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Exercices Chir > Anesthesie > Flashcards

Anesthesie Flashcards

1
Q

Que contient la prémédication Kitty Magic?

sédation kick in en comment de temps?

A

Dexmédétomidine
hydromorphone
kétamine

environ 20 min

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Q

quelle action faut il faire apres avoir administrer le kitty magic (dans une meme seringue)

A

mettre de l’onguent dans les yeux

et inscrire le temps de la prémed sur feuille de suivi

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3
Q

Quelle est la molécule pour induire?

A

Alfaxalone

métabolisme hépatique + imp que propofol. Excrétion rénale vs propofol

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4
Q

quelles tailles de tube endotrachéal a preparer? avec quelle drogue: qte et raison?

A

3, 4 et 5 mm de dm

0,1 ml de lidocaine 2% pour eviter le laryngospasme

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5
Q

principale source de maintien de l’anesthésie

A

isoflurane dans l’oxygène

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6
Q

débit de l’isoflurane/o2 et systeme

A

système bain
o2 = 150 ml/ kg/min
debit minimal de 0,5 L/min

•	2-2.5 %	20 min
•	1.5%	15 min
•	1%	ensuite
•	0.5%	près du réveil 
	Si la chatte se réveille, donner ¼ dose initiale d'alfaxalone
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7
Q

en resume en quoi consiste la surveillance anesthesique (chaque 5 min)

matériel nécessaire

A

cardiaque: FC et rythme, pouls, couleur des mq, TRC, PAS (doppler), ECG
respiratoire: FR et rythme et amplitude, SaO2 (oxymetre de pouls), PETCO2 avec le capnomètre
narcose ou perte de conscience/ niveau d’anes: position de l’oeil, reflexes atténués ou inhibés (palpébral), tonus musculaire (mâchoire), tempé corporelle (rectal en preop/post op et oesophagienne en perop)

  • Oxymètre de pouls ou capnomètre
  • Doppler + brassard + sphygmomanomètre + gel à ultrason + tape (2 bandes)
  • Rapport d’anesthésie
  • ECG et thermomètre oesophagien installé en salle de chirurgie seulement
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8
Q

Fluidotherapie

choix et qte

A

LRS IV: 3 ml/kg/h — 1 gtte au 6 sec (environ pour une chatte de 3 kg)
puis diminuer de 25% chaque h

Tubulure = Microdrip (60 gttes/ml) si <10kg
lactate de ringers
o Aiguille pour PRN (n’importe quel calibre)
o rouleau de diachylon (1 pouce de large)
o vetrap (retrait de la fluido)

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9
Q

quel ATB a donner avant la chirurgie dans la fluido?

A

céfazoline (ancel)

injection lente, sur 5 minutes

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10
Q

quelle drogue est donnée pendant la chirurgie par le chirurgien?

A

bupivacaine

analgésique

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11
Q

qu’est ce qui confirme qu’on peut enlever le tube endotrachéal au reveil ?

A

reflexe palpébral bien présent (chat est plus tot a cause du laryngospasme)

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12
Q

quand on peut remettre la chatte dans sa litiere?

A

lorsque sa tempé rectale > 37C et qu’elle se tient en décubitus sternale

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13
Q

quelle est l’analgesie postop a donner a la fin de la chirurgie?

A

robenacoxib SC

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14
Q

le mercredi soir, si le score de l’échelle de grimarce du chat = ou > 4, on donne quelle drogue?

A

buprénorphine

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15
Q

quelle est la prescription a faire pour la maison?

A

robenacoxib (onsior de 6 mg)

le soir pour 2 tx

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16
Q

catheter

  • materiel
  • technique
A
  • Rasoir
  • Gauzes (alcool, chlorhexidine, sèches)
  • Cathéter (22G, chat) + PRN + 2 tapes (bouts repliés)
  • 1 seringue 3ml de saline héparinée

ecouter le video et sassurer de savoir comment mettre les pansements

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17
Q

intubation
materiel a preparer
technique

A

• 3 tubes endotrachéaux (3 tailles différentes) autour de 3-5 mm DI
o 0,1 ml de lidocaïne 2% pour éviter le laryngospasme
• 1 seringue réutilisable pour gonfler les ballonnets  tester efficacité des ballonnets
• Kling (attacher tube endotrachéal)
• Gauzes sèches (+gel lubrifiant)
• Laryngoscope (vérifier la lumière) et taille = longueur du mandibule
• 1 seringue de lidocaïne (0.1ml) + stylet

 on veut : le plus court et le plus grand diamètre possible pour minimiser la résistance et optimiser l’étanchéité
 Tube à ballonnet à haut volume/faible pression

  1. Décubitus sternal
  2. Lubrifier
    - a/n du ballonet; pas sur œil de murphy
    - juste assez de lubrifiant pour rendre le tube lisse, pas de ‘mottons’
  3. Insérer le tube par la main dominante, biseau en latéral (de côté) et tenir le laryngoscope avec l’autre main
    - Ne pas toucher l’épiglotte
  4. On peut bagger l’animal et splash de lido si intubation difficile
  5. Ouvrir les arythénoïdes avec laryngoscope (mouvement de levier vers le plancher)
  6. Intuber
  7. Connecter à l’appareil anesthésique (Connecter tube coaxial au tube endotrachéal)
  8. Fixer le tube avec kling (chat = derrière les oreilles)
18
Q

APPAREIL D’ANESTHÉSIE

  • matériel
  • verification a faire (juste nom de procédure, la description dans une autre question)
A

ballon: 1L/ 10kg donc ballon de 0,5 L

- test de fuite et chemin a faire

19
Q

maintien de la température

A 
•	Thermomètre + vaseline
•	2 bouillottes
•	Chauffe-fluide (salle de chirurgie)
o	Couverture (polar ou de survie)
o	Séchoir (au réveil, si nécessaire)

passer du système système bain a circulatoire (- de resistance)

20
Q

Procédure en étape

A
  1. Examen préanesthésique du patient : TPR + TRC + muqueuses + poids (kg)
  2. Compléter le protocole d’anesthésie
  3. Prélèvement des drogues (les IDENTIFIER!)  seringue 1 ml pour drogues de prémed. Faire vérifier
  4. Commencer le rapport d’anesthésie (drogues d’urgence et informations connues)
  5. Prémédication : transférer les drogues préanesthésiques dans une seringue 3ml  injection IM avec 25G  lubrifiant oculaire
  6. Indiquer l’heure de la prémédication
  7. Installation du cathéter
  8. Induction de l’anesthésie : TPR, TRC, MM  préoxygénation  administration de l’agent d’induction
  9. Intubation + connexion à l’appareil d’anesthésie (ouvrir O2, connecter à l’appareil et ouvrir gaz anesthésique)
  10. Auscultation pulmonaire bilatérale
  11. Présence de fuites? (Respiration avec pression positive)  gonfler ballonnet si fuites
  12. Installation oxymètre de pouls et capnomètre
  13. Installation doppler (surface a été rasée)
  14. Injection de Céfazoline (Céphalosporine) sur 5 minutes avant la chirurgie.
  15. Évaluation anesthésique toutes les 5 minutes
    a. Sys cardiaque : FC, rythme cardiaque, pouls, muqueuses, TRC, pression artérielle systémique (Doppler)
    b. Sys respiratoire : FR, rythme, amplitude, saturation en O2 (oxymètre de pouls) et PetCO¬2 (capnomètre)
    c. Assister la respiration
    d. Profondeur anesthésique : position de l’œil, tonus des mâchoires, réflexe palpébral, diamètre pupillaire
    e. Température toutes les 15 minutes
    Réveil
  16. Rincer le tube du gaz anesthésique et rebrancher au patient
  17. Détacher la kling
  18. Dégonfler le ballonnet du tube
  19. Extubation lorsque le réflexe palpébral est évident ou réflexe de déglutition
  20. Retour en cage lorsque l’animal est sternal et température >37 C. Retrait du KT et bandage compressif avant retour en cage. Rien dans la cage jusqu’à réveil 100% normal.
  21. Analgésie : Robenacoxib si n’a pas été donné avant chx. Buprénorphine au besoin
21
Q

valeurs normales d’un chat

A 
tempé: 38-39
>37 pour le réveil
FC: 140 -240BPM
FR: 25-40 RPM
- anesthesie: >10
Sao2: >95% (idéal > 98%)
critique si < 90%
PAM: 80 -160 mmHg
PAS: 100- 160 
ETCO: 25-35, critique si >40
22
Q

Préparation appareil anesthésistes: procédures

A
  • 3 branchements :
    ballon réservoir, tube coaxial, ligne de gaz frais connectée au tube coaxial en bain
  • 3 vérifications :
    o Débitmètre : s’assurer que la roulette fonctionne et que le flotteur monte et descende bien
    o Évaporateur : s’assurer qu’il y ait assez d’isoflurane (plus haut que la ligne noire la plus haute) et que la roulette tourne bien
    o Valves (circulaire) souffler dans le tube coaxial pour s’assurer que les valves bougent bien

vérifier test de fuite en video

23
Q

après avoir mis le cathéter et avant d’induire, que faire ?

A

faire la pré-oxygénation

  • permet une marge de manoeuvre en cas de désaturation. non si mal toléré et génère du stress
  • Installer masque à oxygénation
  • Brancher au tube coaxial
  • Débitmètre : ~ 2L/ min pour 3-5 min
24
Q

Que faire lors de l’induction

A
  • Faire une évaluation pré-induction : auscultation, TPR, TRC, muqueuses
    o pour s’assurer que l’animal est stable après prémédication
  • Administrer propofol à effet IV (cathéter) ou alfaxalone (plus dur, car vasoconstriction)
    o commencer avec ¼ de la dose et continuer jusqu’à perte du tonus de la mâchoire et de la langue
  • Rincer le cathéter avec saline héparinée (≈ 0.2 mL)
  • Noter l’heure d’induction
  • mettre de l’onguent ophtalmique
25
Q

que faire immédiatement après l’intubation?

A

Connexion à appareil anesthésique

  1. Ouvrir O2 (bain = directement à 150 ml/kg/min, min 500 ml/min) en obstruant l’ouverture
  2. Connecter tube coaxial au tube endotrachéal
  3. Ouvrir isoflurane
    - En dernier seulement pour éviter fuites dans l’air
    - Si cyanose  attendre avant d’ouvrir isoflurane
    - commencer à 2-2.5%
  4. Fixer le tube avec kling
  5. Auscultation pulmonaire bilatérale + vérification pour présence de fuites
    - Pression positive de 10-15 cm H2O (en baggant)  s’assurer d’entendre les poumons des 2 côtés
    - Vérifier si présence de fuite (écouter en baggant +/- odeur d’isoflurane)
    - Gonfler ballonet seulement si présence de fuites (à effet, doucement jusqu’à ce qu’on entende plus de fuites)
    - Ventiler si apnée (bagger)
26
Q

installation du doppler

A

(membre le plus loin du site chirurgical)

  1. Raser entre les coussinets principal et accessoire
  2. Diachylon (10 cm x 1 po) déposée sur la face plane de la sonde
  3. Gel sur concave concave de la sonde
  4. palper le pouls a/n de l’a. palmaire ou plantaire et y déposer la sonde
  5. Fixer une première fois avec diachylon
  6. Allumer le Doppler et ajuster position de la sonde jusqu’à l’écoute de battements. puis éteindre le Doppler
  7. Faire une boucle puis fixer à nouveau avec diachylon
  8. Noter la pression : moment où le bruit redevient audible
    • PAS chez le chien, mais plutôt PAM chez le chat
27
Q

installation de l’ECG

A
  1. s’assurer que l’animal ne soit pas en contact direct avec table de métal
  2. gel sur la peau (écarter poils ou raser) aux sites d’électrodes :
    • MTs = olécrâne, pli du coude, mi-chemin entre olécrâne et carpe a/n palmaire
    • MPs = genou (rotule), tarse
    • noire : MTG (fumée sur feu)
    • rouge : MPG
    • blanche : MTD (neige sur sapin)
    • verte : MPD
  3. Installer les électrodes
  4. Cables = pas sur l’animal ni champ chirurgical
  5. Allumer appareil (bouton orange)
  6. Vérifier le tracé  DRAPÉ peut être installé si adéquat
  7. Si tracé inadéquat :
    • s’assurer que déviation DII est sélectionnée
    • réajuster électrodes et/ou ajouter du gel
28
Q

transfert en salle de chirurgie

pre-op en per op

A
  • Enlever sarrau, mettre couvre-chaussures, masque, chapeau de cx
  • Prendre un civière
  • Enlever les appareils de monitoring
  • Bagger quelques fois
  • Fermer isoflurane (vaporisateur) et O2 (débitmètre)
  • Détacher tube coaxial
  • Aller à la tête de l’animal immédiatement
  • Apporter :
    1. pad (protocole, suivi)
    2. bac rouge (drogues)
    3. seringue de propofol PRÈS de soi
    4. seringue d’air pour ballonet
29
Q

Transfert en salle de réveil

A
  • Détacher l’animal
  • Détacher la Kling
  • Dégonfler le ballonet
  • Éteindre isoflurane (noter heure d’arrêt d’anesthésie)
    o risque de réveil soudain = être prêt à extuber rapidement
  • Déconnecter le tube coaxial  flush du système avec O2 reconnecter pour oxygénothérapie (O2 pendant 5 min)
    o Flush : pour éliminer isoflurane. Comme le test de fuite mais valve O2 est ouverte (bloquer le tube avec le pouce et appuyer sur flush)
  • Éteindre l’O2
  • Extubation
    o chat : lorsque réflexe palpébral réapparait (bien évident)
     tôt (laryngospasme)
    o chien : lorsque réflexe de déglutition est de retour
    o Surveiller après extubation
    o NOTER heure, T° et comportement au réveil et extubation
  • Rétablir la T°
    o tapis chauffant, bouillotte… jusqu’à 37°C
  • oter la fluido
  • analgesie post-op : robenacoxib SC
30
Q

quoi faire si hypotension (<80) + bradycarde (<35)

A

 trop profond (drogues)

  • vérifier niveau d’anesthésie
  • 1 - baisser l’iso
  • 2 - anticholinergique (glycopyrrolate) au besoin
31
Q

hypotension (=80 mmhg) mais FC normal (FC=88)

A

->Donne glyco ou fluido

32
Q

trajet du système BAIN

A

 Principe : pas de recirculation des gaz expirés (si DGF adéquat)

  1. O2 provient d’une source centralisée  prise d’O2  ligne d’O2
  2. Débitmètre (régule débit d’O2)
  3. Vaporisateur (mélage O2 + anesthésique)
  4. Sortie commune des gaz (O2 + iso)  ligne de gaz frais  vers le circuit filtre
    - FLUSH : circuit direct entre ligne d’O2 et sortie commune des gaz, sans passer par le débitmètre et vaporisateur (bypass). très gros débit, ne jamais appuyer si patient connecté au système
  5. la ligne de gaz frais (O2 + iso) est connectée directement au tube coaxial  entrée dans partie interne/ inspiratoire du tube coaxial
  6. air expiré entre dans portion externe du tube coaxial  entre dans ballon + manomètre
  7. tout l’air expiré quitte le circuit par la valve d’échappement (non réhinalé)
33
Q

que calcule l’oxymètre de pouls

A

 2 mesures
• SaO2 = saturation en O2 du sang artériel
• FC
 on a préalablement saturé les alvéoles en O2 (100%)
 si SaO2 < 90 %, correspond à une PaO2 de 60 mmHg = hypoxémie sévère
• si causé par hypoventilation, ETCO2 sera élevé (avant SaO2)

34
Q

hypotension (<80) + tachycarde (>160)

A

Hypovolémie/ hypotension + tachycardie compensatoire

  • fluides (↑PA)
  • Ne pas donner du glycopyrrolate, régler l’hypotension!
35
Q

hypertension (>180) + tachycarde (>160)

A

trop léger ou douleur

  • vérifier niveau d’anesthésie
  • augmenter iso
  • propofol au besoin (1/4 dose max calculée)
36
Q

causes d’hypothermie

A

o Air qui entre dans le tube n’a pas passé par les narines qui ont la fonction de réchauffer l’air inspiré
o Ouverture lors de la chirurgie : contact avec l’air ambiant froid de la salle de chirurgie
o Drogues qui causent de l’hypotension/vasodilatation (ACP, isoflurane, propofol)
o Stimulation physique absente pendant la chirurgie (tremblements impossibles)
o Scrub stérile : application d’alcool/chlorhexidine froide sur la peau

37
Q

que mesure le capnomètre?

A

 reflet des fonctions : métabolique (production de CO2), cardiaque (circulation CO2) et respiratoire (élimination de CO2)
 2 mesures :
• ETCO2 = pression max de CO2 relâchée en fin d’expiration = P alvéolaire
• FR
 Axe Y = (ré-inspiré)/(expiré)
• ré-inspiré = toujours à 0
o si > 0  ré-inspiration  vérifier valves!
• expiré = normal entre 25-35 mmHg
o si > 40  hypoventilation
o si < 25  hyperventilation
 (n’a pas eu le temps d’expirer, chasse trop le CO2)
 voir graphiques :
• hypoventilation (aug ETCO2)
• hyperventilation (baisse ETCO2)
• obstruction (chute ETCO2)
Différence entre le volume de CO2 à la fin de l’expiration (PETCO2) et CO2 dans le sang (PaCO2)
- 2 – 5mmHg

38
Q

Hydromorphone: caractéristiques

A 
Agoniste total (effet entier)
	Analgésie +++, sedation +, prévient la douleur, réduit qt anesthésisques généraux, adoucit induction et réveil
	Peu d’effets <3 : bradycardie
	↓ fonction respiratoire (dose-dépendant)
	Émétique, rétention urinaire et constipation
39
Q

mettre les différentes drogues

A

x

40
Q

où injecter la prémed

A

Entre la colonne, la dernière côte et l’aile de l’ilium, dans le muscle, ne pas oublier de faire une pression négative

41
Q

pour combattre la vasodilatation nommer deux drogues

A
  • Épinéphrine : vasoconstriction locale, retarde l’absorption systémique
  • Dopamine : agent vasopresseur

Exercices Chir (2 decks)

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