Exam théorique 1 Flashcards
Décrire les caractéristique de Fusarium oxysporum
- Mycélium filamenteux, laineux, blanchâtre
- Macroconidie plus ou moins courbe et pointu aux deux extrémités (en forme de banane)
- Deutéromycète
- Produit des chlamydospore (spore de résistance
- saprophyte tellurique
- pathogène pour la tomate et d’autre plante
Quels sont les symptôme de Fusarium osysporum?
- Décoloration de la tige (débute par un jaunissement longitudinal, évolue en bande jaune et nécrose beige à marron clair.
- Les vaisseaux de la tige brunissent
- jaunissement du rachi, foliole et feuille entière
Décrire les caractéristiquec de Clavibacter michiganiensis
- Bactérie jaune, circulaire, convexe, coulante mesurant environ 1 à 3mm
- colonie jaune, coulante, convexe et circulaire
- Température optimal entre 24 et 27 degrés celcius
- Besoin d’une humidité élevé (surtout pour affecter une plante hôte )
- Responsable du chancre bactérien
Quels sont les symptômes de Clavibacter Michiganiensis?
- brûlures grisâtres (devenant beige par la suite) au niveau des folioles. entre les nervure souvent au centre et peut être accompagé de flétrissement
- Brunissement du système vasculaire (principalement dans la région des noeuds)
Quel est le rôle du milieux de culture LPGA?
Milieu de culture non-sélectif qui donne les nutriment nécessaires au bactérie pour croître
Quel est le rôle du milieux de culture SNA?
Milieu avec antibiotique servant à favoriser la sporulation
Comment réaliser un milieu de culture SNA?
- On pèse les poudres nécessaires au milieu :
- Kh2PO4
- KNO3
- MgSO4 x 7H2O
- KCl
- Dextrose
- Sucrose
- Agar - Dissoudre dans de l’eau distillé + rincé les nacelles
- Chauffer
- Stériliser 15 minutes à l’autoclave
- laisser refroidir et ajoute antibiotique:
- Tetracycline hydrochloride
- Streptomycine sulfate - Couler 30ml dans chaque gélose
Comment réaliser un milieu de culture LPGA?
- On pèse les poudres nécessaires au milieu:
- Peptone
- Extrait de levure
- Agar
- Dextrose - Dissoudre dans un volume d’eau distillée
- Ajuster le pH entre 7,2-7,3 avec du NaOH
- transvider dans un erlenmeyer et compléter le volume visée en rajoutant de l’eau distillé
- chauffer,
- Stériliser 15 min
- Couler 25ml de milieu dans chaque pétris
comment isoler un microorganisme d’une plante infecté pour fusarium?
- Couper 2 bouts contaminé entre 2 pétioles.
- laver à l’eau courante 1min en tenant par une pince.
- immerger 10 sec dans l’alcool 70%
- immerger 1min dans de l’eau de javel 1%
- immerger 10 min dans l’eau stérile (retourner au 5min)
- assécher sur un papier filtre stérile
- sectionner longitudinalement 2 morceaux pour dégager le système vasculaire.
- mettre une moitié des 2 morceaux dans les 2 milieux de cultures.
comment isoler un microorganisme d’une plante infecté pour clavibacter?
- Prélever 3 bouts de 4cm
- laver à l’eau courante pendant 1min.
- Enlever l’épiderme ( on gratte avec un scalpel qu’on flambe à l’alcool entre chaque coup.
- couper en plus petit bout (2-3mm)
- Broyer dans un mortier les morceaux avec 5 ml de saline stérile
- laisser reposer une heure en conservant le mortier stérile
- ensemencer par épuisement
- incuber
- repiquer la bonne colonie
comment extraire de l’ADN de souris?
- identifier les instruments en fonction des échantillons fournis
- couper un bout de queue de 3mm pour chacune des souris
- ajouter du tampon de digestion et de la protéinase K dans un microtube, mélanger au vortex et transférer un certain volume dans les microtubes de chacune des souris et mélanger de nouveau au vortex
- incuber (l’étape 3 et 4 servent à la digestion pour produire bcp d’ADN)
- centrifuger 3min. vitesse max.
- prelever du surnageant et transférer dans un nouveau microtube
- Ajouter de la RNase A, mélanger au vortex et incuber
- ajouter tampon Lysis Binding et mélanger au vortex (brise les membranes des cellules)
- ajouter de l’éthanol 95% et mélanger au vortex (on précipite l’adn et inhibe la TAQ)
- transferer un volume dans une colone et un tube collecteur pour chaque échantillon
- centrifuger 10 000rpm 1min.
- transferer les colones dans un nouveau tube collecteur.
- ajouter un volume de tampon de lavage 1
- centrifuger 10 000rpm 1min.
- transferer les colones dans un nouveau tube collecteur.
- ajouter un volume de tampon de lavage 2
- centrifuger vitesse max 3min
- tranferer la colone dans un microtube
- Ajouter du tampon d’élusion pour solubiliser l’adn
- incuber température piece
- centrifuger vitesse max 1min
- aliquoter
comment amplifier de l’ADN de souris?
- Identifier 2 bande de microtube PCR
- completer la feuille de représentation des puits
- Préparer le master mix ( ajouter dans l’ordre les réactif et mélanger avec des va-et-vient entre chaque)
- Mélanger au vortex.
- déposer les bande de microtube dans un support et glacer et déposer un volume de master mix dans chaque
- ajouter un volume d’H2O grade PCR
- Déposer un volume des témoin positif d’extraction et d’amplification dans les bande les microtubes prévue (faire des va-et-vient)
- Microcentrifuger
- thermocycler (l’objectif est de scinder l’ADN et mettre une amorce pour répliquer une section de l’ADN et produire par le fait même plusieurs séquence identique)
comment faire une électrophorèse?
- préparer l’unité de coulage (peigne de 20 puits)
- Préparer le gel d’agarose
- Remplir l’unité avec 650 ml de tampon d’électrophorèse 1x et y déposer le gel (mettre les barrières noir pour tenir le gel en place et mettre les puit du coté de l’électrode noir)
- mélanger le bleu de bromophénol et ajouter un volume dans chaque tube de nos bande (colorant qui sert d’indicateur pour la migration)
- déposer un volume de l’échelle moléculaire dans le premier puit ainsi les échantillon dans l’ordre prédéterminé.
- ajuster le power supply à 150 volt à 400mA pendant 25min
Expliquer l’importance d’un témoin négatif amplification
permet de mettre en évidence une contamination des réactif par de l’ADN recherché
Expliquer l’importance d’un témoin positif d’extraction
échantillon connu qui subira toute les étapes pour valider l’extraction