Laboratorio 1 Flashcards

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1
Q

¿Qué debo saber/ definir antes de iniciar una colecta?

A
  1. Definir el método de colecta y preservación más adecuado, según sea el fin (cualitativo o medición de características cuantitativas relativa a poblaciones).
  2. Conocer el artrópodo: hábitat, comportamiento, preferencia de alimentación.
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2
Q

Métodos de colecta para artrópodos que producen infestaciones

A

Raspado de piel (sarnas), extracción mecánica del artrópodo (miasis), cortado de pelos (Anoplura y Mallophaga), uso de redes entomológicas (moscas picadoras).

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3
Q

¿Qué es un artrópodo antropofílico?

A

Organismo especialmente adaptado para parasitar o infectar al hombre.

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4
Q

¿Para qué fines se hace una colecta entomológica?

A
  1. Colecciones de referencia (tiempo): permiten realizar comparaciones entre material colectado recientemente con respecto a ejemplares referenciados o previamente identificados.
  2. Proyecto de investigación (objetivos: análisis genéticos, moleculares y microbiológicos).
  3. Vigilancia entomológica de rutina (rápido, dinámico): no almacenaje.
  4. Colonias: se debe mantener vivos los ejemplares o descendencia.
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5
Q

Preservación según información deseada

A
  1. En seco: morfología y color; añadir protección contra hongos/artrópodos.
  2. En láminas: vista al microscopio; previo al montaje en alcohol.
  3. Vivos/muertos a temperatura viable: detección de patógenos, cultivo de bacterias/virus, obtención de parásitos.
    *Virus ARN(dengue) tiene rápida degradación.
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6
Q

Ejemplos de colecta

A
  1. Trampa CDC (Mosquitos): recolecta en seco.
  2. Etanol y formalina: montaje en lámina, pcr.
  3. Colecta viva en criadero.
  4. Colecta poco selectiva: manta blanca y luz.
  5. Colecta directa de ectoparásitos.

*Inspección y búsqueda directa

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7
Q

¿Qué es una colección entomológica, y qué utilidad tiene?

A

Colección tipo museo: preservación óptima que logre identificación, uso de referencia o análisis posteriores.

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8
Q

Tipos de preservación en colección entomológica/referencia

A
  1. En seco: alfiler entomológico o minuten, cajas de transporte.
    *Artrópodos tamaño grande, mediano, pequeños
    (mosquitos).
  2. Lámina
    *Artrópodos pequeños y microscópicos.
  3. En vial: fluido preservante
    *No insectos; crustáceos, arácnidos, miriápodos, formas
    inmaduras (larvas, huevos), artrópodos de cuerpo suave.
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9
Q

¿Cuáles son los pasos generales para el montaje de colecciones de referencia?

A

Muerte, fijación, aclaración, montaje, rotulación, identificación

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10
Q

Opciones para muerte de artrópodos

A
  1. Muerte por asfixia en Cámara de muerte: sustancia volátil (cloroformo, alcohol, acetona) que tiene la capacidad de propiciar una atmósfera asfixiante.
  2. Muerte por inmersión en solventes: etanol 70% o formalina 10%.
  3. Inmersión en agua hirviendo
  4. Congelación: requiere de tiempo.
  5. Inyección de anestésicos o sustancias letales: inhalables o inyectables, artrópodos grandes (cangrejos, langostas).
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11
Q

Desventajas y ventajas de muerte por inmersión en solventes

A

Ventajas: Fácil, versátil, fijador, permite colectar grandes cantidades de material, alcohol 70% favorece la conservación del material para estudios histológicos o la extracción de ADN.
Desventajas: pérdida de colores y deshidratación.

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12
Q

¿Para qué estadio/artrópodo se usa la muerte por inmersión en agua hirviendo, mencione su ventaja?

A

Larvas de mosca, evita que se pongan negras y contraigan.

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13
Q

¿La muerte por inmersión en agua hirviendo también cumple el paso de fijación?

A

Sí, desnaturaliza proteínas.

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14
Q

Ventajas de la muerte por congelación de artrópodos

A
  1. Viabilidad para análisis moleculares.
  2. Se mantienen casi en seco.
  3. Útil para cuando no se puede montar en el momento. Almacenar por días o meses.
  4. Útil cuando no se tiene cámara de muerte.
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15
Q

¿Qué es la muerte “Procedimiento de 2 pasos”?

A

Primer paso busca dejar a artrópodo en estado de latencia (evita estrés); seguidamente se da muerte (cambio de Cn, cámara de muerte, temperatura)

Opciones para latencia
1. Anestésicos a baja concentración
2. Hipotermia: temperatura 4ª
3. Etanol diluido (5-10%): 15 min

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16
Q

¿Por qué es necesaria la fijación y en cuáles tipos de montaje se usa?

A

Evita pudrición y permite preservación de estructuras
Para: montaje en lámina, vial (colección húmeda), en seco (exclusivamente ejemplares grandes o con abdomen abultado)

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17
Q

¿Cuál es el objetivo de la fijación y cómo se realiza?

A

Tiene como objetivo preservar estructuras de interés para
la identificación y análisis morfológico, por medio de la desnaturalización proteínas.

Uso de: etanol, agua hirviendo, xilol-alcohol, bouin, formalina.

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18
Q

¿Para qué tipo de montaje es indispensable la aclaración y por qué?

A

Para aquellos montados en lámina, permite generar transparencia y ablandamiento de ejemplares de cutícula esclerosada; y con esto que la luz atraviese el espécimen y se pueda ver su estructura.

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19
Q

¿Se deben aclarar los ejemplares para el montaje en vial (colección húmeda)?

A

No.

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20
Q

¿Qué sustancias se utilizan para el aclarado, y cuáles son sus ventajas o desventajas?

A
  1. Lactofenol: permite el montaje directo desde medios acuosos (sin lavados), no suaviza la cutícula, se usa a temperatura ambiente, dura aprox. 24h
  2. KOH 10%: excelente aclarador, rápido 2-3 min.
    *Requiere calor (no ebullición), se debe controlar el tiempo (quemar), requiere lavados (agua (10/5), etanol (10)).
21
Q

Si posterior al aclarado no puedo realizar el montaje, cómo puede conservar mi espécimen?

A

Se puede almacenar en vial con etanol hasta el momento de su montaje.

22
Q

¿Para una colección entomológica siempre es necesario el montaje?

A

Sí, también el paso de muerte y rotulación e identificación.

23
Q

Tipos de montaje

A
  1. Alfiler: procedimiento de preferencia para el mantenimiento de material a largo plazo el cual será utilizado como referencia, ideal para adultos >2cm.
  2. Lámina.
  3. Vial: requiere recambio constante de los líquidos, método más utilizado para transporte. **alcohol 70%, isopropanol 80 % o
    formalina 10%.
24
Q

Recomendaciones para montaje en alfiler

A
  1. Deben ser ejemplares frescos, congelación o en etanol (no alas suaves o aquellos que busque preservar el color).
  2. Colocar alfiler central en mesotórax y artrópodo en posición de reposo o simétrica con alfileres extra.
  3. Dorso del ejemplar a un tercio bajo la cabeza del alfiler
  4. Formalina 10% 0,5ml artrópodos con abdomen abultado.
  5. Utilizar minuten o triángulo de papel para ejemplares pequeños.
25
Q

¿En qué consiste una cámara húmeda?

A

Similar a cámara de muerte, se agrega agua y formalina. Permite generar un ambiente húmedo, útil en ejemplares muy rígidos.

26
Q

¿Cómo puedo ubicar el mesotórax?

A

Con el segundo par de patas o primer par de alas.

27
Q

¿En qué lugar va el alfiler central en los hemípteros y en los coleópteros?

A

Hemípteros=escótelo (hacia la derecha)
Coleóptero= Línea media del élitro derecho.

28
Q

¿En qué estructura se coloca o atraviesa el triángulo de papel/minuten?

A

Minuten: tórax o pleura de tórax
Papel: parte ventral o en mesopleuras.

29
Q

¿Por qué el montaje en lámina no es tan útil para identificación de mosquitos?

A

Debido a que es necesario ver manchas, patrones de colores, etc..deben montarse en minuten o triángulo de papel.

30
Q

Tipos de montaje en lámina y sus características

A
  1. Permanente: requiere permeabilización y deshidratación del ejemplar (alcohol 70/80/90/100, tolueno, xilol), se usan resinas (montaje Permount o bálsamo Canadá)
  2. Semipermanente: no requiere deshidratación, utiliza medios acuosos (Hoyer, glicerina, alcohol polivinílico) , se puede montar directamente de etanol o lactofenol.
31
Q

¿Qué característica positiva tiene el medio Hoyer?

A

Permite completar él procesos de aclaración, debido a sus componentes (hidrato de coral).

32
Q

¿Los ácaros deben aclararse para su montaje en lámina?

A

No. Algunos huevos de mosca, mosquitos o piojos tampoco, si se montan con Hoyer.

33
Q

¿Qué pasos se deben seguir posterior a colocar el cubreobjetos en el montaje en lámina?

A

Dejar secar por varios días a 37ª o más, anillar (evita rehidratación).
No pasar paños húmedos.

34
Q

Describa la técnica de montaje “Por inversión”

A

Se coloca el ejemplar en el centro de la lámina, se coloca una gota de Hoyer, quitar burbujas, invertir sobre cubreobjetos, dar la vuelta.

*Cantidad de medio depende del ejemplar.
*No se debe estripar el cubre.

35
Q

¿Cómo se colocan los artrópodos comprimidos, deprimidos, larvas y pupas en el portaobjetos?

A

Comprimidos (pulga): patas arriba, cabeza derecha.
Deprimidos (piojos, garrapata, mosquito): abdomen arriba, cabeza abajo.
Larvas: posición horizontal.
Pupas: diagonal

36
Q

¿Cómo es el mantenimiento de ejemplares en alfiler y cómo se ordenan?

A

Cajas entomológicas, insecticidas o repelentes (naftalina, tiras fumigantes), deshumificador (gel sílica), excelente ventilación, limpieza regular, continua revisión de los ejemplares para verificar su limpieza y curación.
*Se ordenan preferiblemente por clasificación taxonómica.

37
Q

¿Cómo es la rotulación e identificación en alfiler?

A

Etiqueta superior: sitio de colecta, hospedero, fecha de colecta, colector
Etiqueta inferior: orden, familia, especie, sexo o estadio, año de identificación/identificador. Subfamilia o Suborden si es necesario.

38
Q

¿Cómo es la rotulación e identificación en lámina?

A

Etiqueta izquierda: sitio de colecta, hospedero/ambiente/naturaleza, fecha de colecta, colector.
E. derecha: orden, familia, especie, sexo o estadio, año de identificación**/identificador. Subfamilia o Suborden si es necesario.

*Siempre debe incluirse

39
Q

¿Cómo es la rotulación e identificación en vial?

A

Dos etiquetas independientes, escritas a un único lado, tinta resistente a alcohol o impresiones láser, papel normal.

40
Q

¿Cómo funciona la identificación molecular de especies?

A

Gen citocromo oxidasa 1, PCR, secuenciación, Gene Bank (análisis de blast), identificación y relaciones filogenéticas.

41
Q

Grupo de artrópodos según mayor a menor cantidad

A

Coleopteros, Lepidoptera, Hymenoptera, Diptera.

42
Q

Ventajas y desventajas de la identificación molecular

A

Ventajas: útil, exacto, ampliamente utilizado en investigación.
Desventajas: tiempo, recursos, conocimiento experto.

43
Q

¿Qué son las claves (llaves dicotómicas) y cuáles son sus características?

A

Herramientas de identificación taxonómica

  1. Análisis de características fenotípicas mediante criterios de presencia y ausencia.
  2. Características son mutuamente excluyentes.
  3. Sistema organizado de números (o letras), referencia dicotómica nueva.
  4. Existen claves dirigidas a diferentes niveles de organización taxonómica (órdenes, familias, géneros, especies, etc…)
44
Q

¿Qué requerimientos suponen el uso de claves dicotómicas?

A
  1. Conocimiento de la terminología entomológica.
  2. Verificación de características (microscopio, estetoscopio, lupa).
  3. Decisión sobre la condición dicotómica.
45
Q

Si se persigue la medición de características cuantitativas relativas a las poblaciones, qué debo tomar en cuenta:

A

Debe existir un criterio de muestreo estadístico y la elección del método de colecta (Cebos humanos/Animales, CDC, aspiradoras de espalda) tiene que ser cuidadosa para poder garantizar resultados confiables

46
Q

¿Qué son las cajas de transporte y cuál es su utilidad?

A

Método de preservación temporal el cual es favorable para el envío de ejemplares del campo al laboratorio. Consiste en cajas de plástico o cartón, preservante (naftalina, paradiclorobenceno) , niveles o divisiones.

47
Q

¿Qué reactivos contiene la solución de lactofenol y en qué envases se almacena?

A

A. láctico, agua destilada y fenol en cristales.
Envases color ámbar.

48
Q

¿Cómo preparo una solución acuosa de Hidróxido de potasio 10% p/v y en que envases debo almacenarla?

A

KOH 22,5g diluidos en 225mL de agua destilada. Envases plásticos.

49
Q

¿Qué reactivos tiene el medio Hoyer y cuáles recomendaciones debo seguir para su preparación?

A

Agua destilada, Goma arábica granulada, hidrato de coral, glicerina. Se deben agregar reactivos en este orden bajo calor moderado y en agitación, solución debe filtrarse con gasa.