Examen 1 Flashcards

1
Q

Preuves du risque de transmission (3)

A

+ Hépatites dentiste
+ Infections respiratoires étudiants DMD
+ en + de cas de négligence rapportés à l’ODQ

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2
Q

4 chemins de contamination croisée

A

Professionnel > patient (famille)
Patient > professionnel (famille)
Patient > Patient
Matériel

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3
Q

3 paramètres qui déterminent si un contact avec un pathogène mène à un infection

A

Dose (nb microorganismes)
Virulence
Résistance de l’hôte

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4
Q

Pourquoi peut-il être difficile de faire le lien entre une visite chez le dentiste et une infection?

A

Longues périodes d’incubation

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5
Q

Volume de sang requis et risque d’infection pour le VIH

A

0,1 ml (3 gouttes), 0,3%

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6
Q

Volume de sang requis et risque d’infection pour le VHB

A

0,00004 ml, 20% (variations dues à la vaccination)

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7
Q

Volume de sang requis et risque d’infection pour le VHC

A

0,0005 ml, 2%

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8
Q

Pourquoi est-il plus difficile de transmettre le VIH que les VHB ou le VHC

A

Le virus est plus fragile, et est en concentration moins grande dans le sang

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9
Q

Le VIH est-il transmissible par la salive?

A

En l’absence de sang visible: non

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10
Q

Test Orasure

A

Test oral de séropositivité du VIH, presque aussi efficace que le test sanguin, résultats en 20 min, fait en cabinets dentaires aux USA

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11
Q

Conséquences légales du cas de la clinique pédiatrique de Anaheim

A

Loi imposant l’eau stérile lors de procédures chirurgicales

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12
Q

Recommandations pour les professionnels se sachant porteurs (2)

A

Suivi régulier avec médecin traitant

Prendre contact avec le Service d’évaluation des risques de transmission d’infections hématogènes

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13
Q

Quand est-ce qu’une clinique devrait avoir un programme de contrôle de l’infection

A

Tout le temps/toutes les cliniques

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14
Q

Responsabilités de a personne ressource (programme de contrôle de l’infection)

A
Former 
Rester éduqué (à jour)
Répondre aux questions
S'assurer des tests
S'assurer de la vaccination du personnel
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15
Q

10 principes du programme de contrôle de l’infection

A
  1. Identifier les patients à risque (questionnaire médical)
  2. Mesures de protection universelles
  3. Formation adéquate du personnel
  4. Vaccination du personnel
  5. Stérilisation
  6. Désinfection appropriée
  7. Stérilisateurs testés et conformes
  8. Maintenance de l’équipement
  9. Asepsie des choses des labs externes
  10. Disposition sécuritaire des déchets biomédicaux
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16
Q

Vecteurs de transmission (4)

A

Mains
Instruments/mobilier
Bioaérosols
Eau des canalisations

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17
Q

60% des patients hospitalisés: quel vecteur?

A

Mains

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18
Q

2 types de flores mains, caractéristiques

A

Microbienne résidente (plus profond, difficile à enlever pas lavage)
Transitoire (couches superficielles, contamination croisée, facile à déloger)

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19
Q

Évidence de transmission par les mains

A

Dermatite mains > VHS développé sur plusieurs patients

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20
Q

Caractéristiques gel hydroalcooliques

A
60-90% alccol 
3-5 ml
30 secondes
Avec émollient (moins irritant)
Dénaturation protéines
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21
Q

Types de savon antiseptique

A

Chlorhexidine
Triclosan
- les 2 sont moins efficaces sur les bactéries avec enveloppe

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22
Q

Chlorhexidine: caractéristiques

A

2-4%
Lyse de la membrane plasmique
Effet résiduel

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23
Q

Triclosan: caractéristiques

A

0,2-2%
Interfèrent avec la synthèse ARN
Effet résiduel

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24
Q

Résistance des gants aux perforations

A

Latex > Nitrile > Vinyle

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25
Gants poudrés: risques (3)
Allergies Inflammation pulmonaire Granulomes
26
Gants antimicrobiens: utilité
Pour les patients à risque (pas tous car irritant à long terme)
27
Problèmes liés au port des gants
Dermatites de contact irritant/allergique
28
Stratégies pour les patients allergiques au latex
Traiter en début de journée (- particules) Avoir EpiPen Pas de digue Gants de nitrile/vinyle
29
Pourquoi les pièces à main sont un important vecteur de transmission?
Succion de rappel
30
Procédure à suivre lors de blessures percutanées
1. Lavage savon antiseptique 2. Pas de brossage/produits irritants 3. Rincer, sécher, isoler 4. Vérifier le dossier patient 5. Centre médical (idéalement ds les 2 heures), demander au patient de venir avec 6. Rapport d'exposition
31
Survie VHB, VHS, Influenza, Tuberculose sur surfaces inertes
VHB: 3 mois VHS: 2 heures Influenza: 48 heures Tuberculose: 4 mois
32
Placer dans l'ordre du plus au moins résistant: virus, bactérie, spore, mycètes
Spore Virus Mycète Bactérie
33
Norme de désinfectant
100 000 000 micro. (sporicide: spores), 5 min, tue 99,999%
34
Avantages de combiner les principes actifs
Élargissement du spectre Effet résiduel Diminution du temps nécessaire
35
Classification des désinfectants
Haut: sporicides, instruments pas stérilisables Moyen: surfaces contaminées (sang, salive), actif sur M. tuberculosis Bas: Surface non visiblement contaminée, inactif sur M. tuberculosis
36
Facteurs influençant l'efficacité d'un désinfectant
Entreposage Présence biofilm/matière organique Accessibilité des microorganisme Temps d'exposition
37
Avantages et désavantages des désinfectants en lingettes
Aussi efficace, pas trop d'aérosols | Coûteux
38
Déchets biomédicaux vs généraux
Biomédicaux: tissus humains, objets souillés par le sang, objets tranchants Généraux: dents extraites non obturées (amalgame), gaze/ouate/gants même souillés
39
Classification de Spaulding
Instruments critiques: pénètrent tissus/contact sang (paro/chir), stérilisation chaud Semi-critiques: contact avec muqueuses/salive (miroir...), stéri chaud ou froid Non-critiques: contact avec peau (pas muqueuse) (chaînette), désinfection
40
Principes organisation salle de retraitement des intruments
Unidirectionnelle | Zones: nettoyage, stéri, entreposage
41
Étapes du traitement des instruments (4)
1. Solution de maintien 2. Nettoyage 3. Rinçage et séchage 4. Emballage et stérilisation
42
Bain ultrasonique: recommandations
3-6 min instruments en panier, 15 min instruments en cassette Test feuille aluminium une fois par mois (3-5 min)
43
Pourquoi le lave-instrument est-il à privilégier pour le nettoyage?
Obtention d'instruments propres et secs, moins de risques de blessure (moins manipulation) Thermo-désinfection (+ sécuritaires à manipuler)
44
Systèmes de stérilisation (4)
Autoclave Chémiclave Four à chaleur sèche Stérilisation à frois
45
Types d'autoclaves
Type N: déplacement par gravité | Type B: vacuum >> obligatoire en Europe, bien pour les instruments creux
46
Durée cycle d'autoclave
121° 15-20 min (conventionnel) | 134° 4-10 min (statim)
47
Cycle et principe du chémiclave
Vapeur chimique, 131° 30 minutes
48
Avantage/désavantage chémiclave
Pas de corrosion (pas d'eau) | Manipulation de produits chimiques
49
Cycle du four à chaleur sèche
170°, 1-2 heures
50
Cycle de la stérilisation à froid
Glutaraldéhyde 2% pendant 12 heures | Péroxyde d'hydrogène 7% 20 min
51
Désavantages de la stéri à froid
Aucun emballage possible Rinçage obligatoire Long
52
Types d'indicateurs de stérilisation
Mécanique Chimique Biologique
53
Fréquence des tests chimiques et biologiques
Chimiques: recommandé pour chacune des charges, indique que l'emballage est passé au stérilisateur Biologique: mensuel, chaque charge pour la stéri d'implants
54
Positivité (réelle) des tests biologiques, 90s vs 2018
5% > 0,1%
55
Tests pour stérilisateur type B
Test Bowie et Dick, hebdomadaire
56
2 types d'indicateurs chimiques
``` Type 1 (indique que la charge est passée au stéri) Type 5 (multi paramètres, proche du test bio) ```
57
Causes des échecs de stérilisation (6)
``` Température inappropriée Pression non atteinte Temps inapproprié Chargement trop dense Suremballage Mauvais nettoyage ```
58
Instruments causant le plus de bioaérosols (top 3)
1. Détartreur ultrasonique 2. Pièces à main 3. Pistolet air-eau
59
Combien de fois plus de bactéries sont en suspension dans l'air après 1. un détartrage et 2. une préparation de cavité par rapport à la concentration normale avant tout traitement? Combien de temps avant le retour à une concentration normale?
1. 130x 2. 70x 2 heures
60
Problèmes causés par les bioaérosols
Réactions allergiques (désinfectants, latex) | Infections respiratoires
61
Quel est la conséquence d'un masque humide?
Perte d'efficacité
62
Niveaux d'efficacité de filtration des particules (+ petites que bactéries) des masques
``` De base Niveau 1 (95%) (ortho) Niveau 2 (98%) (endo) Niveau 3 (99%) (ultrasons) N95 (99,9%) (tuberculose) ```
63
Moyens de protection contre l'infection (3)
Lunettes Écran facial Uniforme (éviter de le porter hors de la clinique, tissu peut devenir nid à micro.)
64
Moyens de réduction de l'infection (3)
Pose de la digue Succion rapide Brossage ou rinçage avant le traitement
65
Avantages du rinçage au rince-bouche avant les traitements
Comme antiseptique avant chirurgie Réduit les bioaérosols jusqu'à 99% Bonne option quand on ne peut pas utiliser la digue Moins de bactéries qui entrent dans la circulation sanguine (maladies coeur)
66
Moyens d'élimination des bioaérosols (2)
Ventilation | Filtration (mécanique, ultraviolet, électronique)
67
2 façons par lesquelles les canalisations peuvent être contaminées
Arrivée d'eau | Succion de rappel
68
Facteurs favorisant la formation d'un biofilm dans les canalisations
``` Arrivée constante de microorganismes Présence de nutriments Grande surface par volume Stagnation Température plus élevée ```
69
Genre de bactéries pouvant être présentes dans les canalisations
Pseudomonas | Legionella
70
Nb bactéries début de journée vs fin de journée par ml eau? Norme pour l'eau potable?
Début: jusqu'à 2,8 millions Fin: 100 à 1500 Norme: 500
71
Purge des canalisations: durée
Début et fin de journée: 2-3 minutes | Entre patients: 30 secondes
72
Comment traiter l'eau des canalisations?
Pastilles (bouteilles) ou cartouches désinfectantes
73
Comment éliminer un biofilm établi dans les canalisations?
Traitement choc | Liquid Ultra ou Eau de Javel (corrosif)
74
Avantage d'utiliser les cartouches plutôt que les pastilles désinfectantes
Les pastilles doivent être remplacées à chaque bouteille, alors que les cartouches durent 1 an. De plus, les cartouches fonctionnent avec les aqueducs
75
Principe actif des cartouches désinfectantes
Iode élémentaire