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Patho-Diag-Mol(1) > Lester 4ed chap1-7 > Flashcards

Lester 4ed chap1-7 Flashcards

1
Q

Citez 5 éléments essentiels d’une requête d’évaluation en pathologie

A
  • ID patient
  • ID requérant
  • Histoire clinique
  • Date prélèvement du spécimen
  • Information relative au spécimen
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Q

Nommez des exemples de requérants pour évaluation en pathologie

A
  • Clinicien (Chirurgien, Radiologiste, Oncologue
  • Pathologiste)
  • Coroner
  • Famille de patient(e)
  • Service médico-légal
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Q

Quelle est l’utilité de la date de prélèvement du spécimen?

A

Déterminer:
- Corrélation clinico-pathologique (laboratoires, sérologies, imagerie vs biopsie)
- Temps d’ischémie du spécimen
- Délai potentiel durant le transport
- Durée de traitement d’une requête
- Facturation

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4
Q

Quelle est l’utilité de l’histoire clinique?

A

Déterminer:
- Nature de la procédure (diagnostic, résection, ré-excision, thérapie, esthétique)
- Anatomie (site, région, latéralité)
- Nombre de lésion(s) et leur relation (distance)
- Présence de traceurs
- Comorbidités et ATCD génétiques/familiaux
- Diagnostiques antérieurs de cancer
- Chirurgies antérieures
- Traitements antérieurs (radiothérapie, chimiothérapie, transfusion)
- Communication de valeurs critiques

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5
Q

Nommez des information importantes relatives au spécimen

A
  • Procédure
  • Techniques spéciales (Fixation vs saline, Tissu lymphoïde, Balles, Métaux, Peau si TEN)
  • Transport
  • Critères de rejet
  • Délai de disposition
  • Instructions spéciales (Patient, Famille, Manufacturier, Médico-légal)
  • Orientation
  • Marqueurs
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6
Q

Énumérez le délai de disposition d’un échantillon selon le type d’analyse

A
  • 5 ans : Lames (-)
  • 20 ans : Lames (+), Blocs, FISH, Cytologie, Analyse moléculaire, Images
  • Indéfiniment: Rapport
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7
Q

Définir les éléments d’une orientation spatiale idéale pour un spécimen

A
  • Supérieur/court
  • Latéral/long
    pour déterminer SI x AP x IE, en cm
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8
Q

Nommez des critères de rejet de spécimen

A

ID inadéquat:
- patient erroné
- mélange de contenants d’un même patient
Échantillon inadéquat:
- absent
- souillé
- dégradé

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9
Q

Nommez différentes façons d’orienter un spécimen

A
  • Sutures
  • Agrafes
  • Traceurs
  • Drapage
  • Diagramme
  • Section
  • Encrage
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10
Q

Nommez des motifs de prélèvement de spécimen

A
  • Diagnostic
  • Résection (tumeur, marges)
  • Ré-excision
  • Thérapie
  • Esthétique
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11
Q

Quel est le but de l’examen macroscopique?

A

Identifier :
- Structures anatomiques (diagramme, photo)
- Marqueurs d’orientation (sutures, agrafes, tatouages)
- Traceurs (radiologie)
- Mesures (SI x AP x IE en cm, poids en g)
- Encrages (lésion suspecte/marges)
- Examen détaillé (cavités, liquides, lésions, invasion, ganglions)

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12
Q

Pourquoi dit-on que le ganglion est la lésion la plus importante d’un spécimen?

A

Sa présence peut être l’indice de:
- Fortuitome = diagnostic de lésion non-suspectée
- Maladie auto-immune = Rhumatismes, Connectivites, Vasculites
- Néoplasie
- Infection opportuniste

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13
Q

Nommez des causes de diminution du nombre de ganglions dans un spécimen

A
  • Âge
  • Radiothérapie
  • Chimiothérapie
  • Résection limitée
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14
Q

Quelle est l’utilité des marges d’encrage?

A
  • Documenter la présence de lésion(s) ou non
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15
Q

Caractériser la marge de type “En face”

A
  • Avantages: étude d’une surface plus importante, totalité du spécimen
  • Désavantages: impossibilité d’évaluer la distance à la marge, artéfact de cautérisation possible, orientation difficile
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16
Q

Caractériser la marge de type “Perpendiculaire”

A
  • Avantages: la plus utilisée, distance à la marge évaluable
  • Désavantages: très petites portions de marge si résection large
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17
Q

Nommez les étapes de l’encrage de spécimen

A
  • RETRAIT AGRAFES
  • SÉCHAGE du spécimen
  • ENCRAGE du spécimen (plusieurs couleurs possibles)
  • APPLICATION DU MORDANT: Acide acétique, Méthanol
  • APPLICATION AGRAFES AUX MARGES
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18
Q

Nommez des éléments importants à considérer lorsque le spécimen contient multiples lésions

A
  • Type de lésion(s): Primaire vs Métastase
  • Nombre de lésion(s)
  • Relation entre lésion(s): distance, organisation
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19
Q

Lorsque le spécimen contient multiples lésions, il est impératif de….

A

Soumettre un échantillonnage pour:
- chaque lésion
- chaque portion de tissu inter-lésionnel si < 2cm

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20
Q

En situation de contenant de spécimen VIDE, il faut…

A
  • Examiner attentivement le contenant (pot, couvercle, bistouri, aspiration, passoire)
  • Remonter chaîne de traitement (histotechnicien, secrétaire)
  • Contacter le clinicien requérant et documenter le l’échange
  • Conserver le contenant jusqu’à résolution du problème
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21
Q

En situation de spécimen PERDU APRÈS RÉCEPTION, il faut…

A
  • Vérifier si l’échantillon requiert des instructions spéciales à cause du risque infectieux (ex : TB, prions)
  • Vérifier si l’échantillon a été PERDU accidentellement
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22
Q

Nommez des termes descriptifs de FORME de lésion

A

FORME:
Circonscrite, Spéculée, Irrégulière, Serpigineuse, Dentelée, Bosselée, Lobulée, Maculaire, Papulaire, Papillaire, Villeuse, Pédonculée, Sessile, Exo/Endophytique, Verruqueuse, Fimbriée

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23
Q

Nommez des termes descriptifs de TEXTURE de lésion/muqueuse

A
  • TEXTURE: Veloutée, Friable, Papyracée, Scabreuse
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24
Q

Nommez des termes descriptifs de SUBSTANCE FLUIDE

A
  • FLUIDE: Visqueuse, Séreuse/Aqueuse, Muqueuse/Gélatineuse, Épaisse, Suppurée, Collante, Purulente, Malodorante
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25
Q

Associez des termes descriptifs à des diagnostics ou interprétations présumés:
MASSE = …
IRRÉGULARITÉ = …
SOLIDITÉ = …
INVASION = …
HÉMORRAGIE = …
OXYDATION SANG = …
PURULENCE = …
LIPONÉCROSE = …

A

MASSE = Carcinome
IRRÉGULARITÉ, INVASION, SOLIDITÉ = Malignité
HÉMORRAGIE = Rougeâtre/Brunâtre
OXYDATION SANG = Verdâtre
PURULENCE = Verdâtre
LIPONÉCROSE = Jaunâtre/Beige

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26
Q

Caractéristiques de la Formaline (4% formaldéhyde)

A

Spécimen:
Plusieurs

Propriétés:
- Pénétrance lente (0.1cm/6h donc 6-8hrs minimum)
- Artéfacts nucléaires
- Dissolution cristaux goutteux/calcifications
- Toxicité respiratoire; Carcinogénicité

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27
Q

Caractéristiques du B+ (= Formaline + ZnCl2) et
B5 (= Formaline + ZnCl2 + HgCl2)

A

Spécimen:
Rate, Ganglions, Organes lymphoïdes, Sang

Propriétés:
- Pénétrance lente (0.1cm/6h donc 6-8hrs minimum)
- Artéfacts nucléaires
- Dissolution cristaux goutteux/calcifications
- Inhibition PCR
- Toxicité respiratoire; Carcinogénicité

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28
Q

Caractéristiques du Bouin (Picrate, Acétate, Formaldéhyde)

A

Spécimen:
Ganglions, Moelle osseuse, petit spécimen

Propriétés:
- 8hrs maximum
- Dissolution fer/calcifications
- Dégradation ADN/ARN
- Précaution avec étude immunopéroxydase
- Risque explosion

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29
Q

Caractéristiques du Zenker (= K2Cr2O7 + CH3COOH + HgCl2)

A

Spécimen:
Moelle osseuse, Sang, Tissus mous (muscle), Cellules argentaffines

Propriétés:
- Pénétrance lente
- Précaution temps de fixation/rinçage
- Dissolution fer
- Perte antigénicité
- Inhibition PCR
- Corrosion métaux; Risque contact avec peau

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30
Q

Caractéristiques du glutaraldéhyde (dans tampon 0.1M cacodylate)

A

Spécimen:
Microscopie électronique

Propriétés:
- Pénétrance lente
- Précaution temps de fixation/rinçage
- Réfrigération nécessaire
- Faux (+) au PAS

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31
Q

Caractéristiques du Méthanol/Éthanol

A

Spécimen:
Déshydratation, Goutte, Étalement, Impression, Congélation

Propriétés:
- Pénétrance lente
- Précaution temps de fixation/rinçage
- Dissolution lipides
- Rétrécissement tissulaire

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32
Q

Caractéristiques des fixateurs contenant ROH autres que Formaline

A

Avantages: Plusieurs options, Facilité usage/coût, qualité immunopéroxydase

Désavantages: Protocoles non-validés, Pénétrance lente (petit spécimen), Préservation noyau/cellule sous-optimale, Attention immunoperoxydase ER/PR

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33
Q

Nommez des éléments essentiels pour l’échantillonnage optimal du spécimen

A

Échantillonnage (20 cassettes typiquement) :
- Lésions
- GANGLIONS
- MARGES
- Tissu sain patient (contrôle interne)
- Tissu autre que patient (contrôle externe)

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34
Q

Nommez des avantages/inconvénients de la fixation du spécimen

A

AVANTAGES:
- Préservation du tissu
- Durcissement du tissu
- Stabilisation du tissu
- Inactivation agent infectieux
- Accroître avidité colorants.

DÉSAVANTAGES:
- Altération structure protéique
- Perte cholestérol/glycogène
- Dégradation ADN/ARN
- Rétrécissement tissu

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35
Q

Indiquez des paramètres importants pour la fixation du spécimen

A
  • Pénétrance (épaisseur)
  • Volume (15-20x)
  • Température de fixation
  • Temps de fixation
  • Temps d’ischémie (pathologie, arrêt perfusion, prélèvement, transport, technique)
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36
Q

Quel est le temps d’ischémie froide maximale acceptable?

A

1 heure

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37
Q

Décrire les étapes de la technique du spécimen (contenu dans une cassette suivant l’étape de fixation avec circulateur)

A

1) Déshydratation (Alcools)
2) Clarification (Xylène/Toluène)
3) Enrobage (avec paraffine)
4) Déparaffinisation
5) Inclusion avec orientation

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38
Q

Nommez des artéfacts causés par l’alcool durant l’étape de déshydratation?

A
  • Dissolution des lipides
  • Dissolution du glycogène
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39
Q

Quelles propriétés du Xylène et du Toluène en font des clarificateurs idéaux?

A

Ce sont des substances miscibles avec l’alcool et la paraffine

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40
Q

Nommez des caractéristiques du spécimen (tissu) influençant la qualité de la technique

A
  • Teneur en graisse/eau
  • Épaisseur/Orientation
  • Nombre/taille de fragments
  • Fixation
  • Métal (agrafes, sutures, éclats balles), Cheveux (ex : sillon pilonidal), Calcifications
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41
Q

Nommez 5 exemples de valeurs critiques en pathologie

A

1) Tissu adipeux / polypectomie endoscopique
2) Embole adipeuse / curettage endométrial
3) Tissu trophoblastique ou villeux absent / grossesse
4) Infection / immunosuppression
5) Réactivation virale / immunosuppression (ex: PTLD)
6) Glomérulosclérose >50% / biopsie rénale
7) Néoplasme inattendu (ex: lymphome MALT)
8) Néoplasme / contexte SVC
9) Néoplasme / paralysie centrale ou périphérique
10) Infection LCR, LBA, Synovium, Endocardium
11) Mycobacterium, Actinomyces, Herpès, Candida, Pneumocystis

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42
Q

Nommez les types de pré-traitement de la lame de verre couramment utilisés augmentant la qualité de la technique

A

Prétraitement :
- Glycine
- Poly-L-Lysine
- Charge (-)

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43
Q

Nommez des types d’artéfacts possibles :

A

Artéfacts possibles :
- Mauvaise identification/orientation (TYPE I SPC)
- Rétrécissement (shrinkage)
- Trou (hole)
- Déchirement (tear)
- Pli (folds)
- Inégalité (chatter)
- Flotteur (floater, TYPE II SPC)
- Tourbillon (swirlie)

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44
Q

Quelle est l’attitude à tenir en situation de flotteurs (floaters, TYPE II SPC)?

A

1) Encercler contaminant sur la lame
2) Vérifier propreté chaîne de traitement du spécimen (instruments, solutions encre/fixateur, circulateurs, stations)
3) Vérifier bloc/autres blocs du même jour
4) Refaire des sections
5) Retirer contaminant et refaire bloc
6) Mentionner dans le rapport
7) Tester ADN

45
Q

Quelle est l’utilité du rapport de pathologie pour le patient? Pour l’institution?

A

Patient:
1) Diagnostic (Néoplasme, Infection, Corps étranger)
2) Pronostic (ex: Ki-67)
3) Thérapie (ex: ER/PR, c-kit/CD117, PD-L1)
4) Critères éligibilité pour ECRs (cohortes)

Institution:
1) Banques de données
2) Assurance-Qualité

46
Q

Nommez des éléments importants de la section “Identifiants” d’un rapport de pathologie

A
  • Institution (Nom/Adresse/Téléphone)
  • Patient (DDN/RAMQ/No. Dossier)
  • Pathologiste
  • Histotechnicien
47
Q

Nommez des éléments importants de la section “Information spécifique à envoi” rapport de pathologie

A
  • Clinicien requérant
  • Date procédure/réception
  • Données cliniques de requête
  • Type/Liste spécimens soumis de requête
  • Instructions spéciales
  • Information spécifique à examen spécimen envoi
  • Numéro de requête
48
Q

Nommez des éléments importants de la section “Évaluation” rapport de pathologie

A
  • Macroscopie (Trouvailles, Échantillonnage soumis)
  • Microscopie (Trouvailles)
  • Diagnostic de pathologie avec rapport synoptique si néoplasme
  • Examen extemporané
  • Codes de facturation
  • Addenda (étude complémentaire)
  • Révision
  • Date validation rapport
49
Q

Nommez des situations qui peuvent engendrer une révision de rapport de pathologie

A
  • Discordance extemporané vs H&E
  • Discordance entre pathologistes si consultation
  • Découverte inattendue (tumeurs, infections)
  • Erreur d’identification
  • Information critique ajoutée en addendum
50
Q

Nommez 7 facteurs influençant l’antigénicité du spécimen

A
  • Type de prélèvement spécimen (cautérisation vs biopsie)
  • Temps d’ischémie (idéal <1hre)
  • Fixation
  • Technique
  • Section
  • Délai entre coupe et étude immunohistochimique
  • Récupération antigène (température, enzyme)
51
Q

Nommez 2 éléments essentiels pour une étude immunohistochimique optimale

A

1) Anticorps
2) Contrôle/Panel d’immunomarquage

52
Q

Indiquez 9 paramètres essentiels d’utilisation d’un anticorps pour une étude immunohistochimique

A

1) Type
2) Dilution
3) Conditions d’incubation
4) Méthode de récupération d’antigène
5) Blocage
6) Méthode de détection
7) Chromogène
8) Contre-coloration
9 ) Multiplex

53
Q

Indiquez les 3 types de contrôles essentiels employés pour une une étude immunopéroxydase

A

1) Interne (tissu patient)
2) Externe (tissu autre que patient)
3) Négative (anticorps primaire absent ou non-immun)

54
Q

Indiquez un type cellulaire exprimant:
S100 :
CD31 :
aSMA :
C-kit :
Vimentine :
Desmine :
Kératines HPM (1-6; 9-17) :
Kératines BPM (7,8, 18-20) :
CD15 :

A

S100 : mélanocyte, cellule Langerhans, nerf
CD31 : endothélium
aSMA : cellule myoépithéliale
C-kit : mastocyte
Vimentine : mésenchyme
Desmine : muscle
Kératines HPM (1-6; 9-17) : épithélium malpighien
Kératines BPM (7,8, 18-20) : épithélium glandulaire
CD15 : polymorphonucléaire

55
Q

Indiquez 7 éléments à considérer lors de l’interprétation de lames pour une étude immunopéroxydase

A

1) Site
2) Section centre vs limites
3) Bruit de fond
4) État tissu (âge lame)
5) Localisation inadéquate/aberrante
6) Cellules immunes
7) Intensité marquage

56
Q

Indiquez 7 éléments à considérer lors de l’interprétation de lames pour une étude immunopéroxydase

A

1) Site
2) Section centre vs limites
3) Bruit de fond
4) État tissu, âge lame
5) Localisation inadéquate/aberrante (TTF-1, Ki67, NMP1 nucléaire vs E-cadhérine, p120 caténine, bêta-caténine membranaire)
6) Cellules immunes
7) Intensité marquage

57
Q

Nommez les avantages des études immunohistochimiques de type Multiplex

A
  • Étude cellules peu nombreuses
  • Multiples antigènes/populations de cellules
58
Q

Donnez des exemples de panel Multiplex

A

Exemples :
- Sein (ADH-5, Triview, Triple stain, LC/DC)
- Prostate (AMACR, Kératines HPM, p63)
- Liquide pleural (AE1/AE3 + WT1)
- Mélanome (tyrosinase, MART-1, HMB45, S100)

59
Q

Expliquer le principe de classification des tumeurs différentiées par étude immunohistochimique

A

Utiliser un panel incluant : Kératines 7 et 20

SCC, HPC, TNE, autres : CK7(-) CK20 (-)
CA BRAFmut: CK7(+) CK20 (-)
COLORCA MSI-H, MRKLCA : CK7(-) CK20 (+)
CCA, UCA, PCA, OCA, OMCA: CK7(+) CK20 (+)

60
Q

Expliquer le principe de classification des tumeurs indifférentiées par étude immunohistochimique

A

Utiliser un panel incluant :
- Kératines (épithélium)
- S100 (mélanocyte, histiocyte, nerf)
- LCA (cellules immunes)

61
Q

Donnez les 6 éléments essentiels au rapport d’étude immunohistochimique

A

1) Type tissu
2) Anticorps avec spécificité (contrôles interne/externe)
3) Malin vs bénin
4) Immunoréactivité/Intensité
5) Nombre de cellules, Pourcentage
6) Références

62
Q

Nommez les types d’immunofluorescence

A
  • Directe
  • Indirecte
63
Q

Quelle est l’utilité de l’immunofluorescence en pathologie

A

1) Peau (TEN, SLE, Herpes, IgA, Ig/C3)
2) Reins
3) Cerveau
4) Cœur
5) Nerfs

64
Q

Nommez les 3 types d’anomalies détectables par PCR

A

1) Altérations cellules germinales
2) Mutations somatiques
3) Maladies infectieuses (Fungi, Bactérie, Virus)

65
Q

Caractéristiques du Bouin (Picrate, acétate, formaldéhyde)

A

Spécimen:
Ganglions, Moelle osseuse, petit spécimen

Propriétés:
- 8hrs maximum
- Dissolution fer/calcifications
- Dégradation ADN/ARN
- Précaution avec immunoperoxydase
- Risque explosion

66
Q

Nommez 6 types de consultations en pathologie

A

1) Médico-légal
2) Intra-hospitalière
3) Institutionnelle
4) Spécialiste
5) Étude spéciale (Coloration, Microscopie électronique)
6) Recherche

67
Q

Définir un test immunohisto/cytochimique de classe 1

A

Un test immunohisto/cytochimique :
1) réalisé dans un contexte clinique ET
2) interprété par un(e) pathologiste ET
3) confirmant les résultats d’études histo/cytomorphologiques

Ex : S100, p63, CD45

68
Q

Définir un test immunohisto/cytochimique de classe 2

A

Un test immunohisto/cytochimique :
1) réalisé dans un contexte clinique ET
2) interprété par un(e) pathologiste ET
3) ne pouvant confirmer directement les résultats d’études histo/cytomorphologiques

Ex : Dosage hormonal ou marqueur sérique, C-kit (Leucémie aiguë), Bcl-2 (Lymphome folliculaire)

69
Q

Définir un test immunohisto/cytochimique qualitatif

A

Un test immunohisto/cytochimique dont:
1) le résultat est positif ou négatif
2) l’usage implique l’emploi d’une valeur-seuil
3) l’optimisation nécessite l’usage de contrôle interne/externe
4) la calibration nécessite une validation d’assurance/contrôle-qualité

Ex : Ki-67/cancer du sein

70
Q

Définir un test immunohisto/cytochimique quantitatif

A

Un test immunohisto/cytochimique dont:
1) le résultat est rapporté systématiquement selon un score établi
2) l’usage implique l’évaluation d’images ou le décompte cellulaire manuel
3) l’optimisation nécessite l’usage de contrôle interne/externe
4) la performance est déterminée par consensus entre professionnels/chercheurs/cliniciens

71
Q

Définir un test immunohisto/cytochimique pronostic

A

Un test immunohisto/cytochimique qualitatif ou quantitatif pouvant déterminer, de manière indépendante, l’issue clinique de la condition du patient

72
Q

Définir un test immunohisto/cytochimique prédictif

A

Un test immunohisto/cytochimique qualitatif ou quantitatif pouvant déterminer, de manière indépendante, la réponse à une thérapie

Ex : HER2/cancer du sein, c-kit/ GIST, anticorps CD/lymphome ou leucémie

73
Q

Nommez 5 types de contrôle d’étude immunohistochimique utilisés en contrôle-qualité

A
  • Tissu humain
  • Lignée cellulaire
  • Préparation lyophilisée
  • Solution
  • Appareil
74
Q

Quelles sont les limites de l’examen extemporané?

A

1) Échantillonnage
2) Artéfacts de congélation
3) Absence d’études spéciales
4) Impossibilité de consultations sur le champ

75
Q

Indiquez 5 éléments d’information pertinents à un examen extemporané?

A

1) Identifiants
2) Histoire clinique
3) Motif procédure
4) Type procédure
5) Potential infectieux de l’échantillonnage

76
Q

Quelle est la taille optimale d’une portion de tissu pour un examen extemporané?

A

0.5 x 0.5 x 0.3 cm

77
Q

Nommez des éléments relatifs au tissu et à la technique pouvant influencer la qualité d’un examen extemporané?

A

Tissu :
- Teneur en eau
- Teneur en graisse
- Épaisseur
- Orientation
- Nombre/taille de fragments
- Métal (agrafes, sutures, éclats balles)
- Cheveux (ex : sillon pilonidal)
- Calcifications

Technique :
- Fixation au méthanol

78
Q

Décrire les étapes de la coloration Hématoxylline-Éosine et mentionner l’objectif de chacune

A

1) HÉMATOXYLINE 90 secondes avec agitation (colorer noyaux en bleu)

2) RINÇAGE À L’EAU 10 secondes (enlever excédent colorant)

3) HCL 1% 2 secondes (enlever colorant des éléments non-nucléaires; ATTN: étape optionnelle influençant qualité de coloration)

4) BORATE DE SODIUM 2% 2 secondes (alcaliniser et optimiser coloration noyaux)

5) ÉOSINE 30 secondes (colorer protéines cytoplasmiques rouge/rose)

6) DÉSHYDRATATION avec solutions d’alcools en concentration croissante (ATTN: étape optionnelle influençant qualité de coloration)

7) XYLÈNE (poursuivre déshydratation)

8) MONTAGE

79
Q

Quelles sont les deux étapes du protocole de coloration à l’H&E qui peuvent nuire à la qualité de la coloration?

A

Les étapes de :

1) décoloration des éléments non-nucléaires (HCL 2%)

2) déshydratation (solutions d’alcools en concentration croissante)

80
Q

Dans quelle(s) situation(s), l’examen par préparation cytologique est utile et nécessaire?

A

1) Désordres lymphoprolifératifs
2) Lésions du système nerveux central
3) Infections
4) Nodules thyroïdiens
5) Nodules pulmonaires
6) Néoplasmes à documenter avant études spéciales
7) Échantillons difficiles à congeler
8) Petits spécimens

81
Q

Nommez les éléments importants figurant sur un rapport d’examen extemporané

A

1) Identifiants
2) Type d’examen (macroscopie, congélation, cytologie)
3) Diagnostic
4) Disposition de l’échantillon restant
5) Date/Heure de réception
6) Date/Heure de validation du rapport

82
Q

Nommez les types de préparations cytologiques usuelles

A
  • Aspiration aiguille fine (23G, 25G)
  • Impression
  • Étalement
83
Q

Indiquez les 2 types de coloration utilisées couramment pour les préparations cytologiques

A
  • Hématoxyline-Éosine
  • Diff-Quik (Giemsa modifié)
84
Q

Définir les catégories de discordance reconnues en analyse d’assurance-qualité

A
  • Catégorie A : discordance mineure sans impact sur prise en charge
  • Catégorie B : discordance avec impact non-significatif sur la prise en charge
  • Catégorie C : discordance majeure avec impact significatif sur la prise en charge
85
Q

Quelles sont les sources d’erreurs communes lors d’un examen extemporané?

A
  • Échantillonnage (site/taille du spécimen)
  • Interprétation (bénin vs malin, histoire clinique, examen marges)
  • Technique (préparation, artéfact de congélation)
  • Histoire clinique incomplète/inadéquate
  • Autres
86
Q

Énumérer les requêtes typiques d’examen extemporané

A

OS
- BIOPSIE OSSEUSE (évaluer curettage/drapage par congélation)
- LARGE SPÉCIMEN (évaluer marges par cytologie/congélation )
- ARTHROPLASTIE (évaluer infection par congélation )

PEAU
- ELLIPSE CUTANÉE (carcinome basaloïde/épidermoïde, évaluer marges par congélation)
- PEAU EXFOLIÉE (épidermolyse S. aureus vs toxique)
- BIOPSIE CUTANÉE EXCISIONNELLE (fasciite nécrosante, évaluer atteinte musculaire)

SEIN
- BIOPSIE MAMMAIRE (néoplasme >1 cm UNIQUEMENT)
- MARGES (carcinome invasif, évaluer marges/ganglions)
- GANGLIONS SENTINELLES (habituellement 2, évaluer MÉTASTASES)

GASTRO-INTESTINAL
- OESOPHAGECTOMIE/GASTRECTOMIE (cancer gastrique diffus, adénocarcinome oesophagien, évaluer marges/ganglions)
- POLYPECTOMIE (cancer colorectal, évaluer marges/ganglions par congélation, ATTN rétraction 40% en 20 minutes)
- RÉSECTION INTESTINALE (évaluer Crohn/marges/ganglions)
- BIOPSIE HÉPATIQUE (hépatocarcinome ou métastase, évaluer lésion/métastase)
- BIOPSIE PANCRÉATIQUE (carcinome pancréatique, évaluer lésion/métastase)

GÉNITO-URINAIRE
- SPERME (évaluer qualité)
- NÉPHRECTOMIE, CYSTECTOMIE, URETERECTOMIE (carcinome cellulaire transitionnel, évaluer marges), VASECTOMIE

NÉPHROLOGIE
- URETÈRE (évaluer lésion/marges)

GYNÉCO-PATHOLOGIE
- OVARIECTOMIE (tumeur ovarienne, évaluer lésion/marges)
- HYSTÉRECTOMIE partielle (tumeur ovarienne, évaluer lésion/marges/invasion cervicale)
- VULVECTOMIE partielle (tumeur vulvaire, évaluer lésion/marges/invasion cervicale)
- MYOMECTOMIE (léiomyome, évaluer lésion)
- PRODUIT DE CONCEPTION (grossesse, évaluation PRÉLIMINAIRE)

PNEUMOLOGIE
- MÉDIASTINOTOMIE (cancer poumon, évaluer stade/lymphadénopathie)
- MANCHON, LOBECTOMIE, PNEUMECTOMIE partielle (cancer poumon, évaluer lésion/marges/invasion bronchique)
- BIOPSIE PULMONAIRE (cancer poumon, évaluer lésion/marges/invasion bronchique)
- BIOPSIE GANGLIONNAIRE (cancer + extension, évaluer par fixation B+ et/ou formaline, congélation, cytométrie de flux, culture microbiologique)

NEUROLOGIE
- BIOPSIE STÉRÉOTACTIQUE (SIDA, Toxoplasmose, lymphome système nerveux central, évaluer lésion cérébrale)

TISSUS MOUS
- BIOPSIE (cancer + extension, évaluer par fixation B+ et/ou formaline, congélation, cytogénétique, microscopie électronique)

TISSUS ENDOCRINIENS
- AAF (cancer folliculaire, papillaire, médullaire, évaluer par fixation B+ et/ou formaline, congélation, cytogénétique, microscopie électronique)

87
Q

Donnez les critères diagnostiques du carcinome pancréatique?

A

Critères majeurs :
- Variation taille noyau (>4:1)
- Lumière glandulaire incomplète
- Distribution ductulaire désorganisée

Critères mineurs :
- Nucléoles épithéliaux proéminents et irréguliers
- Nécrose glandulaire
- Mitoses glandulaires
- Glandes sans stroma au sein de fascicules musculaires lisses
- Invasion périneurale

88
Q

Quelle est la base du système de classification des tumeurs?

A
  • Expression des marqueurs CK7 ET CK20
89
Q

Nommez un panel de marqueurs pour classifier rapidement les tumeurs d’allure épithélioïde

A

Le panel inclut :
1) Kératines large spectre
2) S100
3) CD45
4) CDX-2 (origine gastro-intestinale, pancréato-biliaire)
5) TTF-1/Napsin-A (origine pulmonaire)
6) GATA-3 (origine mammaire)

90
Q

Nommez un panel de marqueurs pour classifier rapidement les tumeurs d’allure fusiforme

A

Le panel inclut :
1) Kératines large spectre
2) S100
3) aSMA
4) Desmine

91
Q

Quelles sont les applications des tests ADN en pathologie chirurgicale?

A

1) ANOMALIES DE LIGNÉES DE CELLULES GERMINALES

  • Maladies héréditaires (CFTR; Fragile X; Facteur V Leiden c1601G>A; Prothrombine c20210G>A, Hémochromatose C282Y / S65C / H63D)
  • Gènes de susceptibilité (cancer du sein > BRCA1/2); Lynch > MLH1, MSH2/6, PMS2; Li-Fraumeni > TP53)

2) ALTÉRATIONS GÉNOMIQUES DE CELLULES SOMATIQUES

  • Anomalies d’importance diagnostique, pronostique (Ki-67 > cancer du sein), thérapeutique (HER2 >cancer du sein; c-kit > GIST)
  • Clonalité dans les syndromes prolifératifs hématolymphoïdes
  • Maladie résiduelle suivant un traitement (BCR-ABL1 > LLA)
  • Changements épigénétiques
  • Identification de virus associés aux virus (EBV > PTLD, HPV > cancer cervical, MCV > cancer cellules Merkel)

3) MALADIES INFECTIEUSES
- 18S > Fungi
- 16S > Bactéries
- Virus (EBV, CMV, HIV, HCV, HBV, BK)

4) MUTATIONS SPORADIQUES

92
Q

Quelles sont les modalités de soumission de spécimen pour un test ADN?

A
  • Caryotypage : spécimen frais, viable ET stérile
  • Séquençage : spécimen frais, congelé, fixé à la formaline
  • ISH : spécimen fixé à la formaline, cytospin, étalement, impression
93
Q

Quelle modalité d’analyse ADN est la plus utilisée en pathologie?

A

La méthode FISH (nombre de copies, réarrangements)

94
Q

Quelles sont les indications pour la microscopie électronique?

A

1) Biopsie rénale > maladie glomérulaire
2) Biopsie musculaire
3) Biopsie nerveuse
4) Maladie épidermolytique
5) Dysmorphologie ciliaire
6) Biopsie endomyocardique
7) Biopsie hépatique
8) Maladies intestinales infectieuses
9) Maladies métaboliques

95
Q

Quelles sont les trois indications les plus courantes pour la cytométrie de flux?

A

1) Ploïdie
> Mole hydatiforme

2) Phases du cycle cellulaire
> S/carcinome

3) Marqueurs de surface
> Leucémies, Lymphomes, COVID

96
Q

Quelle est la modalité de soumission de spécimen pour une cytométrie de flux?

A

Spécimen frais milieu Hank’s

97
Q

Quels sont les 4 types de spécimens pour lesquels la radiographie est essentielle?

A

1) Sein
2) Os/Cartilage
3) Néoplasmes osseux
4) Valves cardiaques bioprosthétiques

98
Q

Quels sont les avantages et inconvénients de la culture microbiologique d’un agent infectieux?

A

AVANTAGES :
- plusieurs types d’échantillons cultivables
- amplification de l’agent infectieux
- possibilité de tester susceptibilité de l’agent infectieux

INCONVÉNIENTS :
- amplification de l’agent infectieux parfois impossible (temps d’incubation prolongé)
- contamination possible

99
Q

Quels sont les avantages et inconvénients de l’étude histologique d’un agent infectieux?

A

AVANTAGES :
- identification de l’agent infectieux non amplifié par culture microbiologique
- caractériser l’agent infectieux par la réponse inflammatoire provoquée
- possibilité d’identifier l’agent infectieux par PCR

INCONVÉNIENTS :
- spécimen chirurgical requis
- identification difficile de l’agent infectieux
- spécificité limitée aux catégories d’agent infectieux

100
Q

Nommez des dangers potentiels auxquels sont exposés les travailleurs dans un laboratoire de pathologie

A

1) Maladies musculo-squelettiques
2) Maladies de la vision
3) Maladies infectieuses
4) Maladies néoplasiques
5) Maladies allergiques/irritatives
6) Maladies psychologiques
7) Exposition des muqueuses (piqûres, coupures)
8) Exposition radioactive (manipulation, palpation)
9) Exposition chimique (éclaboussures, vapeurs)
10) Épuisement

101
Q

Pour quels agents infectieux, existe-t-il une prophylaxie post-exposition efficace?

A

1) HIV
2) HBV

102
Q

Nommez des agents infectieux qui ne sont pas inactivés par la fixation à la formaline

A

1) Tuberculose
2) Prions

103
Q

Nommez des modes documentés de transmission de cancer humain-à-humain

A

1) Inoculation accidentelle
2) Transmission in utero entre jumeaux monozygotes
3) Transmission mère-enfant
4) Transplantation

104
Q

Nommez des substances polarisables au microscope à lumière blanche

A

1) Amyloïde
2) Os
3) Oxalate de calcium
4) Pyrophosphate de calcium
5) Acide urique
6) Coton
7) Amidon
8) Insectes
9) Végétaux

105
Q

Indiquez des méthodes de mesure d’éléments microscopiques

A

1) Vernier
2) Réfractomètre
3) Règle
4) Micromètre de plateau
5) Dimension du champ
6) Cellules sur spécimen ( hématie 7 microns)

106
Q

Nommez des moyens de préparation du spécimen

A

1) Inflation
2) Immersion
3) Flottaison
4) Transillumination
5) Dissection
6) Révélation
7) Sondes

107
Q

Nommez les quatre types de coloration utiles pour visualiser les mycobactéries

A

1) Ziehl-Nielsen
2) FITE
3) Auramine-Rhodamine
4) Kinouyn

108
Q
A

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