Génétique 6 (intro au diagnostic moléculaire) Flashcards

1
Q

Définition du diagnostic moléculaire?

A

Diagnostic des pathologies causées par des variations pathologiques d’un gène, de plusieurs gènes (digénisme) ou de l’épigenome

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2
Q

~ ___ nouveaux tests cliniques disponibles par jour

A

10

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Q

Combien de tests disponibles en ce moment?

A

Plus de 60 k

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4
Q

Combien de gènes sont couverts par nos tests?

A

10%

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5
Q

Décrit l’ADN.

nb de liens H, charge et constitution

A

Acide nucléique = sucre + phosphate + base
Charge négative (phosphate)
Liens hydrogène
* G-C : 3
* A-T : 2

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6
Q

Importance du phosphate qui confère une charge négative à l’ADN.

A

Important pour isolation/extraction de l’ADN

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7
Q

Importance de connaitre le nombre de liens hydrogénés entre les bases de l’ADN.

A

Important pour PCR/hybridation

Pour dénaturer ADN, besoin de plus d’énergie pour briser ( + d’Énergie pour 3 liens H que juste 2 liens H)

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8
Q

Décrit la structure du gène, de gauche à droite.

A

Promoteur
5’ UTR
Codon d’initiation
Exon (GT)
Intron
3’ UTR
Codon STOP

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9
Q

Début d’intron?

A

GT

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10
Q

Début d’exon?

A

AG

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11
Q

Qu’est-ce qu’une variabilité du génome non pathologique?

A

Toute divergence de séquence d’ADN chez un individu en comparaison avec la séquence de référence n’étant pas associée à une pathologie génétique

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12
Q

Qu’est-ce qu’une variabilité du génome pathologique?

A

Un changement permanent et transmissible de la séquence d’ADN causant un phénotype pathologique

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13
Q

Est-ce qu’on possède beaucoup de variations sur notre génome?

A

Oui

plus de 5-6 M

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14
Q

Est-ce que nous possédons les même variations génétiques que nos parents?

A

NON

~70 surviennent de novo, i.e. sont absentes chez les parents

contribue à diversité génétique

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15
Q

Est-ce que la plupart de nos variations sont pathologique?

A

Non

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16
Q

Que peuvent être les variations non pathologiques?

A

1) Dans régions non codantes (régions intergénique, introns)

2) Polymorphisme

3) Touche un gène qui s’exprime seulement à l’état récessif et il n’y a pas une seconde variation

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17
Q

Endroit de prédilection pour la survenue de variations génétiques.

A

Ilots CpG

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18
Q

Décrit les mutations qui peuvent survenir au niveau des îlots CpG.

A

C →methyl-C (methylation)

Methyl-C →U (PAS de U dans ADN)

U→T

CG → TG (le + fréquent)

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19
Q

deux types de marqueurs génétiques utilisés en génétique moléculaire pour étudier la variabilité génétique au sein des populations

A

moyenne: microsattelittes
petite: SNP (polymorphismes nucléotidiques simples)

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20
Q

Que sont les microsatellites?

A

Répétition d’une petite séquence (ex: CA)

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21
Q

Pk les microsatellites sont des marqueur très puissants pour établir l’identité génétique?

A

À l’emplacement spécifique du microsatellite sur le chromosome, il y a environ dix variations différentes de la séquence génétique.

Dans une population donnée, les individus auront des versions légèrement différentes de cette séquence microsatellite à cet endroit précis sur leur ADN. Cette diversité au niveau des allèles est courante dans les populations et contribue à la variabilité génétique.

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22
Q

Que sont les SNP?

A

Changement d’un seul nucléotide / un seul nucléotide est remplacé par un autre

Par exemple, à un certain endroit, certains individus peuvent avoir un “A” à cet emplacement, tandis que d’autres auront un “G”.

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23
Q

Entre les microsatellittes et les SNP, quel type de marqueur est particulièrement utile pour étudier la diversité génétique?

A

LES MICROSATELLITES

Ils sont généralement plus polymorphes, ce qui signifie qu’ils ont tendance à avoir un plus grand nombre d’allèles différents au sein d’une population.

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24
Q

Quelle mutation est la plus fréquente?

A

Substitution

+ de la moitié des mutations

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25
Q

Nomme les 4 conséquences possibles des variations.

A

1) Homologue (silencieux)
2) Faux-sens (missense)
3) Non-sens (nonsense)
4) Altération du cadre de lecture (frameshift)

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26
Q

Homologue?

A

Change un codon pour un autre codant pour le même acide aminé

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27
Q

Faux-sens?

A

Change le codon pour celui codant pour un autre acide aminé

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28
Q

Non-sens?

A

Change le codon pour un codon stop

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29
Q

Frameshift?

A

Insertion/délétion qui n’est pas un multiple de 3, entraînant une modification du codon et de ceux en aval

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30
Q

5 éléments à considérer pour évaluer le degré de danger d’une mutation?

A

1) Fréquence population
2) Conservation
3) Impact ARNm
4) Impact sur la protéine
5) Fonction du gène

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31
Q

V ou F: une mutation homonyme est habituellement pathologique.

A

FAUX: habituellement bénin

pas de changement au niveau de la protéine
sont tolérées, pas à l’origine de pathologie patient

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32
Q

V ou F: une mutation non-sens ou frameshift est habituellement pathologique.

A

VRAI

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33
Q

V ou F: une mutation faux-sens est habituellement bénin.

A

FAUX: ambiguïté par rapport à cette mutation; variable

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34
Q

Gène récessif?

A

Le phénotype est exprimé seulement à l’état homozygote

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35
Q

Gène dominant?

A

Le phénotype est exprimé à l’état hétérozygote

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36
Q

Perte de fonction?

A

Une réduction dans la quantité de la protéine produite, ou une réduction de l’activité de la protéine

cause le phénotype

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37
Q

V ou F: la perte de fonction est la base de la majorité des maladies récessives (et certaines dominantes).

A

VRAI

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38
Q

Gain de fonction?

A

Une augmentation dans la quantité de la protéine produite, une augmentation de l’activité de la protéine ou une nouvelle fonction de la protéine entraîne le phénotype

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39
Q

Nomme les 5 mécanismes associés aux gains de fonction.

A

1) Augmentation du dosage génique
2) Altération de l’expression de l’ARNm
3) Activité accrue de la protéine
4) Nouvelle fonction de la protéine
5) Altérations toxiques à la protéine

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40
Q

3 exemples de maladie génétique causées par une expansion anormale de trinucléotides (mutations dynamiques)?

A

1) Steinert
2) X fragile
3) Huntington

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41
Q

But de l’isolation génétique?

A

Isoler l’ADN du reste du contenu cellulaire (majoritairement protéines)

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42
Q

Quelles cellules sont utilisées pour l’isolation de l’ADN?

A

Cellules nucléées (sang: leucocyte)

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43
Q

De quoi faut-il se servir pour isoler l’ADN?

A

Il faut se servir des caractéristiques spécifiques de l’ADN p/r au reste du contenu cellulaire

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44
Q

Nomme les deux produits utilisé pour isoler l’ADN.

A

1) Phénol-Chlorophorme
2) Sels chaotropiques

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45
Q

Que fait l’ADN en présence de sels chaotropiques?

A

à cause de sa charge négative, l’ADN se colle sur la colonne de verre/membrane

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46
Q

Que font les autres substances en présence de sels chaotropiques?

A

solubles dans l’eau (le reste ne se colle pas au verre/memnbrane)

on se débarrasse de tout ce qui est pas ADN

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47
Q

Avantages des sels chaotropiques?

A

Non-toxique
Automatisable

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48
Q

Nomme les deux technique qui permettent d’évaluer l’efficacité de l’isolation de l’ADN.

A

1) Densité optique

2) Teintures intercalantes (SYBR Green, Pico Green, bromure d’éthidium)

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49
Q

Quelle est l’absorbante maximale de l’ADN (nm)? Et celle des protéines?

A

λ 260nm = absorbance max ADN
λ 280mm = absorbance max pour protéines

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50
Q

Importance de la densité optique.

A

Estimation de la quantité de l’ADN (ratio 260/280 estime pureté)

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51
Q

À quoi servent les teintures intercalantes?

A

Composés qui se fixent à l’ADN double brin

Estimation de la quantité et de la taille de l’ADN

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52
Q

Principe de l’hybridation:

A

On construit une séquence de nucléotides complémentaire à une portion de l’ADN du patient (sonde)

Elle est marquée (fluorescence, radioactivité)

La détection du signal indique la présence de la séquence complémentaire

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53
Q

De quoi est formé la sonde?

A

Séquence d’ADN complémentaire

Marquage (fluo, radioactif)

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54
Q

La détection du signal indique la présence de la _____________________.

A

séquence complémentaire

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55
Q

Qu’est-ce que l’électrophorèse capillaire?

A

On sépare les molécules d’ADN selon leur taille en les faisant migrer à travers un gel (e.g. Agarose)

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56
Q

Lors de l’électrophorèse capillaire, qu’est-ce qui influence la distance parcourue par les molécules à travers le gel?

A

grosse molécules prennent + de temps à circuler donc migrent sur - longue distance

molécules qui ont migrer sur plus longue distance = plus petites

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57
Q

Nomme une technique sur l’ADN génomique.

A

Buvardage Southern

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58
Q

Est-ce que le bavardage Southern utilise le test PCR?

A

NON; c’est le seul qui ne l’utilise pas

59
Q

Qu’est-ce que le buvardage Southern?

A

Technique qui combine électrophorèse sur gel de l’ADN génomique fragmenté à l’hybridation par une sonde marquée complémentaire à l’ADN cible

60
Q

Explique les 5 étapes du buvardage Southern.

A

A. Digestion de l’ADN génomique

B. Électrophorèse capillaire

C. Transfert sur membrane

D. Hybridation

E. Détection par autoradiographie

61
Q

Qu’est-ce que le buvardage Southern permet?

A

Déterminer la taille des grande expansions dans les mutations dynamiques

62
Q

Est-ce que nous possédons 1 seule polymérase?

A

NON

63
Q

V ou F: les polymérises ont toutes le meme taux d’erreur.

A

FAUX

64
Q

V ou F: la Taq polymérase est infaillible et ne fait aucune erreur.

A

FAUX

65
Q

Taux d’erreur de Taq?

A

8 x 10^-6

66
Q

Que veut dire PCR.

A

Polymerase Chain Reaction

67
Q

Principe de la PCR.

A

technique utilisée en biologie moléculaire pour amplifier et produire en grande quantité une région spécifique d’ADN.

C’est un processus qui permet de créer de nombreuses copies identiques d’un fragment d’ADN en un court laps de temps.

avoir assez d’ADN pour utiliser des techniques en aval (signal assez robuste pour détecter)

68
Q

3 étapes PCR.

A

Dénaturation : Chauffage de l’échantillon pour séparer les brins complémentaires d’ADN.

Appariement d’amorces : Refroidissement de l’échantillon pour permettre aux amorces (petites séquences d’ADN) de se lier spécifiquement à la séquence d’ADN cible.

Extension : Utilisation d’une enzyme appelée ADN polymérase pour synthétiser une nouvelle chaîne d’ADN complémentaire à la séquence d’ADN cible.

69
Q

La PCR fait _________ la quantité d’ADN à chaque cycle.

A

doubler

si j’ai 30 cycles, j’ai 2^30 molécules

70
Q

Principe du PCR-migration.

A

Électrophorèse capillaire des produits de PCR

Détection du signal - la distance où se situe la bande par rapport au puits reflète sa taille

71
Q

Que permet de détecter le PCR-migration?

A

Importante pour détecter des insertions ou des délétions.

72
Q

Application de PCR-migration.

A
  • Instabilité des microsatellites
  • Contamination foeto-maternelle
  • Pathologie judiciaire
73
Q

Explique cette figure:

A

Gène normal mesure 250 pb
Si j’ai une délétion de 8pb, je me retrouve avec 242 pb (DÉLÉTION RÉCURRENTE)

Individu a un allèle avec nombre de pb normal et un avec pb mutées = hétérozygote

74
Q

Lien entre PCR-migration et contamination foeto-maternelle

A

Mère a deux allèles pour un micro satellite
Le foetus normal va avoir le même allèle que sa mère et un allèle de son père (2e allèle maternel ne se retrouve pas chez ;le foetus)

Si il y a contamination avec sang de la mère; il y a aura un allèle de la mère, un allèle du père ET une portion de l’autre allèle de la mère (petit pic)

75
Q

Principe de PCR-digestion

A

Digestion d’un produit de PCR par une enzyme de restriction qui reconnaît une séquence spécifique dans l’ADN

Si il reconnait sa séquence spécifique, il coupe l’ADN

ex: EcoR1 coupe à G_AATTC & Dra I coupe à TTT_AAA

76
Q

Impact d’une mutation de l’ADN sur l’enzyme de restriction.

A

mutation peut créer ou abolir site de restriction d’une enzyme. Allèle n’ayant pas la mutation A le site de restriction, mais c’elle qui a la mutation n’a PAS le site de restriction

en utilisant l’enzyme de restriction sur produit de PCR, on obtient une bande de taille attendue suite à migration.

Si il y a changement d’une pb (exemple: on change un T pour un C) -> à D sur figure, l’enzyme de restriction ne reconnait plus et ne couple plus (on aura un plus gros fragment et pas ce a quoi on s’est attendu)

77
Q

Application de PCR-digestion

A

Mutations ponctuelles récurrentes

Il est habituellement possible de trouver un site de restriction créé ou aboli par la mutation que l’on recherche

78
Q

Test où on aura la détection de signal basée sur le primer.

A

Allele Specific Primer Extension (ASPE)

79
Q

Comment se fait l’Allele Specific Primer Extension?

A

Amplification PCR avec amorces marquées à fluorescence dont certaines ont un mismatch en 3’

En somme, l’amorce est utilisée pour initier la synthèse d’une nouvelle chaîne d’ADN, et si la séquence d’ADN complémentaire est présente, une sonde spécifique peut se lier à cette séquence et émettre un signal fluorescent, permettant ainsi la détection et l’identification spécifique de la séquence cible.

Différentes sondes associées à différents allèles.

80
Q

V ou F: dans Allele Specific Primer Extension, on a une extension si on a un mismatch en 3’.

A

FAUX: extension si MATCH en 3’

81
Q

Différence entre Allele Specific Primer Extension et l’hybridation.

A

Allele Specific Primer Extension: Fluorescence en lien avec l’extension de l’amorce

Hybridation: fluorescence au niveau dune sonde qui vient s’hybrider dans le fragment.

82
Q

Principe du séquençage de Sanger.

A

méthode pour déterminer l’ordre précis des nucléotides dans une séquence d’ADN

83
Q

Est-ce que le séquençage de Sanger utilise le bloc d’élèctrophorèse capillaire pour fonctionner?

A

OUI

84
Q

3 étapes du séquençage de Sanger.

A

1) Amplification PCR

2) Dénaturation (2 brins simples)

3) Réamplification

85
Q

Explique la réamplification lors du séquençage de Sanger.

A

Pour chaque brin simple d’ADN obtenu après la dénaturation, vous effectuez une nouvelle réaction d’amplification (on allonge le fragment d’ADN).

Cette fois-ci, vous ajoutez un mélange de nucléotides réguliers (A, C, G, T) et des nucléotides modifiés

86
Q

Comment se nomment les nucléotides modifiées?

A

ddNTPs (dideoxynucléotides triphosphates)

87
Q

Chaque ddNTP est marqué avec … différente

A

une fluorescence

(par exemple, un pour A, un pour C, un pour G, un pour T).

88
Q

Différence entre dNTPs et ddNTPs.

A

Contrairement aux dNTPs, les ddNTPs manquent d’un groupe OH à l’extrémité 3’

Ceci empêche la liaison du prochain dNTP (chain termination)

89
Q

V ou F: L’incorporation du ddNTP vs le dNTP est aléatoire

A

vrai

90
Q

Impact de l’ajout de ddNTP sur la réaction de synthèse d’ADN.

A

L’ajout de ddNTPs arrête la réaction de synthèse d’ADN à des positions aléatoires, car ces nucléotides modifiés ne permettent pas la poursuite de la chaîne.

Ainsi, chaque brin en cours de synthèse s’arrête à des positions différentes.

Le résultat est une série de fragments d’ADN de longueurs variables, tous marqués avec une couleur spécifique associée au nucléotide modifié incorporé.

91
Q

Qu’est-ce qu’on fait avec ces informations là? Pk est-ce utile?

A

En reliant les couleurs des fragments d’ADN à la position spécifique le long du gel, on peut reconstituer la séquence d’ADN originale complète de la région analysée.

On peut déterminer la séquence d’ADN complète du patient.

92
Q

Importance du séquencage de Sanger en clinique.

A
  • Gènes avec grand nombre de mutations dispersées à-travers du gène

(on voit les mutations n’importe ou dans le gène)

93
Q

V ou F: le séquencage de Sanger est la méthode de choix pour les substitutions et pour trouver des petites insertions/déletions.

A

vrai

94
Q

Est-ce que le séquencage de Sanger peut détecter les grandes anomalies de dosage?

A

non

95
Q

Variation de la PCR.

A

PCR temps réel

96
Q

Principe de PCR temps réel.

A

Réaction de PCR avec détection du produit simultanée avec utilisation de fluorescence.

97
Q

2 utilités de PCR temps réel

A
  • Discrimination allélique (mutations fréquentes)
  • Quantification (relative/absolue) (nombre de copies dans génome)
98
Q

Élément important dans le mélange réactionnel lors de l’essai taqman dans le cadre de la PCR à temps réel.

A

sonde Taqman

99
Q

C’est quoi la sonde Taqman? 2 composantes?

A

Courte séquence d’ADN qui est complémentaire à une partie spécifique de la séquence d’ADN cible. Constituée de:

1) rapporteur (r)
2) quencher (q)

100
Q

Role du rapporteur (R).

A

Fluorochrome

101
Q

Role du quencher.

A

absorbe la fluorescence quand la sonde est en solution

(empêche la sonde d’émettre la fluorescence en sln)

102
Q

Explication de l’essai TaqMan dans PCR temps réel.

A

échantillon d’ADN contient le GèneX.

Préparation mélange réactionnel contenant l’ADN cible, des amorces spécifiques pour le GèneX, des nucléotides (A, C, G, T), une enzyme ADN polymérase, et une sonde TaqMan spécifique au GèneX.

Lorsque la réaction de qPCR démarre, l’ADN polymérase commence à amplifier le GèneX. À chaque cycle, la sonde TaqMan se lie à la séquence spécifique du GèneX et est clivée par l’activité de l’enzyme.

Cela libère le fluorochrome, générant un signal fluorescent.

103
Q

Que permet la libération du signal fluorescent au fur et à mesure de l’amplification?

A

permet de quantifier la présence de ce gène dans l’échantillon initial.

104
Q

combien de phases dans un réaction typique de PCR à temps réel?

A

3

105
Q

Utilité clinique du PCR à temps réel.

A

se passe sur une plaque multi puits

si on veut tester mutation fréquente chez un très grand nombre de patients en même temps

Discrimination allylique

106
Q

Dans le PCR à temps réel, on fixe un …

A

seuil arbitraire

107
Q

Le seuil est-il le même pour tous les patients testés?

A

OUI

108
Q

En quoi est mesuré le seuil?

A

En unités relatives de fluorescence (RFU - Relative Fluorescence Units)

109
Q

Plus la quantité d’ADN cible est élevée, plus la fluorescence …

A

augmente

110
Q

Cycle auquel la fluorescence de l’échantillon dépasse le seuil choisi.

A

Ct (cycle de seuil)

111
Q

Interprète les résultats suivants:

Echantillon A : Ct = 20
Echantillon B : Ct = 25

A

Exemple: si le seuil est de 100 RFU

Pour l’échantillon A, la fluorescence dépasse le seuil au cycle 20, et pour l’échantillon B, elle dépasse le seuil au cycle 25.

Un Ct plus bas indique que la réaction a atteint le seuil plus tôt, ce qui signifie que l’ADN cible était plus abondant dans cet échantillon.

Dans cet exemple, l’échantillon A a une quantité initiale d’ADN cible plus élevée que l’échantillon B, car il a atteint le seuil plus tôt au cours des cycles d’amplification.

112
Q

À chaque cycle, le nombre de molécules d’ADN …

A

double

comme dans la PCR

113
Q

Méthode pour la recherche de délétions/duplications dans tous les exons dans un gène.

A

MLPA

114
Q

Que veut dire MLPA?

A

Multiplex Ligation-dependent Probe Amplification

115
Q

Quel test est utilisé pour une maladie impliquant plusieurs gènes (ex: dystrophie musculaire de duchenes)?

A

MLPA

116
Q

Particularité de la sonde dans MLPA.

A

Sonde en deux sous-unités (2 oligonucléotides) qui doivent s’hybrider côte-à-côte sur l’ADN du patient

117
Q

Longueur du gap entre les deux sous-unités de la sonde en termes de nucléotides.

A

gap de 1 nucleotide

118
Q

5 étapes de MLPA.

A

1) dénaturation

2) Hybridation des deux portions de la sonde

3) Ligation des deux portions de la sonde via la ligase

4) Amplification PCR de la sonde fusionnée

5) Électrophorèse capillaire

119
Q

Utilité du séquençage des nouvelle génération (SNG).

A

Permet de multiplier l’information obtenue d’une analyse

120
Q

Point positif cliniquement du séquençage des nouvelle génération (SNG).

A

Possible d’analyser plusieurs gènes, voire plusieurs patients en même temps (grâce aux codesbarre moléculaires)

121
Q

5 étapes du séquençage des nouvelle génération (SNG).

A

1) Fragmentation de l’ADN
2) Capture
3) Liaison d’adaptateurs
4) Amplification en parallèle
5) Séquençage en parallèle

truc: FCLAS

122
Q

En combien de bases se fragmente l’ADN lors de la première étape?

A

100-150 pb

123
Q

3 moyens pour fragmenter l’ADN:

A

1) sinisation
2) nébulisation
3) digestion

124
Q

Explique l’étape de capture de l’ADN.

A

On retient la séquence qui constitue le gène par lequel on s’intéresse.

Isolation d’une séquence d’une portion du génome

point fort: pas besoin de faire le séquencage entier du génome

125
Q

2 adapteurs qui sont liés à l’ADN lors de la 3e étape.

A

1) Adaptateur de séquençage
2) code-barre moléculaire

126
Q

de quoi est composé le code-barre moléculaire?

A

oligonucléotides

127
Q

Importance du code-barre moléculaire.

A

Différencie les patients entre eux; chacun a son propre code barre

On sépare les données grace au code barre

128
Q

Pk parle-t-on d’amplification en parallèle?

A

Car amplification en parallèle des régions du génome que l’on veut séquencer

en micro-compartiments

129
Q

Dernière étape du séquençage des nouvelle génération (SNG).

A

séquençage en parallèle

130
Q

À ce stade on a généré plusieurs milliers de séquences d’environ ~ … paires de bases

A

100-150

131
Q

Avec quoi les séquences peuvent-elles être attribuées à chaque patient?

A

selon le code-barre moléculaire

132
Q

Maintenant qu’on a bcp d’information de séquence, que faire (3 étapes)?

A

1) Il faut procéder à l’alignement de ces séquences au bon endroit du génome humain

2) Ensuite identifier si des variations de séquence sont présentes p/r au génome de référence

3) Ensuite déterminer si certaines de ces variations sont pathologiques et situées dans des gènes qui pourraient expliquer le phénotype du patient

133
Q

2 applications du SNG.

A

1) séquençage de l’exome
2) séquençage de l’ADN foetal circulant

134
Q

Combien de nucléotides dans notre génome?

A

3 milliards

135
Q

Pourcentage de notre génome qui représente les régions codantes.

A

1%

136
Q

Dans ce 1% du génome se trouve la majorité des mutations causales de quelle maladie?

A

mutations causales de la déficience intelectuelle

donc moyen intéressant d’explorer ces patients

137
Q

Après le séquencage de l’exome, on retrouve combien de variations génétiques par individu?

A

on obtient a la fin 20 000 variations génétiques par individu

vs 3 milliards de nucléotides ds le génome

138
Q

Importance clinique du SNG.

A

Base de tests clinique pour diagnostic maladies rares et cancer

on peut séquencer une grande proportion du génome en meme temps

139
Q

Dans le SNG, est-ce qu’on voit les introns?

A

non car on ne les capturent pas

(on a fait une capture pour capturer les régions codantes)

140
Q

Séquençage de l’ADN foetal circulant.

A
141
Q

Chez les femmes enceintes, on peut détecter une séquence de …

A

chromosome Y

patientes enceintes d’un foetus masculin

142
Q

Après centrifugation, qu’est ce qu’on retrouve dans la couche de leucocytes chez la femme enceinte?

A

SLM L’ADN DE LA MÈRE

143
Q

Après centrifugation, qu’est ce qu’on retrouve dans la couche de plasma chez la femme enceinte?

A

ADN LIBRE / ACELLULAIRE (en circulation dans le plasma)

dans plasma, on retrouve des séquences d’origines maternels et de l’unité foeto-placentaire

(on peut détecter la présence de chromosome y)

144
Q

Par contre, pour mettre en évidence un gain ou une perte de séquence présente chez la mère ET chez le foetus, comment-faire?

A

Besoin technologie très sensible

SNG dans génome entier à faible profondeur

On compte séquences qui appartiennent au chromosome 21 (si + de séquence attendues -> + à risque)