Anesthésie Flashcards

1
Q

Quelles sont les étapes de l’ax? (10) Ck conseils de vahe

A
  1. Préparation
  • Appareil d’ax et fuites
  • Eval Patient
  • protocole d’ax
  • Matériel : (choix de seringues, faire vérifier par prof, prémed)
  • Pose Kt
  1. Évaluation pré-induction
    - patient
  2. Pré-oxygénation?
  3. Induction (meds)
  4. Intubation orotrachéale (et vérifications)
  5. Branchement à l’appareil anesthésiqu7
  6. Maintien de l’anesthésie (isoflurane)
  7. Surveillance et ventilation
  8. Arrêt de l’anesthésie et réveil
  9. Analgésie

Prep

  • appareil ax et fuites
  • Matériel (table, seringues pour drogues)
  • Eval patient
  • Protocole d’ax
  • Premed (mettre onguent et après chaqeu h)
  • Pose kt

Evaluation pre-induction (TRC, couleur des muqueuses, TPR, auscultation cardiaque et pulmonaire)

Pre oxygenation 3-5 min

Induction

Intub (mettre lido)

Branchement à l’appareil d’ax

Verifier si a la bonne plac et si fuites

Mettre les appareilss de surveillance anesthésique (capnometre et oxymetre de pouls, doppler) et verifier niveau de profondeur ax. Ventiler toutes les 5 min.

Transfert

Arrêt anesthésie et réveil

Analgésie

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2
Q

Qu’examine-t-on durant l’examen pré-anesthésique du patient ? (7)

A
  1. Masse corporelle (kg)
  2. Couleur des muqueuses
  3. Temps de remplissage capillaire (TRC)
  4. Auscultation cardiaque et pulmonaire
  5. FC
  6. FR
  7. T
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3
Q

Qu’est-ce qui est important de ne pas oublier après avoir prélever les drogues?

A

Identifier les seringues avec le NOM et la CONCENTRATION en mg/ml

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4
Q

Selon quoi devons-nous choisir les seringues?

A

Le volume à prélever

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5
Q

Comment remplir la feuille jaune d’ax?

A
  1. Photo feuille jaune studium
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6
Q

Comment prépare-t-on le matériel?

A
  1. Appareil d’ax
    * (branchements et test de fuite)
  2. Table d’induction
  • Matériel installation kt IV (20G chien | 22G chat) → rasoir, gaz d’alcool et chlorex (X3), kt, 3 mL saline héparinée, PRN, ruban diachylon (X2)
  • Agent d’induction (propofol Ca/alfaxalone Fe)
  • 3 tubes consécutives (8.5 mm, 3.5 mm) → long = distance entre épaule et commissure des lèvres
  • Gonfler ballons pour voir si fuite et qté max d’air possible.
  • Surveillance anesthésique : moniteur (oxymètre de pouls et capnomètre), doppler et brassard
  • Kling pour attacher tube endotrachéal au museau
  • Gaz sèches et une lubrifié avec le gel lubrifiant
  • Thermomètre
  • Drogues (prémed, induction)

3.Rapport d’ax

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7
Q

Quelles sont les valeurs pour l’évaluation préanesthésique à savoir par coeur pour le chat ?

A
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8
Q

Quels sont les risques ASA?

A
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9
Q

Quel est le matériel nécessaire pour l’installation du cathéter IV? (6)

A
  1. Rasoir
  2. Gaz (imbibées d’alcool, de chlorex, et sèches)
  3. Kt IV (20G)
  4. Bouchon PRN
  5. 2 bandes de scotch diachylon
  6. 1 seringue de 3 ml de saline héparinée
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10
Q

Quel est le matériel nécessaire pour la prémédication et l’induction? (3)

A
  1. 1 seringue pour combiner les agents de prémed
  2. Onguent pour les yeux
  3. Masque à O2
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11
Q

Quel est le matériel d’intubation? (5)

A
  1. 3 tubes endotrachéaux de tailles consécutives et convenables
  2. 1 seringue réutilisable pour gonfler ballon et adapté à celui ci
  3. Gaze en rouleau (« kling ») coupée pour attacher le tube endotrachéal
  4. 3 gazes sèches dont 1 avec du gel lubrifiant
  5. 1 laryngoscope : vérifier la lumière et la taille de la lame (appropriée?) à l’avance

***1 seringue de lidocaïne (0,1 ml) et un stylet pour le chat seulement***

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12
Q

Comment installe-t-on l’appareil d’ax?

A

Décrire vidéo

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13
Q

Comment vérifie-t-on l’appareil d’ax?

A

Décrire vidéo

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14
Q

Quel est le matériel de surveillance anesthésique? (6)

Comment choisit-on la taille du brassard?

Quel type de gel devons-nous appliquer sur la sonde du doppler?

A
  • Moniteur (oxymètre de pouls et capnomètre).
    1. Doppler ultrasonique (vérifier qu’il fonctionne bien) : Boîtier noir amplificateur avec sa sonde ultrasonique émettrice/réceptrice **Ne pas débrancher la sonde du boîtier**
    2. Brassard de taille adéquate : largeur entre 30% et 40% de la circonférence du membre au site d’application : le contact avec le membre doit être étroit sans serrer;
    3. Sphygmomanomètre (s’assurer qu’il ne fuit pas); Gel à ultrasons : ne pas utiliser du gel pour électrocardiographe;
    4. 2 bandes de diachylon 1”
    5. Rasoir : La surface de la patte où est appliquée la sonde ultrasonique doit être rasée.
    6. Rapport d’anesthésie (à compléter toutes les 5 minutes)
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15
Q

Quel est le matériel pour la fluidothérapie? (1)

A
  1. Sac de lactate de Ringer avec trousse de perfusion adaptée à la taille de l’animal : « macrodrip » (10 gouttes /ml) ou « microdrip » (60 gouttes/ml
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16
Q

Comment choisis-t-on entre un « macrodrip » (10 gouttes /ml) et un « microdrip » (60 gouttes/ml) ?

A

« macrodrip » (10 gouttes /ml) >10kg

« microdrip » (60 gouttes/ml) <10kg

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17
Q

Quel est le matériel nécessaire pour lutter contre l’hypothermie? (4)

A
  1. Thermomètre
  2. Vaseline
  3. Tapis chauffant
  4. Bouillottes (2)
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18
Q

Comment fait-on la pré-médication ? (4)

A
  1. Transférer les 2, 3 ou 4 drogues préanesthésiques dans une seringue de taille appropriée.
  2. Injection IM (muscles lombaires) en utilisant → une aiguille 23 G pour le beagle (22 à 25G pour un chien) à une aiguille 25G pour le chat → appliquer le gel oculaire
  3. Indiquer l’heure de la prémédication à l’endroit approprié sur le rapport d’anesthésie
  4. Environ 20 minutes d’attente suite à l’injection
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19
Q

Quelles sont les étapes de l’installation du kt?

A

Rasage

Désinfection : 3 passages alcool/chlorex

Pose kt

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20
Q

Quelles sont les étapes de l’induction d’ax ? (3)

A
  1. Évaluation pré-induction : couleur des muqueuses, TRC, TPR et pouls
  2. Préoxygénation

**Application du gel oculaire (lors de la prémédication chez le chat : kétamine oblige)

  1. Administration de l’agent d’induction
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21
Q

Comment se fait l’intubation orotrachéale et le branchement à l’appareil anesthésique ?

A
  1. Patient placé en décubitus sternal
  2. Avec l’aide d’un laryngoscope (+ lidocaïne et stylet pour le chat)
  3. Fixer le tube avec de la gaze en rouleau (kling) → sur le museau et en arrière des canines pour le chien et en arrière des oreilles pour le chat.
  4. Connexion à l’appareil d’anesthésie :
    1) ouvrir O2 (mettre à 2L/min et baisser à 0.5L/min quand niveau d’ax idéal est atteint),
    2) connecter à l’appareil
    3) ouvrir isoflurane
  5. Auscultation pulmonaire bilatérale (tous)
  6. Vérifier pour la présence de fuites (respiration à pression positive : ≈ 10 à 15 cm H2O)
  7. Gonfler le ballonnet seulement s’il y a présence de fuite
  8. Appliquer le gel oculaire (lors de la prémédication chez le chat : kétamine oblige)
  9. Ventilation si apnée
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22
Q

Comment fait-on l’entretien de l’anesthésie ?

Toujours assurer quel débit minimum?

Quelle est la gradation du niveau d’O2?

A

À l’isoflurane, pendant environ 45 minutes

  • 15 à 20 minutes à 2,0 – 2,5 % ?
  • 15 à 20 minutes à 1,5 % (observer les « modifications » chez le patient)
  • 10 minutes à 1 % (observer les « modifications » chez le patient)

Selon les besoins du patient et le système respiratoire utilisé.

Gradation niveau O2: selon des bons de 100 mL

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23
Q

Quelles sont les caractéristiques d’un niveau d’ax idéal?

A
  1. Réflexe palpébrale absent
  2. Pupille basculée ventromédialement (si centrale, ax trop profonde)
  3. Tonus musculaire de la mâchoire absent
  4. TRC ?
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24
Q

À l’aide de quel instrument vérifie-t-on le SaO2 et CO2?

A

Moniteur

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25
Q

À l’aide de quel instrument vérifie-t-on la FC?

A

Doppler en mettant le stetho sur le doppler

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26
Q

À l’aide de quel instrument vérifie-t-on la FR?

A

Animal ou Ballon

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27
Q

À l’aide de quel instrument vérifie-t-on la PA?

A

Doppler

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28
Q

Comment fait-on la surveillance anesthésique? (5)

A
  1. Évaluation anesthésique toutes les 5 minutes :

Système cardiovasculaire : FC, rythme, pouls (fémorale), couleur des muqueuses, TRC, PA.

Système respiratoire : FR, rythme, amplitude, saturation de l’hémoglobine en O2 (SaO2) via l’oxymètre de pouls, PetCO2 via capnomètre.

*Assister la respiration au moins toutes les 5 minutes.

4. Évaluation de la profondeur anesthésique à l’aide des données obtenues. Narcose ou perte de conscience: position de l’œil (ventral et méddial niveau 3 plan 2), myorelaxation (tonus des mâchoires), réflexes atténués ou inhibés (palpébral), diamètre pupillaire.

  1. Prise de la température corporelle (rectale) : toutes les 15 minutes pendant l’anesthésie, à la fin de l’anesthésie, puis toutes les 10 minutes pendant le réveil.

Compléter le rapport d’anesthésie au fur et à mesure, soit au moins toutes les 5 minutes

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29
Q

À quel moment faut-il baisser l’isoflurane de 2.0 - 2.5% à 1.5% ?

A

Quand le niveau d’ax est trop profond.

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30
Q

Comment prépare-t-on la fluidothérapie au lactate de Ringer? (4)

A
  1. Choix de la trousse de perfusion en fonction du poids de l’animal.

o Animal de 10 kg et plus : « macrodrip », soit 10 gouttes/ml

o Animal de moins de 10 kg : « microdrip », soit 60 gouttes/ml

  1. Calcul de la quantité et de la vitesse d’administration des fluides IV (LRS) :
  • Chien : 5 ml/kg/heure (à exprimer en gouttes par seconde : gtt/s)
  • Chat : 3 ml/kg/heure (à exprimer en gouttes par seconde : gtt/s)
  1. Administration :

Chien : Seulement lors d’hypotension (mais a la cx on l’installe qd meme, certains l’installe je pense pendant l’installation du moniteur et doppler, dautres apres le transfert)

Le matériel nécessaire sera disponible pour que vous puissiez la pratiquer vers la fin du laboratoire afin d’être capable de l’installer sur le chat.

Chat : Installation et administration de LRS

→ Vérifier le débit toutes les 5 minutes et l’ajuster au besoin.

  1. Mise en place du chauffe-fluide (chauffe-fluide se trouve dans la salle de cx)
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30
Q

Comment prépare-t-on la fluidothérapie au lactate de Ringer? (4)

A
  1. Choix de la trousse de perfusion en fonction du poids de l’animal.

o Animal de 10 kg et plus : « macrodrip », soit 10 gouttes/ml

o Animal de moins de 10 kg : « microdrip », soit 60 gouttes/ml

  1. Calcul de la quantité et de la vitesse d’administration des fluides IV (LRS) :
  • Chien : 5 ml/kg/heure (à exprimer en gouttes par seconde : gtt/s)
  • Chat : 3 ml/kg/heure (à exprimer en gouttes par seconde : gtt/s)
  1. Administration :

Chien : Seulement lors d’hypotension

Le matériel nécessaire sera disponible pour que vous puissiez la pratiquer vers la fin du laboratoire afin d’être capable de l’installer sur le chat.

Chat : Installation et administration de LRS

→ Vérifier le débit toutes les 5 minutes et l’ajuster au besoin. DIMINUER DE 25% À CHAQUE H

  1. Mise en place du chauffe-fluide
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31
Q

Quelles sont les étapes du réveil? (4)

A
  1. Oxygénothérapie
  • Déconnecter le tube coaxial du tube endotrachéal, s’assurer que la valve d’échappement est ouverte, boucher l’extrémité du tube coaxial avec le doigt et « rincer » l’appareil d’anesthésie avec l’O2;
  • Reconnecter le tube coaxial au tube endotrachéal pour 5 minutes;
  • Détacher la « kling »;
  • Dégonfler le ballonnet du tube endotrachéal (s’il a été gonflé à cause de fuites).
  1. Extubation :
  • Chien : lorsque le réflexe de déglutition réapparaît.
  • Chat : lorsque le réflexe palpébral est bien évident.
  • Surveillance du patient après l’extubation.
  1. Rétablir la température corporelle (si nécessaire)

Jusqu’à 37 ºC.

  1. Retour en cage :
  • Lorsque l’animal est en position sternale et que sa température corporelle est supérieure à 37 o C.
  • Retrait du cathéter IV, puis du bandage compressif, juste avant le retour en cage.
32
Q

Qu’est-ce qu’on donne aux chats et chiens comme analgésique préop?

Quelle est sa dose?

A

Meloxicam (Metacam)

0.2 mg/kg SC

33
Q

Comment fait-on pour déterminer le nombre de ggts/sec pour la trousse de perfusion de fluides?

A
  1. Trouver nb mL/3600sec
  2. x nb ggts/mL (selon trousse choisie) → gtts/sec
34
Q

Quelles sont les drogues et doses à administrer lors de la prémédication? Ck dans cahier cx poour si c’est un chat

A
35
Q

Comment fait-on la pré-oxygénation?

A
36
Q

À l’aide de quel médicament fait-on l’induction et quelle est sa dose? Ck dans cahier cx poour si c’est un chat

A

Propofol 4mg/kg IV lent

37
Q

Que faut-il faire après avoir induit l’animal avec le propofol IV lent?

A

Rincer le kt avec de la saline héparinée. Il faut aussi le rincer avec la saline après la pose du kt

38
Q

Quelle est l’antibiothérapie à administrer et sa dose ?

A

Céfazoline

Dose: 22 mg/kg IV lent sur 5 min

*30 minutes avant le début de la chirurgie

39
Q

Quel est l’analgésie préopératoire à administrer et sa dose ?

A

Méloxicam (Metacam 0.5%, solution injectable)

0.2 mg/kg SC

*Au début de la chx (ou á la fin ssi PA basse)

40
Q

Quel est l’analgésie locorégionale préopératoire ?

A

Lidocaïne 2%

Bloc intratesticulaire (0.2 - 0.5 mL / testicule)

41
Q

Quel est l’analgésie peropératoire à utiliser?

A

Bupivacaïne

0.5 mg/kg

*par chx, splash bloc

42
Q

Quelle est l’analgésie postopératoire?

A
  1. Butorphanol
  2. 2mg/kg IM

*À l’extubation ou IV si réveil agité car douleur avec l’accord de l’anesthésiste seul. Ne pas le prélever d’avance mais le calculer sur la feuille jaune I guess

  1. Hydromorphone au besoin
  2. Méloxicam (métacam en co de 1 mg ou 2.5 mg) 0.1 mg/kg PO SID pour 3 jours
43
Q

Quels sont les effets systémiques du glycopyrrolate?

A
  • antagonisme récepteurs cholinergiques muscariniques
  • effets vagolytiques
  • utilisation : prévention bradycardie ou augmentation FC
  • :( : tachycardie sinusale et hypertension
  • durée d’action : 2-4h
44
Q

Comment installe-t-on le moniteur et le doppler après le branchement tu tube endotrachéal à l’appareil anesthésique?

A
  1. Installation du moniteur (oxymètre de pouls et capnomètre). ???
  2. Installation pour PA
    a) Installation de la sonde doppler (voir « procédure : prise de pression sanguine »):
    - La surface où est appliquée la sonde ultrasonique doit être rasée.
    - Utiliser le gel à ultrasons, sur la surface concave de la sonde.
    b) Installation du brassard (+ sphygmomanomètre) : Le contact avec le membre doit être étroit sans serrer.
45
Q

Transfert

  • Materiel à ramener en salle op?

Que faut-il faire :

  1. Avant de bouger l’animal sur la table roulante
  2. Une fois sur la table roulante
  3. Une fois en salle op
A
46
Q

Ck reponses de vahe et ada

A
47
Q

L’acépromazine + l’hydromorphone, ensemble, constituent quoi?

A

Neuroleptoanalgésie

Acépromazine (neuroleptique) + Hydromorphone (analgésie)

48
Q

Quels sont les effets systémiques de l’acépromazine?

A
  • action antidopaminergique
  • pas analgésie mais optimise les effets analgésiques des autres drogues
  • effets anti-arythmiques chez le chien
  • bloque récepteurs adrénergiques : vasodilatation et hypotension (avec tachycardie réflexe), hypothermie secondaire à la vasodilatation
  • durée d’action : 4-8h
49
Q

Quels sont les effets systémiques de l’hydromorphone?

A
  • agoniste totale : excellent effet analgésique (inhibition transduction et perception de la douleur)
  • bradycardie, dépression respiratoire peu commune chez animal en santé, V+
  • anatagonisable par naloxone
  • durée d’action : 4-6h
50
Q

Quels sont les effets systémiques du butorphanol?

A
  • agoniste-antagoniste
  • durée d’action : 30 min à 2h
51
Q

Quels sont les effets systémiques des anesthésiques locaux?

A
  • inhibe transmission et transduction du stimulus nociceptif (blocage canaux membranaires sodiques)
  • durée d’action bupivacaïne : 4-12h (délai de 15-20 min)
  • durée d’action lidocaïne : 60-120 minutes (délai de 5-7 min)
52
Q

Quels sont les effets systémiques du propofol?

A
  • Liaison au récepteur GABAA (principal site d’action du nt inhibitoire GABA) → dépression SNC
  • Redistribution et élimination rapide→ court effet
  • Induction et réveil anesth calmes et rapides
  • :( : apnée initiale, dépression respiratoire dose-dépendante, diminution contractilité cardiaque, dépresseur cardio-vasculaire, hypotension
  • durée d’action : –
53
Q

Quels sont les effets systémiques de l’isoflurane?

A
  • dépression cardiovasculaire dose-dépendante
  • vasodilatation et hypotension
  • hypothermie
  • dépression respiratoire
  • action des drogues volatiles dépend de la ventilation alvéolaire, débit cardiaque et perfusion sanguine au SNC
  • CAM : concentration alvéolaire minimale (conc. à laquelle 50% des animaux n’ont pas de rct. à la douleur)
54
Q

Quels sont les objectifs de l’intubation orotrachéale?

A
  • prévenir aspiration
  • minimiser résistance des voies respiratoires
  • faciliter administration O2 et agents volatiles
  • ventilation contrôlée
  • limiter exposition des agents volatiles à l’environnement
55
Q

Petit truc : révise les cours d’anesthésie, car faut que tu saches pourquoi ton chien est hypothermique, hypotensif, blablabla et ce que tu dois faire quand ça l’arrive ! N’apprend pas juste une chose à faire, Lisa me demandait comme 4 solutions pour chaque problème.

  • Hypothermie :
  • Hypotension :
A
  • Hypothermie : bouillotes, couverte de survie, chauffe-fluides, augmenter la température du tapis, diminuer O2 (même si on a un système qui réchauffe l’air c’est pas fantastique non plus; plus tu lui shootes du vent, plus il fait frette), baisser l’isoflurane (ton iso créer une vasodilatation = il fait frette)
  • Hypotension : fluides, baisser l’isoflurane (ça crée une vasodilatation)
  • ETC.
  • En gros, baisser l’iso te règle bien des problèmes
56
Q

Qu’est-ce qui est plus fiable que la machine blanche?

A

Doppler

57
Q

Révise aussi comment s’affiche les mesures sur la machine blanches (FC, FR, ETCO2), car j’étais perdue au début surtout avec la fréquence respiratoire

A

…FR et FC???

58
Q

Quelles sont les complications possibles avec un tube trop gros?

A

peut causer œdème trachéal/laryngée et inflammation prédisposant à obstruction VRS

59
Q

Quelles sont les complications possibles avec un tube trop petit?

A

peut causer résistance à la respiration et donc augmentation des efforts respiratoires (peut mener à pauvres échanges gazeux ou mauvaise interprétation de la profondeur anesthésique)

60
Q

Quelles sont les complications possibles avec un tube mal inséré ?

A

inhabilité à maintenir l’anesthésie et trauma

61
Q

Quelles sont les complications possibles avec un tube dans l’oesophage ?

A

inhabilité à maintenir anesthésie et CO2 expiratoire sera à 0.

62
Q

Quelles sont les complications possibles avec un ballonnet pas assez gonflé ?

A

mauvais échanges gazeux, inhabileté à maintenir une bonne profondeur anesthésique (fuites)

63
Q

Quelles sont les complications possibles avec un ballonnet trop gonflé ?

A

inflammation, obstruction VR

64
Q

Quelles sont les causes et tx de l’hyperventilation?

A

Causes :

  • douleur
  • profondeur anesthésique inadéquate
  • réponse à hypercapnie (obstruction partielle VR, chaux sodée, valves inspiratoires et expiratoires défaillantes)
  • hypoxémie
  • hyperthermie

Tx :

  • vérifier profondeur anesthésique
  • stimulation chirurgical douloureuse morphinique
  • évaluer défaillance machine
  • vérifier température et enlever dispositifs réchauffement si élevée

évaluer signes hypoxémie

65
Q

Quelles sont les causes et tx de l’apnée?

A

Causes :

  • propofol (injection rapide)
  • surdosage anesthésique (volatil ou injectable)
  • réflexe suite à intubation ET
  • valve d’évacuation fermée !!!
  • mécanique : tube ET plié/comprimé
  • arrêt de ventilation artificielle
  • agents bloquants NM
  • atteinte TC
  • arrêt cardiaque

Tx :

  • assistance respiratoire : 2-4 ventilations par minute pour ne pas baisser la PaCO2
  • s’assurer que l’animal n’est pas trop profond, ajuster isoflurane
66
Q

Quelles sont les causes et tx de l’hypoventilation?

A
  • diminution ventilaton alvéolaire et volume minute de l’animal (Fc x volume courant)
  • augmentation PaCO2

causes :

  • agents morphiniques
  • diminution capacité résiduelle fonctionnelle (volume de gaz présent dans poumons fin expiration) et altération gradient de ventilation/perfusion (ratio alvéoles ventilées/perfusées)
  • mécanique : compression externe thorax, obstructions VR
  • altération barrière alvéolo-capillaire, œdème
  • animal : atteinte pulmonaire, distension abdo et PIA
  • hypothermie
  • douleur
  • hypotension sévère altérant perfusion centres respiratoires

Tx :

  • diminuer profondeur anesthésie
  • ventilation artificielle
  • corriger hypotension si présente
  • réchauffer animal au besoin
67
Q

À quel moment y a-t-il une hypoxémie ? Quelles sont les causes et tx de l’hypoxémie?

A
  • SaO2 < 90%

causes :

  • baisse fraction inspirée O2 (machine)
  • hypoventilation
  • troubles gradient ventilation/perfusion pulmonaire

troubles diffusion (œdème pulmonaire par ex.)

68
Q

Qu’arrive-t-il lorsque la PAM est <80 mm Hg et à sous-estimer lorsque la PAM est >80 mm Hg

A
  • doppler chez le chien : tend à surestimer lorsque la PAM est <80 mm Hg et à sous-estimer lorsque la PAM est >80 mm Hg
69
Q

Quelle est la meilleure méthode pour mesurer la PA?

A
  • pression artérielle invasive : méthode la plus précise, cathéter artériel sur a. métatarsienne dorsale
70
Q

À quel moment devons-nous nous inquiéter p/r PA? Quelles en sont les causes et les tx possibles?

A
  • hypotension : inférieur à 60. Suspecté : pouls faible, TRC augmenté, tachycardie compensatrice
  • Causes: vasoldilatation=isoflurane, acépromazine, diminution contractilité cardiaque= propofol
  • Tx : diminuer profondeur anesthésie, augmenter rythme des fluides ou bolus (10 ml/kg chien sur 15 min)
71
Q

Quelles sont les causes et les tx de la bradycardie?

A
  • causes : anesthésie trop profonde
  • tx : relatif à la pression artériel (si PA plus que 70, pas d’urgence à tx la bradycardie) mais diminuer profondeur anesthésique. si bradycardie persiste ou PA diminuée anticholinergique.
72
Q

Quelles sont les causes et les tx de la tachycardie?

A
  • causes : anesthésie superficielle ou nociception
  • tx : ajuster profondeur d’anesthésie ou adminsitration morphinique
73
Q

Que représente le CO2 expiré? Quelles sont ses valeurs normales?

Hypercapnie :

Hypocapnie :

Absence de valeur :

A
  • reflet des fonctions : métabolique, cardiovasculaire et respiratoire
  • valeurs normales : 35-45 mm Hg
74
Q
  • Évaluer la douleur avec l’échelle composite de Glasgow canine. Si le score est égal ou supérieur à 6, l’administration d’analgésie de secours est nécessaire lors de;
  • l’évaluation postopératoire en soirée (4h après le réveil, entre 21h et 23h).
A
75
Q

Comment installe-t-on l’ECG?

A
76
Q

Appareil d’ax:

  1. Trajet de l’O2?
  2. Test de fuite?
  3. Monter appareil?
A
77
Q

Quelles sont les valeurs à savoir pour le monitoring anesthésique ?

A