophyton verrucosum Trichophyton schoenleinii Epidermophyton floccosum ```
91
4 espèces présentées en détail
Tableau p.44
92
Contaminants
Moisissures qui peuvent être présentes dans les spécimens cliniques ou dans l'air et se retrouver sur les cultures Croissance rapide et confluente Colonies envahissent cultures et ainsi empêchent la croissance des pathogènes
93
Aspergillus sp.
Moisissure 900 espèces (19 pathogènes) Aspergilus fumigatus plus prédominante dans spécimens cliniques avec Aspergilus niger et Aspergilus flavus (agent d'infection pulmonaire) Retrouve partout (matière végétale, parois réfré, conduits ventilation, contenants humides) Constamment en contact avec les conidies dans l'air: - Peuvent être responsable d'infections au niveau des poumons, oreilles - Causer allergies (crises d'asthmes) Moisissures croissance rapide (conidies dès le 3em jour) sauf pour quelques espèces
94
Aspergillus sp.: aspect macro
Colonie veloutée ou cotonneuse Mycélium de surface: couleur variable selon espèces (vert jaune --> A. flavus, vert bleu --> A. fumigatus, brun noire --> A. niger) Envers de couleur variable selon les espèces: blanc doré ou brun
95
Aspergillus sp.: aspect micro
Hyphes segmentés de teintes hyalines Conidophore simple qui s'élargit en vésicule à l'extrémité) Vésicule entourée d'une ou deux rangées de phialides Chaque phialide supporte une chaîne de conidis Phialides sont structures difficiles à mettre en évidence en microscopie optique usuelle Conidies rondes
96
Penicillium: pouvoir pathogène
Penicillium moisissure très fréquente Rôle pathogène mal définit Retrouvé dans plusieurs spécimens cliniques Responsable de: kératite (infection de la cornée), d'otites externes (immunocomprimés) Croissance rapide: colonies matures 4 jours
97
Penicillium: aspect macro
Colonie surface duveteuse Surface généralement bleu verte avec contour blanc Envers usually blanc
98
Penicillium: aspect micro
Hyphes segmentés de teinte hyaline Conidiophore long et segmenté dont extrémité termine par embranchements portant des phialides Chaque phialide porte chaine de conidies rondes
99
Rhizopus: habitat
R. arrhizus: agent le plus fréquent de zygomycose qui cause infections pulmonaires et sinusites (principalement chez diabètes en acidose et les leucémiques) R.niger: champignon est moisissure du pain (contaminant qui peut se retrouver en culture)
100
Rhizopus: croissance
Développe rapidement Couvre rapidement toute la gélose Colonies donnent spores en 4 jours Cultive bien à 37 oC
101
Rhizopus: aspect macro
Mycélium aérien est abd et blanc aux extrémités des boules noires (sporanges) Envers blanc
102
Rhizopus: aspect micro
Hyphes larges et non segmentées Hyphes végétatifs -->noeuds d'où partent: - stolons (hyphes horizontaux entre 2 noeuds) - rhizoides (pseudoracines) - sporangiophores (hyphes aériens qui portent le sporange) en bouquets Sporangiophore: - incolore - termine par columelle hémisphérique - se trouve à l'extrémité un sporange noir foncé et sphérique contenant les spores (appelées sporangiophores)