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Cytologie Vétérinaire > Cytologie - théorie > Flashcards

Cytologie - théorie Flashcards

1
Q

5 avantages de la cytologie (vs histopathologie)

A
  • moins de matériel
  • moins cher
  • moins invasif
  • habituellement pas d’anesthésie générale ou chirurgie
  • haute sensibilité et spécificité
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Q

Le pouvoir diagnostic de la cytologie est optimal pour quel type de lésion?

A

lésions cutanées et sous-cutanées

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Q

2 limitations de la cytologie

A
  • pas d’information sur l’architecture tissulaire
  • potentiel diagnostic dépend de la qualité et représentativité de l’échantillon (faible cellularité, cellules mal préservées, contamination sanguine…)
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4
Q

Cyto vs histopathologie:

Qui est plus efficace pour détection de métastases aux NL?

A

cyto!

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5
Q

Nommer 3 techniques de prélèvement de tissus solides

A
  • ponction à l’aiguille fine
  • Impression de surface
  • Grattage
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6
Q

quelle est la technique de choix pour les masses solides cutanées ?

A

Ponction à l’aiguille fine

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7
Q

Ponction à l’aiguille fine:

  • a) Quelles sont les 2 techniques? quelles sont leur indications respectives? (connaître les techniques)
  • b) nommer les avantages de la méthode sans aspiration
  • c) 2 choses à éviter lors des ponctions
  • d) quoi faire si le diamètre de la lésion est > 1.5 cm?
  • e) quel technique peut faciliter la méthode avec aspiration?
  • f) quel calibre d’aiguille à utiliser? si trop petit ? si trop gros?
  • g) comment faire l’éjection du contenu ? (3 points)
A
  • a)
    Sans aspiration (aiguille démontée) –> à prioriser
    Avec aspiration (aiguille montée) –> seulement si méthode sans aspiration ne fonctionne pas (exfoliation insuffisante)
  • b) + simple, - de contamination par le sang, - traumatique sur les cellules
  • c) ne jamais sortir de la lésion (contamination); ne pas trop pomper si aiguille montée (fait éclater les vs et traumatique sur les cellules)
  • d) prendre > 1 ponctions
  • e) tubulure entre aiguille et seringue
  • f) 21-23G
    trop PETIT –> passage difficile des cellules
    trop GROS –> traumatique et difficile à étaler
  • g) éjection:
  • rapidement après ponction
  • délicatement
  • près de la lame
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8
Q

Impression de surface:

peut se faire à partir de quoi? (2)

A
  • biopsie
  • lésion exsudative
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9
Q

Étalement

  • a) quel est le but de l’étalement?
  • b) nommer les 4 étapes
  • c) nommer un artéfact possible associé à un mauvais étalement (trop épais)
A
  • a) obtenir une couche monocellulaire de cellules intactes
  • b) éjecter –> 2e lame déposée perpendiculairement –> étaler sans pression –> assécher (puissance faible, sans chaleur)
  • c) cellules moins ‘plates’ semblent avoir un plus petit diamètre
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10
Q

Envoi au laboratoire externe

  • a) comment envoyer une lame?
  • b) comment envoyer un liquide?
  • c) comment protéger l’emballage?
  • d) quelles infos doivent être fournies?
  • e) quoi faire si on a aussi un échantillon formolé à envoyer?
  • f) quel contenant utiliser?
A
  • a) non colorée
  • b) intact, dans tube EDTA
  • c) protéger contre la chaleur (glace) et le gel (pas direct sua glace!)
  • d) anamnèse + résultat d’examen clinique
  • e) envoyer dans un échantillon séparé de ceux formolés (empêche la fixation de la lame par alcool)
  • f) boitier en plastique pour éviter les bris
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11
Q

le diagnostic cytologique est basé sur quoi (3) ?

A

1 - TYPE (nature primaire) de la lésion

2 - COMPORTEMENT de la lésion
(malin vs bénin)

3 - ÉTIOLOGIE
(infectieux, non infectieux…)

(inflammatoire, non inflammatoire, néoplasique, mixte)

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12
Q

Étapes de la caractérisation cytologique

  • a) quelle est la première étape
  • b) si lésion inflammatoire –> 2 étapes?
  • c) si lésion non inflammatoire –> 2 étapes
A
  • a) déterminer la nature primaire de la lésion:
    • inflammatoire
    • non inflammatoire
    • mixte
  • b) si lésion inflammatoire:
    • Identifier la composition cellulaire (neutrophiles, macrophages, éosinophiles)
    • identifier la cause étiologique (bactéries, virus, fongi, néoplasie, auto-immun)
  • c) si non inflammatoire:
    • Identifier le tissu d’origine (épithélial, mésenchymateux, cellules rondes, mélanocytes)
    • identifier le _comportement (_bénin/normal vs critères de malignité)
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13
Q

4 types d’inflammations avec % de cellules associées

A
  • Neutrophiles (>80%) –> suppuratif
  • Neutrophiles (50-80%) + macrophages (20-50%) –> pyogranulomateux
  • Macrophages (>50%) –> granulomateux
  • Éosinophiles (10-30%) –> éosinophilique
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14
Q

Nommer 4 origines tissulaires pour les lésions non inflammatoires, et décrire leur apparence

A
  1. épithéliale (épithélium cutané, glandulaire, alvéolaire, etc.)
    cuboïdes à polygonales
    cohésives
  2. mésenchymateux - fusiforme à étoilé (ex. os, cartilage)
    allongées, contours mal définis, fins prolongements cytoplasmiques
    non cohésives
  3. mésenchymtaeux - rondes (mastocytes, histiocytes, plasmocytes, lymphocytes, c. hématopoïétiques)
    rondes,
    individuelles
  4. mélanocytes
    rondes, contours mal définis, granules pigmentaires noires
    individuelles ou en amas lâches
    apparence épithélioïde
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15
Q

Nommer 5 classifications de comportement pour les lésions non inflammatoires.

Lesquelles (3) ont une apparence non distinguable?

A
  • normal, hyperplasique, tumeur bénigne –> semblables
  • dysplasique
  • malin
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16
Q

Nommer 3 classes de critères de malignité avec des exemples

A
  • généraux (ex. anisocytose)
  • cytoplasmique (ex. vacuolisation, basophilie)
  • nucléaires (ex. anisocaryose, multinucléation, mitoses anormales, nucléoles multiples)
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17
Q

Comment confirmer un processus malin à la cytologie?

A

> 3 critères de malignité (un critère seul n’est jamais suffisant)

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18
Q

Est-ce que toutes les tumeurs malignes ont des critères de malignité?

2 exemples?

A
  • Non
  • 1 - adénocarcinome des glandes apocrines des sacs anaux
  • 2 - adénocarcinome thyroïdien
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19
Q

Nomenclature des tumeurs

  • a) épithélial / bénin
  • b) épithélial non glandulaire / malin
  • c) épithélial glandulaire / malin
  • d) mésenchymateux / bénin
  • e) mésenchymateux / malin
A
  • a) __ome (ex. papillome)
  • b) carcinome
  • c) adénocarcinome__
  • d) __ome (ex. fibrome, lipome…)
  • e) sarcome (ex. fibrosarcome, liposarcome..)
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20
Q

Sarcome des tissus mous:

nommer 2 et décrire leur apparence commune

A
  • Tumeur périvasculaire; fibrosarcome
  • cellules mésenchymateuses:
    fusiformes, individuelles mais cohésives via un stroma interstitiel, critères de malignité, haute cellularité
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21
Q

Nommer 4 tumeurs des cellules rondes avec un critère clé pour distinguer chacun

A
  • mastocytome: granules abondantes (si bien différencié)
  • histiocytome: sans granules, noyau central
  • plasmocytome: sans granules, noyau excentrique
  • ostéosarcome: ostéoblastes (noyau excentrique) + ostéoCLASTES (grosses cellules multinucléées)
22
Q

Que faire lors de l’augmentation de taille d’un ou plusieurs NL?

A

Ne jamais sous-estimer l’importance clinique; faire une cytoponction et évaluation cytologique pour déterminer l’origine

23
Q

Nommer les grandes catégories de cellules retrouvées dans un NL avec leur % relatif dans une cytologie normal

A
  • Petits lymphocytes (lymphocytes matures): > 95%
  • Lymphocytes intermédiaires - grands (lymphocytes immatures): 0-5%
  • Plasmocytes: < 3% (rares)
  • _cellules inflammatoire_s: < 3% (rares)
  • corps lymphoglandualire
24
Q

Petits lymphocytes

  • a) % dans un NL normal?
    b) taille?
  • c) Donner 2 types de petits lymphocytes - décrire leur noyau et cytoplasme
A
  • a) > 95%
  • b) 1-1.5 GR
  • c) Lymphocytes matures
    • noyau: chromatine dense, pas de nucléole, rond
    • cyto: peu abondant
  • Centrocytes
    • noyau: chromatine dense, pas de nucléole, clivé
    • cyto: peu abondant
25
Q

Lymphocytes intermédiaires à grand (lymphocytes immatures)

  • a) % dans NL normal?
  • b) nommer 2 types et indiquer:
    taille
    noyau
    cytoplasme
A
  • a) 0-5%
  • b)
  • Centroblastes:
    taille: intermédiaire (2-3 GR)
    noyau: central, chromatine claire, plusieurs nucléoles
    cytoplase: + augmenté
  • Immunoblastes
    taille: grands (>3GR)
    noyau: central, chromatine claire, 1 gros nucléole
    cytoplasme : abondant, basophile
26
Q

Plasmocytes

  • a) % dans un NL normal?
  • b) taille?
  • c) apparence noyau, cyto
  • d) si produisent activement des Ig, peuvent former des __
A
  • a) < 3% (rares)
  • b) petits - intermédiaires
  • c)
    Noyau: excentrique, chromatine sombre
    cyto: abondant, basophile, région claire périnucléaire (golgi)
  • d) Corps de Russell
27
Q

Cellules inflammatoires des NL

  • a) % dans un NL normal?
  • b) nommer les 5 cellules inflammatoires d’un NL
A
  • a) < 3% (rares)
  • b) Neutrophiles
    C, dendritiques
    Éosinophiles
    Mastocytes
    Histiocytes
28
Q

Qu’est-ce qu’un corps lymphoglandulaire?

A

fragment de cytoplasme, normalement présent dans les NL mais augmentés en cas de haut turnover de lymphocytes (ex. hyperplasie réactionnelle ou néoplasique)

29
Q

Nommer les 4 causes possibles de lymphadénomégalie

A
  • Hyperplasie réactionnelle (Stimulation antigénique)
    • ex. développement folliculaire pour drainer un foyer inflammatoire, site de vaccination, etc.
  • Lymphadénite (infiltration par des cellules inflammatoires)
  • Néoplasie lymphoïdes (tumeur primaire des cellules lymphoïdes, lymphome)
  • Métastases dans un NL (infiltration de cellules néoplasiques non lymphoïdes)
30
Q

Lymphome (néoplasie lymphoïde)

  • a) parler du DX d’un lymphome à cellules intermédiaires - grandes
  • b) parler du DX d’un lymphome à petites cellules
  • c) Quand est-ce qu’un lymphome à petites cellules peut être suggéré ?
  • d) 4 situations qui peuvent rendre le DX difficile d’un lymphome
A
  • a) Diagnostic définitif pour lymphome (B et T) lorsqu’il y a dominance (> 50%) des lymphocytes intermédiaires - grands
  • b) Difficile (car pop dominante d’un NL normal = petits lymphocytes)
  • c) populaton monomorphe de petites cellules, avec lymphadénomégalie non expliquée par une lymphadénite ou hyerplasie réactionnelle
  • d) DX de lymphome difficile si
    • cytologie de mauvaise qualité
    • lymphome de grade faible
    • lymphome à petites cellules
    • lymphome à grandes cellules mais population résiduelle importante de petits lymphocytes sains
      *
31
Q

Lymphome de grade élevé

  • a) caractériser la population cellulaire
  • b) 2 types
  • c) 3 catégories de lymphome B de grade élevé
A
  • a) population dominante de lymphocytes intermédiaires à grands avec critères de malignité
  • b) Type B ou T
  • c) centroblastique, immunoblastique, lymphoblastique
32
Q

Quand est-il recommandé de faire une biopsie/ analyse histopathologique d’un NL? (3 situations)

A
  • Lymphadénomégalie persistante sans évidence de lymphadénite ou hyperplasie lymphoïde
  • Cytologie équivoque non concluante
  • Préciser le DX d’un lymphome (grade, type (B/T), morphologie)
33
Q

Pourquoi doit-on récolter les fluides pour cytologie dans une tube EDTA?

A
  • Emêche la formation de fibrine (caillots) –> permet le comptage cellulaire
  • Inhibe l’action des protéases -> permet de préserver et donc évaluer la morphologie cellulaire
34
Q

Le frottis de liquide doit se faire ___ après le prélèvement. Si impossible ont peut ____, sauf pour le ___

A

Immédiatement;

le conserver à 4-8°C pour max 24h;

LCR: frottis doit être préparé immédiatement

35
Q

Préparation d’un frottis cytologique d’un liquide

  • a) quand faire frottis direct vs centrifugation?
  • b) vitesse / temps de centrifugation
  • c) si on centrifuge, qu’est-ce qu’il est important de faire?
  • d) 2 techniques d’étalement?
A
  • a)
    Frottis direct: lorsque la cellularité est élevée au point d’être TROUBLE (> 10 x 109 c/L)
    frottis indirect par centrifugation: lorsque la cellularité est basse (faire frottis sur culot)
  • b) 1500 rpm, 5 min (vitesse basse et temps court pour préserver l’intégrité cellulaire)
  • c) se garder une portion intacte non centrifugée (dans EDTA) pour le comptage cellulaire et évaluation des protéines
  • d) entre 2 lames ; avec arrêt brusque (comme frottis sanguin)
36
Q

Effusion - définition et rôles

A

Définition:

Ultrafiltrat du plasma. normalement pauvre en cellules et protéines

Rôles:

lubrification des séreuses pour faciliter les mouvements

37
Q

3 localisations fréquentes d’effusions

A

Effusion pleurale

Effusion péricardique

Effusion péritonéal

38
Q

3 composantes d’une évaluation complète d’un liquide d’effusion et 1 évaluation complémentaire

A
  • Comptage cellulaire
  • Taux de protéines
  • Examen cytologique
  • complémentaire = culture bactérienne si septicémie soupconnée
39
Q

2 méthodes pour évaluer le taux de protéines d’une effusion

A
  • Réfractomètre (+ commun)
  • Biochimie (biuret ou bleu de coumassie)
40
Q

2 méthodes pour faire le comptage cellulaire d’un liquide d’effusion

A
  • manuel (hémacytomètre)
  • automatisé (appareil hématologique)
41
Q

La classification des liquides se fait à partir du ______;

il ne se fait pas à partir de ___ mais permet ___

A

comptage cellulaire et taux de protéines;

étiologie;

list de DDX

42
Q

Transsudat simple

  • ​a) apparence
  • b) taux de protéines
  • c) comptage cellulaire
  • d) cytologie
  • e) mécanisme
A
  • ​a) Clair
  • b) < 15 - 25 g/L
  • c) < 1.5 - 2.5 x 109c/L
  • c) quelques neutrophiles non dégénérés; c. mésothéliales
  • g) diminution de la capacité de rétention des fluides à l’intérieur des vaisseaux (aug. P hydrostatique, baisse de la P oncotique). Pas de changements dans la perméabilité cellulaire. Baisse du comptage cellulaire par dilution
43
Q

Transsudat modifié

  • ​a) apparence
  • b) taux de protéines
  • c) comptage cellulaire
  • d) cytologie
  • e) mécanisme
A
  • a) clair à légèrement trouble
  • b) > 15-25 g/L
  • c) < 2.5 - 5 x109 c/L
  • d) quelques neutrophiles non dégénérés; c. mésothéliales
  • e) augmentation de la P hydrostatique par congestion, surtout a/n pulmonaire et hépatique
44
Q

Exsudat

  • ​a) apparence
  • b) taux de protéines
  • c) comptage cellulaire
  • d) cytologie
  • e) mécanisme
A
  • a) trouble
  • b) > 25 g/L
  • c) > 5 x 109 c/L
  • d) neutrophile (dégénérés ou non); macrophages
  • e) augmentation de la perméabilité des vaisseaux par processus inflammatoire. augmentation du comptage cellulaire par appel de cellules inflammatoires.
45
Q

Dire quel type d’effusion est typiquement associé

  • a) Syndrome néphrotique
  • b) Insuffisance cardiaque congestive
  • c) Hypertension porte
  • d) Surcharge en fluides
  • e) Torsion ou congestion hépatique
  • f) Uropéritoine
  • g) Insuffisance hépatique
  • h) Pyothorax
  • i) Entéropathie avec pertes de protéines
  • j) Infection bactérienne
  • k) Obstruction lymphatique
  • l) Péritonite biliaire
  • m) chylothorax
A
  • a) Transsudat simple (hypoprotéinémie)
  • b) Transsudat modifié
  • c) Transsudat simple (hypertension)
  • d) Transsudat simple (hypertension)
  • e) Transsudat modifié
  • f) Transsudat simple
  • g) Transsudat simple (hypoprotéinémie)
  • h) Exsudat
  • i) Transsudat simple (hypoprotéinémie)
  • j) Exsudat
  • k) Transsudat simple
  • l) exsudat
  • m) transsudat modifié à exsudat
46
Q

Connaître l’arbre décisionnel pour l’évaluation étiologique des transsudats simples

A
47
Q

Une diminution seule de l’albumine < ___ g/L peut causer un transsudat simple par hypoprotéinémie

A

10

48
Q

Une diminution l’albumine < ___ g/L accompagnée d’une augmentation de la P hydrostatique peut causer un transsudat simple

A

15

49
Q

Pour chaque suspicion étiologique associée à un exsudat, nommer l’analyse biochimique adéquate

  • a) Uropéritoine
  • b) Péritonite biliaire
  • c) Chylothorax
  • d) PIF
A
  • a) Créatinine ([effusion]/[sérum] > 2)
  • b) Bilirubines ([effusion]/[sérum] > 2)
  • c) TGL (> 1.1 mM)
  • d) Protéines totales (> 50 g/L) et ratio albu/globu (< 0.9)
50
Q

Les caractéristiques des effusions néoplasiques sont typiquement

A

TRÈS VARIABLES!

Cytologie Vétérinaire (3 decks)

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