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Microbiologie > Mycologie > Flashcards

Mycologie Flashcards

1
Q

Saprophytes

A

Décomposeurs de: bois, carcasses

Ds environnement et sont source de contamination pour humain

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2
Q

Saprophyde dimorphes

A

Champignons qui ont dév. capacité infecter tissus humain en adoptant forme diff.
ex: Blastomyces dermatitidis, Coccidioides immitis, Histoplasma capsulatum

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3
Q

Saprophytes opportunistes

A

Champ. et levures qui peut causer infections superficielles ou profondes chez Pt affaiblis
ex:
Candida albicans: tout le monde petite quantité sur peau
Cryptococcus neoformans: excrements de pigeons, méningites chez immunocompromis
Aspergillus fumigatus: presque impossible enlever sur poumons
Mucorales

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4
Q

Parasites

A

Vivent au dépend de l’hôte vivant comme agents d’une mycose humaine ou animale
Champignons suivants:
- Ceux ds FN qui peuvent devenir pathogènes opportunistes, infection endogène (mess avec pH vaginal peut faire infection de C. albicans
- Parasites obligatoires ex: dermatophytes

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5
Q

Symbiose

A

Association bénéfique réciproque avec autre être vivant (ex: lichens = champ + algue)

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6
Q

Morpho de champignons

A

Partie du régne mycètes
Pluricel ou unicel
Pas de chlorophylle donc incapable photosynthèse
Hétérothrophes: dégrade composés org. pour énergie
Produisent spores diff. formes qui permettent ID
3 groupes:
1. Champignons macroscopiques

  1. Levures: unicell., reproduisent par bourgeonnement (blastoconidies), colonies crémeuses comme bactéries sur géloses
  2. Moisissures: pluricell., reproduisent par allongement des hyphes qui spécialisent et forment des organes de fructification qui émettent spores, colonies filamenteuses sur gélose
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7
Q

Hyphes

A

Hyphes dans thalles nommés selon fonction dans milieu
Hyphes végétatifs: couvrent surface nutritive en quête de nourriture
Rhizoides: sousterrains qui enfoncent dans milieu et forment pseudoracines
Hyphes aériens: portent organes de fructification qui produisent et libèrent spores

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8
Q

Thalles filamenteux sur gélose

A

Forment colonies:
diamètre variable
plus ou moins colorés
aspect: ouaté (bcp de hyphes aériens), plâtreux/granuleux/poudreux (grains de sucre en poudre, produit bcp de conidies), glabre (très peu hyphes aériens et conidies, surface lisse), excentrique et centrifuge (centre vers périphérie et explique lésions arrondies sur peau de Pt infectés par dermatophytes)

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9
Q

Provenance d’un thalle

A

De la germination d’une spore produite par thalle adulte de même espèce
Spore sur milieu nutritif –> spore produit tube ou se trouve cytoplasme et noyaux –> noyaux divisent –> parois cellulaires élaborent pour former filaments qui forment le thalle
Thalle mature produira spores qui seront propagées dans environnement pour trouver nouveau habitats

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10
Q

Reproduction

A

Production de spores qui sont issues de reproduction sexuée ou asexuée
sexuée: fécondation entre 2 gamètes, ces spores pas souvent obs. sur milieux de culture (rarement utilisé pour ID)
asexuée: tous champ. en croissance sur gélose et forme utilse pour ID.. ces spores sont nommés conidies

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11
Q

Différentes sortes de conidies

A 
Aleurioconidies (AKA aleurispores)
Arthroconidies (AKA arthrospores)
Blastoconidies (AKA blastospores)
Chlamydoconidies (AKA chlamydospores)
Phialoconidies
Sporangiospores
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12
Q

Aleurioconidies

A

Spore terminale
- paroi, couleur, forme et dimension les rapprochent des conidies
Microaleuries et macroaleuries
Aleuries seulement dans cultures de dermatophytes
ex: Trichophyton, Microsporum, Epidermophyton

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13
Q

Arthroconidies

A

Spores fréquentes formées par fragmentation de hyphe segmenté
Paroi de chaque segment de hyphe épaissit légèrement et angles arrondissent
2 types:
1. simples: chaque cloisson forme arthroconidie ex: Geotrichum, Trichosporon
2. alternée: entre chaque arthroconidies il y a une cellule disjoctive ex: Coccidiodes immitis (très dangereux)

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14
Q

Blastoconidies

A

Structure produite par bourgeonnement
Cellules levuriformes donnent naissance à cellule fille (blastoconidie) par division cellulaire nommée bourgeonnement
Peuvent rester attacher les unes aux autres pour former filament appelé pseudohyphe (clamp)
Peuvent aussi former une hyphe (pas de clamp) ex: Candida

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15
Q

Chlamydoconidies

A

Élément de filament rond avec paroi épaisse et un cytoplasme dense chargé de matière de réserve (lipides)
Spores résiste conditions difficiles
Spores répandues chez plusieurs champ. microscopique
Retrouvé sur pseudomycélium de C. albicans ainsi que sur les hyphes des dermatophytes

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16
Q

Phialoconidies

A

Conidies organisées en chaîne et produites des phialides (structures spécialisée placée sur vésicule sur extrémité de hyphe)
Spores externes qui détachent facilement des hyphes qui les ont formés ex: Penicillium (sur pain), Aspergillus

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17
Q

Sporangiospores

A

Spores emprisonnées dans vésicule nommée sporange
Sporange situé à l’extrémité d’un hyphe specialisé nommé sporangiophore
Quand mature: sporange dilate et éclate sous effet de pression interne et libère sporangiospores ex: Rhizopus, Mucor, Zygomycota

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18
Q

Pathogénicité

A

300 espèces pathogènes
infection par champ. = mycose
3 niveaux:
1. Superficielles: cutanée (peau, poil, cheveux, ongle), muqueuse
2. Sous-cutanée ou sous muqueuse
3. Profonde: sang, urine, LCR, autres liquides bio

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19
Q

Mycoses cutanées

A

Pied athlète (T. rubrum)
Teigne (T. tonsurans, Candida)
Tous les sites: C. albicans
FN = Staph. coag neg, Strep viridans, levures, etc.

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20
Q

Muqueuses

A

Nez, bouche (C. albicans = muguet), vagin (C. albicans = monoliase), gorge
Plus fréquent = C. albicans (levure)
Doit distinguer de levures FN
2 indices pour faire différence:
1. # (agent pathogène en plus grand #)
2. GB (qui indique rnx inflam. –> hôte se défend)
Prélèvement avec écouvillon ou spatule abaisse-langue et faire état frais
ID avec symptômes et observation au microscope du spécimen (rare de faire culture)

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21
Q

Sous-cutanées

A

Entrée: blessures au niveau de la peau, spore ou fragment de hyphe pénètre
ex: Sporothrix schenckii associé au jardinage

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22
Q

Profondes

A

Entrée: inhalation de spore (conidie) qui envahit voies resp. inf. et déclenche infection pulmonaire
Most du temps pas de symptômes ou symptômes non spécifiques (toux)
Symptômes dans cas suivants:
1. immunocompromis (schroom dans tous organisme par sang)
2. immunocompétent suite a inhalation massive de spores (ex: démolitions)
ex: Blastomyces dermatidis, Candida, Aspergillus

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23
Q

Examen microscopique direct

A

Utilité:

  1. Donne rapport préliminaire rapide au médecin
  2. Detecte rapidement structures fongiques (hyphes, pseudohyphes, levures)
  3. Facilite interprétation de culture en comparant résultats avec culture
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24
Q

Colo: calcofluor

A

Méthode la plus utilisée
Fluorochrome non-spécifique avec affinité pour chitine dans paroi cellulaire de schrooms (fluo vert pomme)
Besoin microscope à fluorescence
Fibre coton captent colo et peuvent être confondues avec hyphes

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25
Q

Colo: bleu de coton, lactophénol

A 
Pour cheveux et leurs bulbes
Colore hyphes (seront plus facilement observables)
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26
Q

Colo: fungifluor

A

Mise en évidence levures et mycoses dans spécimens respiratoires
Fluorochrome non-spécifique affinité pour chitine dans paroi cellulaire de schrooms
Fluo vert pomme aussi
Besoin microscope fluo

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27
Q

Colo: PAS

A

Ac. périodique de Schiff
Colore certains polysaccharides dans paroi cellulaire des schrooms
Rose
Méthode plus longue, mais permet colo permanente qui peut être conservée

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28
Q

Colo avec traitement au KOH

A

Pour ongles et squames cutanées
KOH 10% pour squames cutanées
KOH 30% (plus DMSO) pour ongles
KOH dégrade débris de PR- et dissout ciment qui retient les cellules kératinisées ensembles
Permet alors de repérer plus facilement hyphes et arthrospores (pas bcp alors bon de pouvoir les spotter)

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29
Q

Milieux de culture: Sabouraud glucosé ou Sabouraud dextrose

A

Routine
Milieu de base pour ID schrooms
Si dans bouche ajoute chloramphénicol pour inhiber FN
Peut ajouter extrait de levures 0.5% pour stimuler croissance des dermatophytes
pH 5.5 qui inhibe croissance quelques bactéries de FN

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30
Q

Milieux de culture: Sabouraud modifié

A

Plus utilisée que l’original
Diminue glucose à 1% ce qui augmente pH à 7 (favorise croissance et sporulation des dermatophytes)
Peut aussi éliminer glucose pour conserver les dermatophytes

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31
Q

Milieux de culture: Mycosel (BBL) ou Mycobiotic (Difco)

A

Même géloses, différentes compagnies
Milieux sélectif
Additionné de:
RT **Cyclohexamide: antifongique pour inhiber certains schrooms de l’air et levures comme Cryptococcus neoformans
Chloramphénicol: antiB qui inhibe croissance de bactéries

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32
Q

Milieux de culture: PCB

A

Patate carotte bile
Milieu pauvre sans sucre
Pour sporulation (chlamydospores) et mise en évidence de pseudohyphes par C. albicans
Colonies développent meilleure colo (critère imp. pour ID moisissures)
ou PDA (patate dextrose agar): qui permet d’observer morpho typique de schrooms

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33
Q

Milieux de culture: corn meal ou farine de maïs

A

Ou Oxgall qui a la même fonction
Pour sporulation (production de chlamydospores)
Peut être additionné de Tween 20

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34
Q

Durée d’incubation

A

1-4 jours pour levures
1-2 semaines pour moisissures à croissance rapide
jusqu’a 6 semaines pour moisissures à croissance lente

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35
Q

ToC d’incubation

A

25-30 oC pour moisissure d’infections superficielles

35 oC pour schrooms d’infections profondes

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36
Q

Atmosphère d’incubation

A

Aérobiose pour moisissures et certaines levures

Ana facultative: levures

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37
Q

Colonies levuriformes

A

Consistance crémeuse et croissance rapide (1-4 jours) comme colonies bactériennes
Composées de levures de forme ovale et bourgeonnante qui ne produisent pas de vrai filament

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38
Q

Colonies filamenteuses ou thalliques

A

Texture laineuse à sèche
Composées de cellules filamenteuses appelées hyphes
Certaines hyphes recouvrent surfaces, d’autres sont aériens
hyphes + organes de fructification = thalle

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39
Q

Schrooms dimorphes

A

Capacité de former colonies de type levuriforme à 35 oC et filamenteuse à 22 oC

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40
Q

ID

A 
Souvent limitée au genre
ID espèce pour:
C. albicans
Cryptococcus neoformans
Levures des sites normalement stériles
Dermatophytes
Saprophytes dimorphes (facile puisque usually seulement une espèce dans le genre)
Saprophytes opportunistes: quelques espèces d'Aspergillus (A. fumigatus, A. niger, A. terreus)
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41
Q

S&S : colonies levuriformes

A

Autour d’une flamme
Attn aux dimorphes: Blastomyces dermatidis, Coccidioïdes immitis et Histoplasma capsulatum (pathogènes levuriformes à 35 oC et filamenteux à 25 oC)

42
Q

S&S: colonies filamenteuses

A

Thalles filamenteux produisent bcp de spores qui se dispersent
Inhalation peut causer infection
Risque varie selon quantité inhalée et pouvoir pathogène

43
Q

Mesures pour minimiser dispersion

A 
Culture en vase clos
Hotte flux laminaire de classe II
Manip dans pièce fermée
Pour états frais, bleu de lactophénol mieux que bleu coton puisque phénol diminue viabilité des moisissures
Sceller prep avec vernis à ongle
44
Q

Généralités sur levures

A

Organismes unicellulaires qui multiplient par bougeonnement
Donne cellules fille (blastoconidies ou blastospores)
Seuls 6 genres impliqués dans infections
Étudie seulement 2:
C. albicans
Cryptococcus neoformans
Les 2 font partie de la famille Cryptococcaceae

45
Q

ID levures: examen microscopique du prélèvement et des colonies

A
  1. Forme des cellules
    ronde: Cryptococcus neoformans
    ovale: C. albicans
    cylindrique: C. kefyr
  2. Capsule: présente chez Cryptococcus neoformans
  3. Hyphes ou pseudohyphes
    Pseudohyphes indique forme pathogène
    FN en on pas
    Hyphes des levures sont étroits et différencie des schrooms filamenteux par présence de bourgeons ou segments de pseudohyphes (position latérale ou terminale)
  4. GB: indique rxn inflammatoire
  5. Chlamydospore et arthroconidies
  6. Tube germinatif: test de filamentation dans le sérum
46
Q

Agglutinations

A

Mise en évidence d’Ag

Seulement pour Cryptococcus neoformans

47
Q

Traitement des spécimens de levures

A

Peu exigeantes
Se développent sur:
gélose nutritive, sang de mouton, choco, Sabouraud, PCB (ou CM ou PDA), ChromAgar (différentielle qui contient chromogènes)
Forment sur géloses colonies levuriformes qui ressemblent colonies bactériennes

48
Q

ID levures: des colonies

A
  1. Aspect macroscopique de la colonie:
    couleur: pas vrm de différences pour ID
    texture: mucoïde (capsule comme Cryptococcus), crémeuse (C. albicans)
    bordure: lisse, filamenteuse (après quelques jours d’incubation comme Trichosporon
49
Q

ID levures: tests biochimiques

A

Assimilation des sucres: API20C
Urée
Voir p.28 des notes pour clé ID des levures

50
Q

Genre Candida: caractéristiques communes

A

40 ish espèces
nommées candidose (monoliase au niveau du vagin et muguet au niveau de la bouche)
forme ovoïde
une seule blastospore en position polaire
bleu-violet colo gram
produisent pseudohyphe et un vrai hyphe segmenté (quand concentration O2 diminue –> tissus humain et fissures dans géloses)
capable de fermentation
plus fréquemment recontrée dans spécimens cliniques (C. albicans)

51
Q

C. albicans: habitat

A 
Membranes muqueuses
Tube digestif: bouche et gros intestin
Syst. respiratoire
Vagin: 5-50% femmes
Pelure fruits et légumes
52
Q

C. albicans: infections

A

Sourse usually endogène:
Infection superficielles: cutanées et muqueuses
Intertrigos: infections plis surface de la peau
Infections ongles
Muguet: surtout NN suite au passage dans le vagin de la mère
Système resp.: pneumonie chez immunocompromis
Vaginite: démangeaison intense, écoulement blanchâtre suite à antibiothérapie large spectre
Infections profondes: septicémies, endocardites, UTI surtout chez immunocompromis

53
Q

C. albicans: prélèvement

A

levures supportent bien dessication

diffère selon lieu d’infection

54
Q

C. albicans: ID

A
  1. Examen microscopique:
    État frais pour détecter hyphes, blastoconidies, pseudohyphes et la présense de GB
  2. Culture:
    Après 1-3 jours colonies crémeuses, blanchâtre (ressemble Staph. épidermidis) surface lisse sur gélose sang et Sabouraud
55
Q

C. albicans: tests morpho et biochimiques

A

Sur colonies suspectes faire:
État frais: cellules ovoides à bourgeonnement unipolaire
Test de filamentation dans sérum cheval
Production de chlamydospores sur gélose Corn meal ou PCB: abd dans le cas de C. albicans (autre usually incapables)
Assimilation de sucres: API 20C
Trousse commerciales: mise en évidence des Z

56
Q

Test de filamentation

A

Faible inoculum
Incube 3h à 35 oC
Pos pour C. albicans
Résultat pos après 3h30-4h pour autre espèce de Candida
Tube de germination (véritable hyphe) qui émerge de la levure
Pas de pinching entre levure et filament

57
Q

Genre Cryptococcus: caractéristiques communes

A

15 ish espèces, mais seulement Crypt. neoformans cause infections chez l’humain
Forme arrondie
Colore mal au gram
Blastoconidies multiples en plusieurs points de leur surface
Souvent entourées d’une capsule de mucopolysaccharides
Produisent pas de pseudohyphes et vrai hyphe
Aucune activité fermentative
RT*** produisent toute une uréase

58
Q

Crypt. neoformans: habitat

A

Sol

Tube digestif de pigeons: libère ces levures lorsque fèces sèchent, poussière transportée par le vent et inhalée

59
Q

Crypt. neoformans: infections

A

Exogène
1. atteinte pulmonaire
immunocompétents:
petite dose infectieuse —> sans symptômes souvent, guérisson spontanée
grosses doses (démolisseurs de sites avec bcp de pigeons) —> toux, fièvre et douleur thoracique
immunocompromis: suite à une atteinte pulmonaire, levure peut propager par voie sanguine au SNC
2. atteinte du SNC
méningite

60
Q

Crypt. neoformans: prélèvement

A

Type: expecto, LCR

61
Q

Crypt. neoformans: ID

A

Centrifugation du LCR et tests à partir:

  1. surnageant: detection Ag capsulaire avec techniques agglutination avec Ac connus
  2. culot: état frais et colo encre de Chine (ou higrosine) pour mettre en évidence cellules rondes avec capsule présentant ou non des blastoconidies
62
Q

Crypt. neoformans: culture

A

Milieux: gélose sang et Sabouraud
Crypt. neoformans sensible à cycloheximide au milieu Mycosel (pas de colonies produites sur ce milieu)
35 oC en aérobiose
Autres Cryptococcus incapable de développer à 35 oC (préfèrent 22 oC)
Colonies blanchâtres, crémeuses, lisses et muqueuses après 2-10 jours sur gélose Sabouraud ou sang

63
Q

Crypt. neoformans: tests morpho et biochimiques

A

Sur colonies suspectes:
1. état frais: pour voir cellules rondes à bourgeonnement multiple
2. Colo encre de Chine: mise en évidence capsule
3. RT* hydrolyse urée: positive pour toutes espèces de Cryptococcus
Assimilation des sucres: API 20C
Croissance 35 oC
Sur gélose Corn meal + tween 20: levure ne produit pas d’hyphes ni de pseudohyphes
RT* Cryptococcus neoformans est inhibé par cycloheximide (critère d’ID)

64
Q

Dermatophytes: caractéristiques communes

A

Groupe de schrooms qui:

  1. attaquent kératine alors peut développer dans: couche de l’épiderme, cheveux, poils, ongles
  2. cultivent facilement sur milieux artificiels, mais croissance plus lente que bactéries
  3. produisent microaleuries et macroaleuries: forme diffère d’une espèce à l’autre (permet de différencier)
  4. sensibles à griséofulvine (antifongique utilisé pour traitement des dermatophytes)
65
Q

Dermatophytes: genres

A

Microsporum: 16 espèces
Trichophyton: 21 espèces
Epidermophyton: 2 espèces (E. floccosum seul qui cause infections chez l’homme)

66
Q

Dermatophyte: pouvoir pathogène

A

Quand spore introduit dans microlésion dans peau ou dans plis cutanés: germe et produit hyphes
Filaments libèrent Z kératinolytiques: hyphes fraye un passage dans kératine
Une fois implanté: croissance excentrique
Rxn de l’organisme: rxn inflammatoire pour s’en débarasser
Peau présente lésions plus ou moins arrondies rouge et se desquamant
Causent: teignes du pieds, ongles, corps, barbe, cuir chevelu ou suppuratives (avec pus)

67
Q

Dermatophyte: prélèvement

A

Cheveux ou poils: arracher avec pinces stérile pour conserver bulbe pileux, prélever plusieurs en périphérie de la lésion
Ongles: gratter débris avec lame stérile
Squames cutanées: racler peau avec lame stérile bistouri
Pus dans cas de lésions suppuratives: écouvillon stérile

Prélèvements déposés dans boite Petri ou enveloppe de papier bleu

68
Q

Dermatophytes: ID

A

Selon:

  1. type d’infection
  2. structures ID dans spécimen lors de l’examen direct
69
Q

Type d’infection

A

Atteinte du cheveux, ongle, peau
Source humains:
- anthropophile: lésions peu inflammatoires difficiles à éliminer et très contagieuses
ex: Epidermophyton floccosum
Source animale:
- zoophiles: lésions très inflamm. chez humain, facilement éliminés suite au traitement
ex: Microsporum canis (infection chez le chat et humain se contamine par contact)

70
Q

Structure ID dans spécimen

A

ID avec EF: déposer débris entre lame et lamelle avec goutte de KOH et colo pour mettre en évidence hyphes et arthroconidies —> permet de caractériser type d’infection quand spéciment de cheveux (ou poil)

Quand toutes les structures du Dermatophyte sont à l’interieur du cheveux:

  • type endothrix: cheveux totalement rempli d’arthroconidies (cheveux fragile et casse facilement)
  • type favique: pas totalement rempli d’hyphes et arthroconidies (cheveux plus solide)

Quand les structures sont à l’interieur (hyphes, arthroconidies) et à l’extérieur (microconidies) du cheveu: grosseur et disposition des conidies à l’extérieur permet distinguer 3 variantes:

  1. type mégasporé: grosses spores
  2. type microïde: petites spores et peu nombreuses (une seule couche autour du cheveu)
  3. type microsporique: petites spores, très nombreuses et forment une gaine compacte autour du cheveu (plusieurs couches)
    ex: M. canis
71
Q

Dermatophytes: culture

A

Milieux:
Ceux énumérés pour autres + milieu spécialement conçu pour recherche de dermatophyte: DTM (dermatophyte test medium)
DTM = milieu Sabouraud teneur réduite en glucose additionné de:
1. cyclohexamide: inhiber croissance des moisissures courantes et quelques levures
2. gentamicine et chlortétracycline: inhiber croissance des B-, B+ et C+

72
Q

Dermatophytes: incubation

A

22-25 oC
aérobiose
Observer périodiquement pour apparition de colonies
Conserver 6-8 semaines avant de dire négatif

73
Q

Dermatophytes: ID

A

Selon critères suivantes:

  1. Temps de croissance pour former colonie adulte avec spores
  2. aspect macro de colonie: texture, élévation, couleur, forme
  3. aspect micro:
    - présence, abondance et forme des microaleuries et macroaleuries
    - forme des hyphes
  4. tests biochimiques dans lab référence
74
Q

3 catégories de croissance

A
  1. rapide: 5-10 jours
  2. moyenne: 10-15 jours
  3. lente: 2-6 semaines
75
Q

Aspect macro: texture

A

Laineuse, ouatée: colonie qui produit bcp de hyphes aériens
Poudreux: semblable à du sucre ou farine due à l’abondance des aleuries produites à la surface
Glabre: colonie qui possède peu d’hyphes aériens et peu de conidies et dont surface apparaît plutôt lisse

76
Q

Aspect macro: topographie (élévation)

A

Plane
Surélevée
Cérébriforme: ondulé comme cerveau
Avec stries radiales: comme étoile

77
Q

Aspect macro: couleur

A

Surface de gélose
Revers de gélose
Mentionner si on observe un pigment diffusible dans la gélose

78
Q

Aspect micro

A

Forme des microaleuries et macroaleuries

79
Q

Microaleuries

A

Microsporum: généralement peu nombreuses
Trichophyton: nombreuses sauf chez T. violaceum et T. schoenleinii
Epidermophyton: absentes

80
Q

Macroaleuries

A

Microsporum: nombreuses, grosses, forme de fuseau avec extrémités pointues avec paroi épaisse et verruqueuse sauf chez M. audouinii
Trichophyton: grosse en forme de cylindre aux extrémités arrondies à paoi mince et lisse, absentes chez T. verrucosum et T. schoenleinii
Epidermophyton: grosse en forme de massue aspect trapu, paroi lisse et épaisse en bouquet ou régime de bananes

81
Q

Forme des hyphes

A

Segmentés et peuvent avoir morpho pour ID

82
Q

Forme hyphes: en raquette

A

Renflement à une extrémité d’un segment

83
Q

Forme hyphes: pectiné

A

Renflements ressemblant dents de peignes sur une de leur face

84
Q

Forme hyphes: bois de cerf

A

Produit des ramifications dans la portion terminale

85
Q

Forme hyphes: spiralé ou vrilles

A

Extrémité distale des filaments s’enroulent en spirale comme un ressort
Vrilles abd dans cultures de Trichophyton mentagrophytes
Quelques-unes dans cultures de Trichophyton tonsurans

86
Q

Forme hyphes: chandelier favique

A

Filament ramifie en plusieurs enbranchements dont l’extrémité de chacune présente une tête de clou de girofle
Forme caractéristique chez Trichophyton schoenleinii

87
Q

Forme hyphes: présence d’arthroconidies

A

Segments des hyphes qui se transforment en conidies de même diamètre que l’hyphe qui leur a donné naissance

88
Q

Forme hyphes: présence de chlamydospore

A

Segment de l’hyphe qui s’arrondit et dont la paroi s’épaissit
Ces spores peuvent être produites isolément (Microsporum audouinii) ou en chaîne (Trichophyton verrucossum)

89
Q

Tests biochimiques ou croissance sur gélose

A

Pour différencier 2 espèces différentes de dermatophytes
Utile de faire tests supplémentaires si présentent plusieurs caractéristiques semblables
Cas de Trichophyton mentagrophytes et Trichophyton rubrum
Faire hydrolyse de l’urée et la culture sur milieu PCB ou CM

90
Q

Principales espèces de dermatophytes

A 
Microsporum canis
Trichophyton mentagrophytes
Trichophyton rubrum
Trichophyton tonsurans (principal dermatophyte dans cas de teigne du cuir chevelu)
Trichophyton verrucosum
Trichophyton schoenleinii
Epidermophyton floccosum
91
Q

4 espèces présentées en détail

A

Tableau p.44

92
Q

Contaminants

A

Moisissures qui peuvent être présentes dans les spécimens cliniques ou dans l’air et se retrouver sur les cultures
Croissance rapide et confluente
Colonies envahissent cultures et ainsi empêchent la croissance des pathogènes

93
Q

Aspergillus sp.

A

Moisissure
900 espèces (19 pathogènes)
Aspergilus fumigatus plus prédominante dans spécimens cliniques avec Aspergilus niger et Aspergilus flavus (agent d’infection pulmonaire)
Retrouve partout (matière végétale, parois réfré, conduits ventilation, contenants humides)
Constamment en contact avec les conidies dans l’air:
- Peuvent être responsable d’infections au niveau des poumons, oreilles
- Causer allergies (crises d’asthmes)
Moisissures croissance rapide (conidies dès le 3em jour) sauf pour quelques espèces

94
Q

Aspergillus sp.: aspect macro

A

Colonie veloutée ou cotonneuse
Mycélium de surface: couleur variable selon espèces (vert jaune –> A. flavus, vert bleu –> A. fumigatus, brun noire –> A. niger)
Envers de couleur variable selon les espèces: blanc doré ou brun

95
Q

Aspergillus sp.: aspect micro

A

Hyphes segmentés de teintes hyalines
Conidophore simple qui s’élargit en vésicule à l’extrémité)
Vésicule entourée d’une ou deux rangées de phialides
Chaque phialide supporte une chaîne de conidis
Phialides sont structures difficiles à mettre en évidence en microscopie optique usuelle
Conidies rondes

96
Q

Penicillium: pouvoir pathogène

A

Penicillium moisissure très fréquente
Rôle pathogène mal définit
Retrouvé dans plusieurs spécimens cliniques
Responsable de: kératite (infection de la cornée), d’otites externes (immunocomprimés)
Croissance rapide: colonies matures 4 jours

97
Q

Penicillium: aspect macro

A

Colonie surface duveteuse
Surface généralement bleu verte avec contour blanc
Envers usually blanc

98
Q

Penicillium: aspect micro

A

Hyphes segmentés de teinte hyaline
Conidiophore long et segmenté dont extrémité termine par embranchements portant des phialides
Chaque phialide porte chaine de conidies rondes

99
Q

Rhizopus: habitat

A

R. arrhizus: agent le plus fréquent de zygomycose qui cause infections pulmonaires et sinusites (principalement chez diabètes en acidose et les leucémiques)
R.niger: champignon est moisissure du pain (contaminant qui peut se retrouver en culture)

100
Q

Rhizopus: croissance

A

Développe rapidement
Couvre rapidement toute la gélose
Colonies donnent spores en 4 jours
Cultive bien à 37 oC

101
Q

Rhizopus: aspect macro

A

Mycélium aérien est abd et blanc aux extrémités des boules noires (sporanges)
Envers blanc

102
Q

Rhizopus: aspect micro

A

Hyphes larges et non segmentées
Hyphes végétatifs –>noeuds d’où partent:
- stolons (hyphes horizontaux entre 2 noeuds)
- rhizoides (pseudoracines)
- sporangiophores (hyphes aériens qui portent le sporange) en bouquets
Sporangiophore:
- incolore
- termine par columelle hémisphérique
- se trouve à l’extrémité un sporange noir foncé et sphérique contenant les spores (appelées sporangiophores)

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