Cytologie - théorie Flashcards
5 avantages de la cytologie (vs histopathologie)
- moins de matériel
- moins cher
- moins invasif
- habituellement pas d’anesthésie générale ou chirurgie
- haute sensibilité et spécificité
Le pouvoir diagnostic de la cytologie est optimal pour quel type de lésion?
lésions cutanées et sous-cutanées
2 limitations de la cytologie
- pas d’information sur l’architecture tissulaire
- potentiel diagnostic dépend de la qualité et représentativité de l’échantillon (faible cellularité, cellules mal préservées, contamination sanguine…)
Cyto vs histopathologie:
Qui est plus efficace pour détection de métastases aux NL?
cyto!
Nommer 3 techniques de prélèvement de tissus solides
- ponction à l’aiguille fine
- Impression de surface
- Grattage
quelle est la technique de choix pour les masses solides cutanées ?
Ponction à l’aiguille fine
Ponction à l’aiguille fine:
- a) Quelles sont les 2 techniques? quelles sont leur indications respectives? (connaître les techniques)
- b) nommer les avantages de la méthode sans aspiration
- c) 2 choses à éviter lors des ponctions
- d) quoi faire si le diamètre de la lésion est > 1.5 cm?
- e) quel technique peut faciliter la méthode avec aspiration?
- f) quel calibre d’aiguille à utiliser? si trop petit ? si trop gros?
- g) comment faire l’éjection du contenu ? (3 points)
- a)
Sans aspiration (aiguille démontée) –> à prioriser
Avec aspiration (aiguille montée) –> seulement si méthode sans aspiration ne fonctionne pas (exfoliation insuffisante) - b) + simple, - de contamination par le sang, - traumatique sur les cellules
- c) ne jamais sortir de la lésion (contamination); ne pas trop pomper si aiguille montée (fait éclater les vs et traumatique sur les cellules)
- d) prendre > 1 ponctions
- e) tubulure entre aiguille et seringue
- f) 21-23G
trop PETIT –> passage difficile des cellules
trop GROS –> traumatique et difficile à étaler - g) éjection:
- rapidement après ponction
- délicatement
- près de la lame
Impression de surface:
peut se faire à partir de quoi? (2)
- biopsie
- lésion exsudative
Étalement
- a) quel est le but de l’étalement?
- b) nommer les 4 étapes
- c) nommer un artéfact possible associé à un mauvais étalement (trop épais)
- a) obtenir une couche monocellulaire de cellules intactes
- b) éjecter –> 2e lame déposée perpendiculairement –> étaler sans pression –> assécher (puissance faible, sans chaleur)
- c) cellules moins ‘plates’ semblent avoir un plus petit diamètre
Envoi au laboratoire externe
- a) comment envoyer une lame?
- b) comment envoyer un liquide?
- c) comment protéger l’emballage?
- d) quelles infos doivent être fournies?
- e) quoi faire si on a aussi un échantillon formolé à envoyer?
- f) quel contenant utiliser?
- a) non colorée
- b) intact, dans tube EDTA
- c) protéger contre la chaleur (glace) et le gel (pas direct sua glace!)
- d) anamnèse + résultat d’examen clinique
- e) envoyer dans un échantillon séparé de ceux formolés (empêche la fixation de la lame par alcool)
- f) boitier en plastique pour éviter les bris
le diagnostic cytologique est basé sur quoi (3) ?
1 - TYPE (nature primaire) de la lésion
2 - COMPORTEMENT de la lésion
(malin vs bénin)
3 - ÉTIOLOGIE
(infectieux, non infectieux…)
(inflammatoire, non inflammatoire, néoplasique, mixte)
Étapes de la caractérisation cytologique
- a) quelle est la première étape
- b) si lésion inflammatoire –> 2 étapes?
- c) si lésion non inflammatoire –> 2 étapes
- a) déterminer la nature primaire de la lésion:
- inflammatoire
- non inflammatoire
- mixte
- b) si lésion inflammatoire:
- Identifier la composition cellulaire (neutrophiles, macrophages, éosinophiles)
- identifier la cause étiologique (bactéries, virus, fongi, néoplasie, auto-immun)
- c) si non inflammatoire:
- Identifier le tissu d’origine (épithélial, mésenchymateux, cellules rondes, mélanocytes)
- identifier le _comportement (_bénin/normal vs critères de malignité)
4 types d’inflammations avec % de cellules associées
- Neutrophiles (>80%) –> suppuratif
- Neutrophiles (50-80%) + macrophages (20-50%) –> pyogranulomateux
- Macrophages (>50%) –> granulomateux
- Éosinophiles (10-30%) –> éosinophilique
Nommer 4 origines tissulaires pour les lésions non inflammatoires, et décrire leur apparence
-
épithéliale (épithélium cutané, glandulaire, alvéolaire, etc.)
cuboïdes à polygonales
cohésives - mésenchymateux - fusiforme à étoilé (ex. os, cartilage)
allongées, contours mal définis, fins prolongements cytoplasmiques
non cohésives - mésenchymtaeux - rondes (mastocytes, histiocytes, plasmocytes, lymphocytes, c. hématopoïétiques)
rondes,
individuelles -
mélanocytes
rondes, contours mal définis, granules pigmentaires noires
individuelles ou en amas lâches
apparence épithélioïde
Nommer 5 classifications de comportement pour les lésions non inflammatoires.
Lesquelles (3) ont une apparence non distinguable?
- normal, hyperplasique, tumeur bénigne –> semblables
- dysplasique
- malin
Nommer 3 classes de critères de malignité avec des exemples
- généraux (ex. anisocytose)
- cytoplasmique (ex. vacuolisation, basophilie)
- nucléaires (ex. anisocaryose, multinucléation, mitoses anormales, nucléoles multiples)
Comment confirmer un processus malin à la cytologie?
> 3 critères de malignité (un critère seul n’est jamais suffisant)
Est-ce que toutes les tumeurs malignes ont des critères de malignité?
2 exemples?
- Non
- 1 - adénocarcinome des glandes apocrines des sacs anaux
- 2 - adénocarcinome thyroïdien
Nomenclature des tumeurs
- a) épithélial / bénin
- b) épithélial non glandulaire / malin
- c) épithélial glandulaire / malin
- d) mésenchymateux / bénin
- e) mésenchymateux / malin
- a) __ome (ex. papillome)
- b) carcinome
- c) adénocarcinome__
- d) __ome (ex. fibrome, lipome…)
- e) sarcome (ex. fibrosarcome, liposarcome..)
Sarcome des tissus mous:
nommer 2 et décrire leur apparence commune
- Tumeur périvasculaire; fibrosarcome
- cellules mésenchymateuses:
fusiformes, individuelles mais cohésives via un stroma interstitiel, critères de malignité, haute cellularité
Nommer 4 tumeurs des cellules rondes avec un critère clé pour distinguer chacun
- mastocytome: granules abondantes (si bien différencié)
- histiocytome: sans granules, noyau central
- plasmocytome: sans granules, noyau excentrique
- ostéosarcome: ostéoblastes (noyau excentrique) + ostéoCLASTES (grosses cellules multinucléées)
Que faire lors de l’augmentation de taille d’un ou plusieurs NL?
Ne jamais sous-estimer l’importance clinique; faire une cytoponction et évaluation cytologique pour déterminer l’origine
Nommer les grandes catégories de cellules retrouvées dans un NL avec leur % relatif dans une cytologie normal
- Petits lymphocytes (lymphocytes matures): > 95%
- Lymphocytes intermédiaires - grands (lymphocytes immatures): 0-5%
- Plasmocytes: < 3% (rares)
- _cellules inflammatoire_s: < 3% (rares)
- corps lymphoglandualire
Petits lymphocytes
- a) % dans un NL normal?
b) taille? - c) Donner 2 types de petits lymphocytes - décrire leur noyau et cytoplasme
- a) > 95%
- b) 1-1.5 GR
- c) Lymphocytes matures
- noyau: chromatine dense, pas de nucléole, rond
- cyto: peu abondant
-
Centrocytes
- noyau: chromatine dense, pas de nucléole, clivé
- cyto: peu abondant
Lymphocytes intermédiaires à grand (lymphocytes immatures)
- a) % dans NL normal?
- b) nommer 2 types et indiquer:
taille
noyau
cytoplasme
- a) 0-5%
- b)
-
Centroblastes:
taille: intermédiaire (2-3 GR)
noyau: central, chromatine claire, plusieurs nucléoles
cytoplase: + augmenté -
Immunoblastes
taille: grands (>3GR)
noyau: central, chromatine claire, 1 gros nucléole
cytoplasme : abondant, basophile
Plasmocytes
- a) % dans un NL normal?
- b) taille?
- c) apparence noyau, cyto
- d) si produisent activement des Ig, peuvent former des __
- a) < 3% (rares)
- b) petits - intermédiaires
- c)
Noyau: excentrique, chromatine sombre
cyto: abondant, basophile, région claire périnucléaire (golgi) - d) Corps de Russell
Cellules inflammatoires des NL
- a) % dans un NL normal?
- b) nommer les 5 cellules inflammatoires d’un NL
- a) < 3% (rares)
- b) Neutrophiles
C, dendritiques
Éosinophiles
Mastocytes
Histiocytes
Qu’est-ce qu’un corps lymphoglandulaire?
fragment de cytoplasme, normalement présent dans les NL mais augmentés en cas de haut turnover de lymphocytes (ex. hyperplasie réactionnelle ou néoplasique)
Nommer les 4 causes possibles de lymphadénomégalie
-
Hyperplasie réactionnelle (Stimulation antigénique)
- ex. développement folliculaire pour drainer un foyer inflammatoire, site de vaccination, etc.
- Lymphadénite (infiltration par des cellules inflammatoires)
- Néoplasie lymphoïdes (tumeur primaire des cellules lymphoïdes, lymphome)
- Métastases dans un NL (infiltration de cellules néoplasiques non lymphoïdes)
Lymphome (néoplasie lymphoïde)
- a) parler du DX d’un lymphome à cellules intermédiaires - grandes
- b) parler du DX d’un lymphome à petites cellules
- c) Quand est-ce qu’un lymphome à petites cellules peut être suggéré ?
- d) 4 situations qui peuvent rendre le DX difficile d’un lymphome
- a) Diagnostic définitif pour lymphome (B et T) lorsqu’il y a dominance (> 50%) des lymphocytes intermédiaires - grands
- b) Difficile (car pop dominante d’un NL normal = petits lymphocytes)
- c) populaton monomorphe de petites cellules, avec lymphadénomégalie non expliquée par une lymphadénite ou hyerplasie réactionnelle
- d) DX de lymphome difficile si
- cytologie de mauvaise qualité
- lymphome de grade faible
- lymphome à petites cellules
- lymphome à grandes cellules mais population résiduelle importante de petits lymphocytes sains
*
Lymphome de grade élevé
- a) caractériser la population cellulaire
- b) 2 types
- c) 3 catégories de lymphome B de grade élevé
- a) population dominante de lymphocytes intermédiaires à grands avec critères de malignité
- b) Type B ou T
- c) centroblastique, immunoblastique, lymphoblastique
Quand est-il recommandé de faire une biopsie/ analyse histopathologique d’un NL? (3 situations)
- Lymphadénomégalie persistante sans évidence de lymphadénite ou hyperplasie lymphoïde
- Cytologie équivoque non concluante
- Préciser le DX d’un lymphome (grade, type (B/T), morphologie)
Pourquoi doit-on récolter les fluides pour cytologie dans une tube EDTA?
- Emêche la formation de fibrine (caillots) –> permet le comptage cellulaire
- Inhibe l’action des protéases -> permet de préserver et donc évaluer la morphologie cellulaire
Le frottis de liquide doit se faire ___ après le prélèvement. Si impossible ont peut ____, sauf pour le ___
Immédiatement;
le conserver à 4-8°C pour max 24h;
LCR: frottis doit être préparé immédiatement
Préparation d’un frottis cytologique d’un liquide
- a) quand faire frottis direct vs centrifugation?
- b) vitesse / temps de centrifugation
- c) si on centrifuge, qu’est-ce qu’il est important de faire?
- d) 2 techniques d’étalement?
- a)
Frottis direct: lorsque la cellularité est élevée au point d’être TROUBLE (> 10 x 109 c/L)
frottis indirect par centrifugation: lorsque la cellularité est basse (faire frottis sur culot) - b) 1500 rpm, 5 min (vitesse basse et temps court pour préserver l’intégrité cellulaire)
- c) se garder une portion intacte non centrifugée (dans EDTA) pour le comptage cellulaire et évaluation des protéines
- d) entre 2 lames ; avec arrêt brusque (comme frottis sanguin)
Effusion - définition et rôles
Définition:
Ultrafiltrat du plasma. normalement pauvre en cellules et protéines
Rôles:
lubrification des séreuses pour faciliter les mouvements
3 localisations fréquentes d’effusions
Effusion pleurale
Effusion péricardique
Effusion péritonéal
3 composantes d’une évaluation complète d’un liquide d’effusion et 1 évaluation complémentaire
- Comptage cellulaire
- Taux de protéines
- Examen cytologique
- complémentaire = culture bactérienne si septicémie soupconnée
2 méthodes pour évaluer le taux de protéines d’une effusion
- Réfractomètre (+ commun)
- Biochimie (biuret ou bleu de coumassie)
2 méthodes pour faire le comptage cellulaire d’un liquide d’effusion
- manuel (hémacytomètre)
- automatisé (appareil hématologique)
La classification des liquides se fait à partir du ______;
il ne se fait pas à partir de ___ mais permet ___
comptage cellulaire et taux de protéines;
étiologie;
list de DDX
Transsudat simple
- a) apparence
- b) taux de protéines
- c) comptage cellulaire
- d) cytologie
- e) mécanisme
- a) Clair
- b) < 15 - 25 g/L
- c) < 1.5 - 2.5 x 109c/L
- c) quelques neutrophiles non dégénérés; c. mésothéliales
- g) diminution de la capacité de rétention des fluides à l’intérieur des vaisseaux (aug. P hydrostatique, baisse de la P oncotique). Pas de changements dans la perméabilité cellulaire. Baisse du comptage cellulaire par dilution
Transsudat modifié
- a) apparence
- b) taux de protéines
- c) comptage cellulaire
- d) cytologie
- e) mécanisme
- a) clair à légèrement trouble
- b) > 15-25 g/L
- c) < 2.5 - 5 x109 c/L
- d) quelques neutrophiles non dégénérés; c. mésothéliales
- e) augmentation de la P hydrostatique par congestion, surtout a/n pulmonaire et hépatique
Exsudat
- a) apparence
- b) taux de protéines
- c) comptage cellulaire
- d) cytologie
- e) mécanisme
- a) trouble
- b) > 25 g/L
- c) > 5 x 109 c/L
- d) neutrophile (dégénérés ou non); macrophages
- e) augmentation de la perméabilité des vaisseaux par processus inflammatoire. augmentation du comptage cellulaire par appel de cellules inflammatoires.
Dire quel type d’effusion est typiquement associé
- a) Syndrome néphrotique
- b) Insuffisance cardiaque congestive
- c) Hypertension porte
- d) Surcharge en fluides
- e) Torsion ou congestion hépatique
- f) Uropéritoine
- g) Insuffisance hépatique
- h) Pyothorax
- i) Entéropathie avec pertes de protéines
- j) Infection bactérienne
- k) Obstruction lymphatique
- l) Péritonite biliaire
- m) chylothorax
- a) Transsudat simple (hypoprotéinémie)
- b) Transsudat modifié
- c) Transsudat simple (hypertension)
- d) Transsudat simple (hypertension)
- e) Transsudat modifié
- f) Transsudat simple
- g) Transsudat simple (hypoprotéinémie)
- h) Exsudat
- i) Transsudat simple (hypoprotéinémie)
- j) Exsudat
- k) Transsudat simple
- l) exsudat
- m) transsudat modifié à exsudat
Connaître l’arbre décisionnel pour l’évaluation étiologique des transsudats simples
Une diminution seule de l’albumine < ___ g/L peut causer un transsudat simple par hypoprotéinémie
10
Une diminution l’albumine < ___ g/L accompagnée d’une augmentation de la P hydrostatique peut causer un transsudat simple
15
Pour chaque suspicion étiologique associée à un exsudat, nommer l’analyse biochimique adéquate
- a) Uropéritoine
- b) Péritonite biliaire
- c) Chylothorax
- d) PIF
- a) Créatinine ([effusion]/[sérum] > 2)
- b) Bilirubines ([effusion]/[sérum] > 2)
- c) TGL (> 1.1 mM)
- d) Protéines totales (> 50 g/L) et ratio albu/globu (< 0.9)
Les caractéristiques des effusions néoplasiques sont typiquement
TRÈS VARIABLES!
